Name: Tek hücreli Seviyesinde Kavitasyon Kabarcık (ler) -Hücre Etkileşim ve Sonuç biyoetkiler incelenmesi için yüzey Desenlendirme ile mikroakışkan Sistemi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 14 s
Description: Öğrenin mikroakışkan sistemlerde kavitasyon kabarcıklarının tek hücreli biyoetkilerini yüzey desenlendirme ile nasıl incelendiğini. Bu yöntem hücre zar geçirgenliği ve kalsiyum yanıtını araştırmak için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Duke Üniversitesi'ndeki temiz oda tesisi SMIF'in kullanımını takdir etmek isteriz. Ayrıca Hao Qiang'a jet hızını ölçmedeki yardımı için teşekkür etmek istiyoruz. Yazarlar, bu çalışmada kullanılan Shimadzu HPV-X kamerayı sağladığı için Hadland Imaging'den Todd Rumbaugh'a teşekkür ediyor. Çalışma kısmen NIH tarafından 5R03EB017886-02 ve 4R37DK052985-20 hibeleri yoluyla finanse edildi.

1. Mikro ve NOT: Tüm mikroüretim prosedürleri bir temiz oda yapılmaktadır. Bir krom maskesi, önceki mikrofabrikasyon için tasarlanmış bakınız Şekil 2 edilir. <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/55106/55106fig2.jpg" /> Şekil 2: mikroakışkan çip kanal tasarım ve çalışma birimlerinin boyutları şematik. ) (mavi ve kırmızı cam alt tabaka üzerine hizalanmış PDMS mikro kanallarda (yeşil) ve desen) Maske tasarımı. çalışma birimi diziler temsili bir bölümünde maske tasarımı b) Genişletilmiş görüntü. hücre deseni (mavi) ve altın nokta çifti (kırmızı) gösteren bir çalışma birimine c) şematik. Tüm uzunluk ölçekleri sağ alt gösterilir. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55106/55106fig2large.jpg" target="_blank">Bir LAR görmek için buraya tıklayınız</a>Bu rakamın ger sürümü. <ol><li> Altın nokta desenleme NOT: buna yapışan tek tek hücrelerin önlemek için yeterli balon üretimi için lazer enerjisini emmek için yeterince büyük, fakat küçük olacak şekilde, her altın nokta alanı, 25-30 mikron 2 içinde olacak şekilde tasarlanmıştır. Altın nokta üretimi için bir şematik diyagramdır Şekil 3a&#39;da gösterilmektedir. <ol><li> (Kimyasal kaputu) temizlik cam slayt <ol><li> Izopropil alkol (IPA) ve ardından aseton ile cam slayt yıkayın ve daha sonra N2 akışı ile kurutulur. </li><li> 10 dakika piranha çözüm slayt (: H 2 O 2 = 4 1 H 2 SO 4) bekletin. </li><li> , Slayt dışarı atın DI su ile durulayın ve daha sonra N 2 akışı ile kurulayın. </li><li> 10 dakika boyunca 120 ° C&#39;de bir sıcak plaka üzerinde cam slayt fırında. </li><li> 90 s için 100 W bir plazma temizleyici slayt davranın. </li></ol></li><li> Spin kaplama (Spin-kaplama kaput) <ol><li> Bir ocak açmak ve sıcaklık 95 ° C&#39;de stabil hale gelene kadar bekleyin. </li><li> Kaplama işlemi uygulayın: 500 dev / s rampa ile 5 s için 1000 rpm; Daha sonra 1.000 rpm / s rampa ile 30 saniye süreyle 3,000 rpm. </li><li> Bir vakum uygulanarak sıkma kaplayıcı üzerine temizlenmiş cam slayt sabitleyin. </li><li> P-20 ile slayt yüzeyini kaplayan ve kaplama tarifi başlar. </li><li> NFR-negatif fotorezist kaplama işlemi tekrarlayın. </li><li> 60 saniye için 95 ° C de slayt fırında ve oda sıcaklığına soğuyana kadar bekleyin. </li></ol></li><li> Fotolitografi <ol><li> Maske hizalama üzerine krom maskesi takın ve desen tarafı aşağı slayt doğru baktığından emin olun. </li><li> maske ile cam alt tabakayı hizalamak hızlı UV ışınlarına maruz kalma 9 s sabit pozlama moduna fotolitografi tarifi ayarlayın. </li><li> UV maruziyetini yaptıktan sonra, 95 ° C&#39;de slayt fırında6, C, 1 dakika boyunca ve daha sonra oda sıcaklığına kadar soğumaya bırakın. </li></ol></li><li> gelişme <ol><li> 60 saniye boyunca geliştirici çözeltisi içinde slayt desen geliştirin. </li><li> , Geliştirici slayt çıkarın DI su ile yıkayın ve N2 akımı ile kurulayın. </li><li> Mikroskop altında kalıp geometrisi kontrol edin ve ölçmek ve özellik boyutunu kaydeder. </li></ol></li><li> Altın birikimi (E-ışın buharlaşma) ve havalanma <ol><li> 5 dakika boyunca 120 ° C &#39;de slayt fırında ve oda sıcaklığına soğumaya bırakın. </li><li> 500 Torr ve 100 W 90 saniye boyunca reaktif iyon aşındırma (RIE) makinede plazma ile slayt temizleyin </li><li> Depozito 5 Ti nm ve E-ışın evaporatör 17 kullanılarak slayt üzerine Au 15 nm. </li><li> karşı NFR en altın dinlenme çıkarmak için çözücü, fotorezist çıkarıcı içeren bir cam beher içinde, gece boyunca slayt bekletin. </li><li> slayt Al, floş iaseton ile T IPA ardından ve bir N2 akımı ile kurutun. </li><li> 90 s için 100 W oksijen plazma temizleyici olarak temizlemeden önce 115 ° C&#39;de sıcak bir plaka üzerinde slayt kurutun. </li></ol></li></ol></li><li> Asansör-off moleküler montaj desenlendirme (MAPL) Not: Her fibronektin kaplı ada alanı 700-900 mikron 2 ada araya birden fazla hücre şansını en aza indirirken, kare bölgede yayılan yeterli HeLa hücre kolaylaştırmak dahilinde ayarlanır. Hücre-desen adalar hazırlanması için bir şematik diyagramıdır, Şekil 3b&#39;de gösterilmiştir. <ol><li> Spin kaplama <ol><li> Adımı tekrarlayın 1.1.2, ancak S1813-pozitif ışığa ve 115 ° C sıcaklığa kullanın. </li></ol></li><li> Bağlantısızlar fotolitografi <ol><li> Maske hizalama üzerine krom maskesi takın ve desenli yan ile slayt aşağı doğru baktığından emin olunaltın nokta. </li><li> UV ışınlarına maruz 9 s sabit pozlama moduna fotolitografi tarifi ayarlayın. </li><li> mekansal bir referans olarak, maske kenarı etrafında bulunan hizalama işaretlerini kullanarak alt slayt üst maske aynı hizaya getirin. </li><li> Maskenin orta bölümünü kontrol edin ve desen özellikleri düzgün hizalanmış emin olun. </li><li> bir post-fırında olmadan UV maruziyetini tamamlayın. </li></ol></li><li> gelişme <ol><li> 1.1.3 ama gelişme 45 s bir ocak kurutma ve N2 depolama koruyarak önce adımı tekrarlayın. </li></ol></li></ol></li><li> kimyasal arıtma <ol><li> pasifleştirme çözeltisi hazırlayın: 0.5 mg / 10 mM HEPES tamponu mL PLL-g-PEG. </li><li> N 2 depodan slayt almak ve parametre ayarı ile Rie kullanarak temizleyin: 500 Torr basınç, 100-W güç ve 90 s beklemeli. </li><li> parafin film parçası üzerine çözüm pasifize Pipet bir damla. &lt;/ Li&gt; <li> desenli yan filmden aşağı doğru baktığından özellikleri emin, film ve slayt ile çözüm Sandwich; kabarcıkların oluşumunu önlemek. </li><li> filmden slayt çıkarmadan önce 45 dakika boyunca bekleyin. </li><li> fotorezist çıkarıcı, fotorezist sökücü ve Dİ su (1: 1) ardışık olarak slayt emmek ve DI suyun ve her bir sulama için 90 saniye süreyle bir ultrason banyosu içinde çalkalayın. </li><li> Bir desikatörde onu mühürleme ve buzdolabında saklamadan önce nemi ortadan kaldırmak için bir ocak slayt kurutun. </li></ol></li><li> Chip montajı <ol><li> Tekrarlayın 1.1.1-1.1.4 adımları ancak SU8-2025-negatif fotorezist ve parametre ayarı ile bir photomask bir silikon kalıp hazırlamak, Microchem protokolü 18 olarak adlandırılan başvurulmakta. </li><li> PDMS Mikrokanallı (40 mm x 25 mm x 5 mm, U x G x Y) ve yumuşak litografi kullanarak küçük bir PDMS levha (800 mikron çapında oluk yapısı) Üretiyor. </li><li> microchanne punchSıvı erişim noktaları için l ve temiz o bantla ve daha sonra IPA ile. </li><li> PDMS levha cam substratın desenli alanını koruyun ve Rie uygulamak (100 W, 500 mTorr&#39;luk, 60 ler) periferik alanından PLL-g-PEG kaldırmak için. </li><li> RIE (25 W, 500 mTor, 25 s) bir azalma dozda Mikrokanallı davranın ve daha sonra (kaldırılmış küçük PDMS levha ile) buzlu cam alt tabakaya aynı hizaya getirin Mikrokanallı ve Stereoskop altında konformal temas buzlu cam alt tabakayı getirmek. </li></ol></li></ol><img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/55106/55106fig3.jpg" /> Şekil 3: mikroüretim ve yonga montaj şematik diyagramı. Cam alt tabaka üzerinde altın noktaların) Modeli. MAPL yoluyla hücre desen için cam alt-tabaka, b) hazırlanması. c) Plazma bağı ile mikroakışkan kanal montajı. o tanımları için Malzeme Listesi görünkısaltmalar f. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55106/55106fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <ol start="5"><li> hücre eki Not: HeLa hücreleri rutin bir hücre kültürü inkübatöründe% 10 FBS ve% 1 antibiyotik / antimitotik çözeltisi ile takviye edilmiş DMEM içinde muhafaza edilir. Çip düzeneği ve hücre bağlanması için bir şematik diyagramdır Şekil 3c&#39;de gösterilmiştir. <ol><li> Prime 1 uL / ​​dakikada, 30 dakika boyunca PBS ile çip ve daha sonra süzülür fibronektin çözeltisi (PBS içinde 50 ug / mL, 1 mL / dakika) ile 45 dakika boyunca karıştırılır. </li><li> % 0.25 tripsin-EDTA ile tripsinize edin hücre kültürü beklerken, kültür ortamı, santrifüj, tek tek hücrelerin yıkayın ve 5x10 6 hücre / mL önceden ısıtılmış (37 ° C), kültür ortamı içinde hücre süspansiyonu sulandırın. </li><li> PBS ile fibronektin çözeltisi yerine ve 5 dakika boyunca 10 uL / ​​dakika çip yıkayın. </li><li> enjekte etmekçip halinde hazırlanan hücre süspansiyonu, akışını durdurmak çıkış kelepçe ve 30 dakika için bir hücre kültürü inkübatöründe çip korumak. </li><li> çıkış bırakın ve 5 dakika boyunca 10 uL / ​​dakika ile hücre kültür ortamı ile çip yıkayın. 0.75 uL / ​​dak kültür ortamı perfüzyon akış oranının azaltılması ve inkübatör içinde 2 saat boyunca hücre kültürü korumak. </li></ol></li></ol> 2. Kabarcık Üretimi ve Akış Görselleştirme NOT: deney düzeneği şematik tandem kabarcık üretimi ve bir mikroakışkan kanal yakındaki yetiştirilen tek bir hücre ile bileşke akım etkileşimi Şekil 4a gösterilmiştir. <ol><li> Tandem Nesil iki lazerler ve zamanlama kontrolü ile kabarcıklar <ol><li> ters bir mikroskop sahnede mikroakışkan çip yerleştirin ve iki darbeli Nd odakları align: desenli altın nokta ayrılmış b bir çift YAG lazer (λ = 532 nm, 5-ns darbe süresi)Y 40 um. </li><li> altın nokta başlatılan iki kabarcıklar üretmek için 2.5 us hakkında bir zaman gecikmesi ile iki lazer tetiklemek için bir dijital gecikme jeneratör kullanın. </li><li> 50 ± 2 um olan kabarcıklar maksimum çapı üretilmesi için bir lazer çıkış enerjisi (~ 10 μJ) ayarlayın. </li><li> lazerlere bir yüksek hızlı kamera (200 ns pozlama ve saniyede 2 milyon çerçeve (fps)) senkronize etmek ve kabarcık genişleme, çöküşü, kabarcık kabarcık etkileşimi ve jet oluşumu dinamiklerini. </li></ol></li><li> Jet hızının kantifikasyonu <ol><li> İlk baloncuk (B 1) ve B 1 uzak ucunun yakın ucunda püskürtme ucu (J 1) konumunu kaydedin ikinci ısıtıcıların (B 2) oluşturulması başlayan ve J gol ile biten B 1 uzak ucuna doğru 1; Şekil 5a şematik bakın. </li><li> Lineer bot için pozisyon zaman ders uygunh proksimal (jet ucu) ve distal uçları. yakın uç jet hızını belirlemek için zaman eğrisi uç pozisyon eğimini hesaplayın. iki satır kesişim jet konma zamanı gösterir. Daha fazla detay Referans 19 bulunabilir. </li></ol></li><li> Tandem kabarcık kaynaklı akış alanının görselleştirilmesi <ol><li> DI su 1 mikron polistiren (PS) boncuk süspansiyonu ve mikroakışkan çip içine boncuk enjekte (w / v% 2.6) hazırlayın. </li><li> Adım 2.1.1-2.1.3 açıklandığı gibi tandem kabarcıklar oluşturur. </li><li> 100 ns pozlama süresi ile 5 M fps çerçeve hızında bir yüksek hızlı video kamera kullanarak tandem kabarcık dinamiklerini kaydedin. </li><li> ticari bir PIV yazılımı içine elde edilen görüntü dizisi yükleyin. </li><li> % 75 örtüşme ile 16 x 16 piksel (px) küçük sorgulama pencere içine her görüntüyü bölün. </li><li> hız alanı hesaplama hataları azaltmak için multi-pass yineleme ve bölgesel filtreleri uygulayın veçıkış hız vektörü haritası sonuçları. </li></ol></li></ol><img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/55106/55106fig4.jpg" /> Şekil 4: Deney düzeneği ve görüntü kayıt şematik. tandem kabarcık üretimi için) deney düzeneği. b) Zaman dizisi görüntüleme satın almalar farklı türleri için kullanılır. FL: floresan mikroskopi, BF: Aydınlık alan, IFT: interframe zaman. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55106/55106fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> 3. Tek hücreli Analizi ve Biyolojik Etkileri Not: Tandem balonu hedef hücrelere aşağıdaki üretilir ve elde edilen biyolojik etkileri, bir uzak-durma mesafesi bağımlı bir şekilde incelenmiştir. Görüntü satın alma farklı zaman dizisi Şekil 4b&#39;de gösterilmiştir. <ol><li>Membran gözeneklendirme ve makromolekül alımı Not: hedef hücreye, hücre dışı makromoleküllerin alınması, hücre zarı üzerinde gözeneklendirme sitesi üzerinden membran geçirgen olmayan propidyum iyodür aşamalı difüzyon (PI) ile karakterize edilir. <ol><li> Aşama 1.5 takiben deney süresince 0.5 uL / dakikalık bir perfüzyon akış hızında çalışan PI çözeltisi (DMEM içinde 100 ug / mL) ile normal kültür ortamı (yani, DMEM) değiştirin. </li><li> otomatik olarak 200 ms bir pozlama süresi ile floresan görüntü yakalamak için PI floresan uyarma ile CCD kamera zamanlamasını dönen taret PI floresan küp seçin ve senkronize etmek için mikroskop kontrol yazılımı programlayın. </li><li> iki lazer odak aşağıdaki ardışık balonu tedaviden önce, bir hedef hücre, kayıt parlak saha (BF) hem de flöresanlı (FL) görüntü altın nokta bir çift hizalanmış sonra. </li><li> hemen mikroskop kontrol yazılımı kullanınkısa bir süre sonra PI alımı tarihini yakalamak için 2.1 adım hedef hücrenin bir time-lapse floresan görüntü kaydı başlatın. </li></ol></li><li> membran deformasyon <ol><li> 1 mikron boncuk (a / h,% 1 suda çözünen karbodiimid ile aktive edilmiş) hazırlanması ve Peptid-2000 (PBS içinde 100 ug / ml) ile işlevselleştirilmesi. </li><li> Aşama 1.5 ardından, 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de 1x10 9 boncuk / ml yoğunluğunda fonksiyonalize boncuklarla bağlı hücreler inkübe edin. </li><li> Adımı yineleyin 2.1 hedef hücreye yanında tandem kabarcıklar üretmek ve ultra yüksek hızlı kamera 5 milyon fps çerçeve hızında çalışan hücre deformasyonu kaydetmek için. </li><li> Deney boyunca görüntüleme düzleminde kalır 3 boncuk bir üçlü belirlemek ve bunların konumlarını (x 1, y 1) (x 2, y 2) derlemek ve (x 3, y 3) deneyde koordine eder. </li><li> öncesi ve af üçlüsü alanı hesaplayınformülü kullanarak tandem kabarcık tedavisi ter: <img alt="denklem 1" src="/files/ftp_upload/55106/55106eq1.jpg" /></li><li> Alan zorlanma olarak hesaplayın: <img alt="denklem 2" src="/files/ftp_upload/55106/55106eq2.jpg" /></li><li> Öncesi ve tandem kabarcık tedavi sonrası üç köşe koordinatları dayanarak kurulan protokolleri 20,21 aşağıdaki yerel ana gerilme ve alan gerginlik hesaplar. </li></ol></li><li> Canlılık ve apoptoz NOT: FITC Annexin V fosfatidilserin (yeşil floresan) haricileştirilmesinin yoluyla, apoptotik olanlar da dahil olmak üzere hücreleri, etiketler. PI nekrotik hücreler (kırmızı floresan) çekirdekleri etiketler. Aydınlık alan görüntüleme hücre morfolojisi belgelemek ve hücre canlılığı ve apoptozun tanımlamasına yardımcı olmak için kullanılır. <ol><li> Şekil 2b, bkz kanal adres etiketleri tarafından kolaylaştırılır mikroakışkan kanal (her tedavi hücrenin konumunu kaydedin </strong&gt;) adımı 3.1 tekrarlayarak ederken. </li><li> 15 dakika boyunca FITC Annexin V çözeltisi ile çip perfüze önce 2 saat daha hücre kültür ortamı içinde muamele hücreleri inkübe edin. Pozitif hücreler, yeşil floresan gösterirler. </li><li> 24 saat tandem kabarcık tedaviden sonra adımı yineleyin 3.3.2 hedeflenen hücrelerin uzun süreli biyoetkiler incelemek için. </li></ol></li><li> kalsiyum yanıtı <ol><li> W 3 uL 10 ile% fura-2:00 stok solüsyonu 3 uL (DMSO içinde 1 mg / ml) karışımı / Pluronic F-127 son etiketleme çözeltisi (6 uM) hazırlanması için düşük serum ortamı 500 mL hacim. </li><li> Aşama 1.5 ardından etiketleme çözeltisi ile hücre kültür ortamı yerine ve 40 dakika boyunca (1 mL / dakika perfüzyon oranı) boyunca karanlıkta oda sıcaklığında inkübe edin. </li><li> Hücre deney başlamadan önce düşük serum ortamında (0.75 mL / dak perfüzyon oranı) ile kanal doldurun. </li><li> oranlı metrik görüntüleme başlatın (dalga boyu: 340/380 nm, 50 ms maruz kalma)Hedef hücrenin ticari PTI sistemi kullanılarak. </li><li> dinlenme seviyesinde hücrenin oranlı metrik görüntüleme, adım 2.1 olarak tandem kabarcıkları üretmek 10 sn sonra; 1 dakika boyunca 0.1 sn interframe zamanında (IFT) ile ilk kayıt, daha sonra başka bir dakika 1 s IFT artırmak ve 2 dakika sonra 5 sn daha fazla artış. </li><li> hücre içi kalsiyum konsantrasyonu ile orantılıdır ilgili bölge (ROI) olarak oranı R = F340 / F380 hesaplamak için PTI yazılımını kullanarak. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Wang, D., Bodovitz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+cell+analysis%3A+the+new+frontier+in+%27omics%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Single cell analysis: the new frontier in 'omics.</a> Trends Biotechnol. 28 (6), 281-290 (2010).</li>
<li>Weaver, W. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+high-throughput+single-cell+microtechnologies%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Advances in high-throughput single-cell microtechnologies.</a> Curr Opin Biotechnol. 25, 114-123 (2014).</li>
<li>Gossett, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrodynamic+stretching+of+single+cells+for+large+population+mechanical+phenotyping%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Hydrodynamic stretching of single cells for large population mechanical phenotyping.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 109 (20), 7630-7635 (2012).</li>
<li>Spiller, D. G., Wood, C. D., Rand, D. A., White, M. R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+single-cell+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Measurement of single-cell dynamics.</a> Nature. 465 (7299), 736-745 (2010).</li>
<li>Lecault, V., White, A. K., Singhal, A., Hansen, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+single+cell+analysis%3A+from+promise+to+practice%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Microfluidic single cell analysis: from promise to practice.</a> Curr Opin Chem Biol. 16 (3-4), 381-390 (2012).</li>
<li>Kennedy, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-intensity+focused+ultrasound+in+the+treatment+of+solid+tumours%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">High-intensity focused ultrasound in the treatment of solid tumours.</a> Nat Rev Cancer. 5 (4), 321-327 (2005).</li>
<li>Zhu, S., Cocks, F. H., Preminger, G. M., Zhong, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+stress+waves+and+cavitation+in+stone+comminution+in+shock+wave+lithotripsy%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of stress waves and cavitation in stone comminution in shock wave lithotripsy.</a> Ultrasound Med Biol. 28 (5), 661-671 (2002).</li>
<li>Fan, Z., Liu, H., Mayer, M., Deng, C. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatiotemporally+controlled+single+cell+sonoporation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Spatiotemporally controlled single cell sonoporation.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (41), 16486-16491 (2012).</li>
<li>Itah, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrodynamic+cavitation+kills+prostate+cells+and+ablates+benign+prostatic+hyperplasia+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Hydrodynamic cavitation kills prostate cells and ablates benign prostatic hyperplasia tissue.</a> Exp Biol Med. 238 (11), 1242-1250 (2013).</li>
<li>Kosar, A., Sesen, M., Oral, O., Itah, Z., Gozuacik, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bubbly+cavitating+flow+generation+and+investigation+of+its+erosional+nature+for+biomedical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Bubbly cavitating flow generation and investigation of its erosional nature for biomedical applications.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 58 (5), 1337-1346 (2011).</li>
<li>Li, Z. G., Liu, A. Q., Klaseboer, E., Zhang, J. B., Ohl, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+cell+membrane+poration+by+bubble-induced+microjets+in+a+microfluidic+chip%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Single cell membrane poration by bubble-induced microjets in a microfluidic chip.</a> Lab Chip. 13 (6), 1144-1150 (2013).</li>
<li>Li, F. F., Chan, C. U., Ohl, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yield+Strength+of+Human+Erythrocyte+Membranes+to+Impulsive+Stretching%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Yield Strength of Human Erythrocyte Membranes to Impulsive Stretching.</a> Biophys J. 105 (4), 872-879 (2013).</li>
<li>Li, F., M, M., Ohl, C. .D. . <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shear+stress+induced+stretching+of+red+blood+cells+by+oscillating+bubbles+within+a+narrow+gap%5BTitle%5D)+AND+%22Bull+Am+Phys+Soc%22%5BJournal%5D)">Shear stress induced stretching of red blood cells by oscillating bubbles within a narrow gap.</a> Bull Am Phys Soc. 58, (2013).</li>
<li>Sankin, G. N., Yuan, F., Zhong, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulsating+tandem+microbubble+for+localized+and+directional+single-cell+membrane+poration%5BTitle%5D)+AND+%22Phys.+Rev.+Lett%22%5BJournal%5D)">Pulsating tandem microbubble for localized and directional single-cell membrane poration.</a> Phys. Rev. Lett. 105 (7), 078101(2010).</li>
<li>Fan, Q., Hu, W., Ohta, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-induced+microbubble+poration+of+localized+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Laser-induced microbubble poration of localized single cells.</a> Lab Chip. 14 (9), 1572-1578 (2014).</li>
<li>Chen, C. S., Mrksich, M., Huang, S., Whitesides, G. M., Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Geometric+control+of+cell+life+and+death%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Geometric control of cell life and death.</a> Science. 276 (5317), 1425-1428 (1997).</li>
<li>Yuan, F., Sankin, G., Zhong, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+tandem+bubble+interaction+in+a+microfluidic+channel%5BTitle%5D)+AND+%22J+Acoust+Soc+Am%22%5BJournal%5D)">Dynamics of tandem bubble interaction in a microfluidic channel.</a> J Acoust Soc Am. 130 (5), 3339-3346 (2011).</li>
<li>Microchem, SU-8 2000 Processing Guidelines. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.microchem.com/pdf/SU-82000DataSheet2000_5thru2015Ver4.pdf">http://www.microchem.com/pdf/SU-82000DataSheet2000_5thru2015Ver4.pdf</a> (2000).</li>
<li>Yang, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Analysis+of+Tandem+Bubble+Interaction+and+Jet+Formation+in+a+Microfluidic+Channel%22">Analysis of Tandem Bubble Interaction and Jet Formation in a Microfluidic Channel</a>. , Duke University. (2013).</li>
<li>Simon, S. I., Schmid-Schonbein, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytoplasmic+strains+and+strain+rates+in+motile+polymorphonuclear+leukocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Cytoplasmic strains and strain rates in motile polymorphonuclear leukocytes.</a> Biophys J. 58 (2), 319-332 (1990).</li>
<li>Barbee, K. A., Macarak, E. J., Thibault, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain+measurements+in+cultured+vascular+smooth+muscle+cells+subjected+to+mechanical+deformation%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Strain measurements in cultured vascular smooth muscle cells subjected to mechanical deformation.</a> Ann Biomed Eng. 22 (1), 14-22 (1994).</li>
<li>Yuan, F., Yang, C., Zhong, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+membrane+deformation+and+bioeffects+produced+by+tandem+bubble-induced+jetting+flow%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Cell membrane deformation and bioeffects produced by tandem bubble-induced jetting flow.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 112 (51), E7039-E7047 (2015).</li>
<li>Yin, H., Marshall, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics+for+single+cell+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Microfluidics for single cell analysis.</a> Curr Opin Biotechnol. 23 (1), 110-119 (2012).</li>
<li>Tay, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+NF-kappa+B+dynamics+reveal+digital+activation+and+analogue+information+processing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Single-cell NF-kappa B dynamics reveal digital activation and analogue information processing.</a> Nature. 466 (7303), 267-271 (2010).</li>
<li>Rand, R. P., Burton, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+Properties+of+the+Red+Cell+Membrane%3A+I.+Membrane+Stiffness+and+Intracellular+Pressure%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Mechanical Properties of the Red Cell Membrane: I. Membrane Stiffness and Intracellular Pressure.</a> Biophys J. 4 (2), 115-135 (1964).</li>
<li>Lim, C. T., Dao, M., Suresh, S., Sow, C. H., Chew, K. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+deformation+of+living+cells+using+laser+traps%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Mater%22%5BJournal%5D)">Large deformation of living cells using laser traps.</a> Acta Mater. 52 (7), 1837-1845 (2004).</li>
<li>Puig-de-Morales-Marinkovic, M., Turner, K. T., Butler, J. P., Fredberg, J. J., Suresh, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viscoelasticity+of+the+human+red+blood+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Viscoelasticity of the human red blood cell.</a> Am J Physiol Cell Physiol. 293 (2), C597-C605 (2007).</li>
<li>Kudo, N., Okada, K., Yamamoto, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonoporation+by+single-shot+pulsed+ultrasound+with+microbubbles+adjacent+to+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Sonoporation by single-shot pulsed ultrasound with microbubbles adjacent to cells.</a> Biophys J. 96 (12), 4866-4876 (2009).</li>
<li>van Wamel, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vibrating+microbubbles+poking+individual+cells%3A+Drug+transfer+into+cells+via+sonoporation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Vibrating microbubbles poking individual cells: Drug transfer into cells via sonoporation.</a> J Control Release. 112 (2), 149-155 (2006).</li>
<li>Hu, Y., Wan, J. M., Yu, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+perforation+and+recovery+dynamics+in+microbubble-mediated+sonoporation%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Membrane perforation and recovery dynamics in microbubble-mediated sonoporation.</a> Ultrasound Med Biol. 39 (12), 2393-2405 (2013).</li>
<li>Dijkink, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+cavitation-cell+interaction%3A+trans-membrane+transport+and+viability+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Phys+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">Controlled cavitation-cell interaction: trans-membrane transport and viability studies.</a> Phys Med Biol. 53 (2), 375-390 (2008).</li>
<li>Rau, K. R., Quinto-Su, P. A., Hellman, A. N., Venugopalan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulsed+laser+microbeam-induced+cell+lysis%3A+Time-resolved+imaging+and+analysis+of+hydrodynamic+effects%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Pulsed laser microbeam-induced cell lysis: Time-resolved imaging and analysis of hydrodynamic effects.</a> Biophys J. 91 (1), 317-329 (2006).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Tek hücre analizi, canlı hücre görüntüleme ile birlikte, büyük ölçüde bu tür fenotip gelişimi ve bağışıklık yanıtı 23 olarak bireysel hücrelerin, dinamik ve sık sık değişen süreçlerin anlayışımızı artırmıştır. yemekleri ya da şişelere konvansiyonel hücre kültürü tersine, mikrokanallar gerçek zamanlı olarak aşağı doğru tek hücre seviyesine mikro hassas kontrolünü, sağlar. Sonuç olarak, mikroakışkan teknolojik gelişmeler ve teknikler büyük ölçüde tek hücre analizinin verimi ve tekrarlanabilirlik düzeldi. Yumuşa...

Hücresel heterojenite, genler, proteinler ve metabolitleri stokastik ifadesi kaynaklanan büyük bir hücre popülasyonu içinde var ve hücre adaptasyonu ve evrim 1 olanak sağlamak için biyolojinin temel prensip olarak hizmet dair büyüyen bir fark vardır. Nedenle, sık sık bireysel hücrelerin ve bunların etkileşimleri işlevini anlamak için toplum tabanlı toplu ölçümleri kullanmak yanlış ve güvenilmez. Tek hücre analizi için yeni teknolojilerin geliştirilmesi, bu nedenle, biyolojik ve farmakolojik araştırma yüksek ilgi ve daha iyi kök hücre biyolojisi ve kanser tedavisinde 2-4 anahtar sinyal geçiş yollarından ve süreçleri, örneğin, de kullanılabilir. Son yıllarda, mikroakışkan platformların çıkması büyük ölçüde bireysel hücrelerin tepki konumlandırma, tedavi, gözlem yeni analitik stratejiler 5 ile yapılmıştır tek hücreli analizi kolaylaştırmıştır. Kavitasyon yüksek yoğunluğu kanserlerinin tedavisinde de dahil olmak üzere biyomedikal uygulamalarda, çeşitli bir yelpazede önemli bir rol ultrason (HIFU) 6 odaklı çalış, şok dalga litotripsi ile böbrek taşlarının non-invaziv parçalanma (SWL) 7, ilaç ya da gen teslimi sonoporation 8 ve hidrodinamik kavitasyon balon 9,10 hücreler ya da dokuların en son rapor tahrip edilmesi. Buna rağmen, kavitasyon kabarcığı (ler) biyolojik doku ve hücreleri ile etkileşim dinamik süreçleri iyi anlaşılmış değil. Bu ultrason, şok dalgaları ve yerel hidrolik basınç tarafından üretilen kavitasyon başlatma ve kabarcık dinamikleri rastgelelik nedeniyle; ayrıca, özellikle tek hücre düzeyinde, biyolojik hücrelerin doğal olarak karmaşık ve hızlı yanıtları çözümlemek için teknikler sağlayan bir eksikliği vardır. Bu zorlukların, şaşırtıcı değildir, çünkü çok az çalışma arı varn iyi kontrol deneysel koşullar altında kabarcık-hücre etkileşimleri araştırmak için bildirmişlerdir. Örneğin, tek tek hücrelerin membran gözeneklendirme süspansiyonu 11 sıkışıp ve insan kırmızı kan hücreleri 12 itici büyük deformasyon mikroakışkan kanal lazer tarafından oluşturulan tek kabarcıkları kullanılarak gösterilmiştir. İkinci teknik, bununla birlikte, çünkü sadece çekirdeğin 13 varlığı ökaryotik hücrelerde çok az deformasyon üretebilir. Ayrıca, süspansiyon içinde hücrelerin tedavi ederken aşağı biyoetkiler izlenmesi zordur. Diğer çalışmalarda, tek yapışık hücre membran gözeneklendirme ve / veya hücre içi kalsiyum yanıtları üretmek için bir hücreye bağlı mikro-kabarcık (ya da ultrason kontrast ajanı) ultrasonla uyarım 8 bildirilmiştir. Tek yapışan hücrelerin membran gözeneklendirme Ayrıca ışık emici Tripan mavi bir çözelti 14 ihtiva eden ince bir sıvı tabakası lazer tarafından oluşturulan ardışık kabarcıkları kullanılarak üretilen, ya damicrochambers 15 optik emici alt tabaka ile ışınlanması mikrosaniye lazer darbeleri tarafından üretilen bir salınım gaz kabarcığı ile. karşılaştırıldığında ikinci hücreler için toksik olduğu için, optik olarak emici alt-tabaka, lazer soğurucu Trypan mavi çözelti bir avantajı vardır. Daha da önemlisi, lazer tarafından oluşturulan kabarcıklar akustik heyecanlı kabarcıkların daha kabarcık boyutu ve konumu açısından daha kontrol edilebilir. Bununla birlikte, bütün bu daha önceki çalışmalarda, hücre şekli, yönlendirme ve yapışma şartları esas itibarıyla hücre yanıtı ve mekanik stresler 16 tarafından üretilen biyolojik etkileri etkileyebilecek, kontrol edilmemiştir. Önceki çalışmalarda, bu sakıncaların üstesinden gelmek için, kısa bir süre önce kabarcık üretimi, hücre desen, kabarcık kabarcıklı-hücre etkileşimleri ve gerçek zamanlı mikroimalat techn benzersiz bir kombinasyonunu kullanarak inşa mikroakışkan çipte hücre tepkisinin biyo-deneyler için deneysel bir sistem geliştirmişlerdiriques. Alanında diğerlerinden bizim deneysel sistem ayırt üç ana özellikleri şunlardır: 1) cam tabaka üzerinde mikron büyüklüğünde altın noktaların desenleme kabarcık nesil 17 için yerelleştirilmiş lazer emilimini sağlamak için; 2) aynı levha üzerine hücre yapışması için hücre dışı matrisin (ECM) mikron boyutunda adalar desen konumu ve tek tek hücrelerin geometrisini, hem kontrol etmek için; ve 3) yarı-2B uzaya 3 boyutlu kabarcık-bubble-hücre etkileşimi etki boyutunun sıkıştırma tüm yakalanan, akış alanları, hücre deformasyonu ve biyoetkiler jeti, kabarcık kabarcık etkileşimleri düzlem görselleştirme kolaylaştırmak için bir aerodinamik görüntüleme dizisi (Şekil 1d). <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/55106/55106fig1.jpg" /> Şekil 1: mikroakışkan çip ve farklı deneyleri şematik. a) kanallı bir araya mikroakışkan çip mavi mürekkeple dolu<html> görselleştirme için. b) desenli hücreleri ve altın noktalarla mikroakışkan çip içinde bir bölge (yakınlık iki altın nokta arasındaki mesafe) 40 mm. çalışma birimlerinin çoğu çifti, bir kanal düzenlenebilir. Altın noktaların bir çift ve hücre-yapıya model verme bölgesi yapıştırılmış bir HeLa hücre oluşan tek bir çalışma biriminin C) yakın çekim görüntüsü. Cihaz çalışma d) şematik. Bir tek hücre yapışır ve fibronektin ile kaplı &quot;H&quot; şeklindeki adada yayılır. Anti-faz osilasyonlu kavitasyon kabarcıkları (tandem balonu) bir çift yakın bir hedef hücreye doğru hareket eden bir hızlı ve lokalize jet oluşmasına yol (Şekil 4A), altın nokta darbeli lazer ışınları aydınlatılarak üretilir. Hücre, deforme makromoleküler alımı için gözeneklendirilmiş ve / veya ikili kabarcık hücrenin uzak-durma mesafesi (S D) bağlı olarak, bir kalsiyum tepki ile stimüle edilebilir.f = &quot;http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55106/55106fig1large.jpg&quot; target = &quot;_ blank&quot;&gt; bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız. Bu platform, daha floresan deneyleri ve kavitasyon kaynaklı Biyolojik Etkileri için hücre yüzeyi bağlı fonksiyonalize boncuklar ile birleştirilebilir. Özel olarak, bu platform, tek hücre düzeyinde güvenilir ve ölçülebilir deneyleri için yolu açar. Şimdiye kadar, bizim ikili kabarcık kaynaklı hücre membran deformasyon hücre gözeneklendirilmesi ya da hücre içi alımını, canlılığı, apoptozi, ve hücre içi kalsiyum tepkisinin analizi için cihaz kullanmıştır. Aşağıdaki protokol, çip imalat işlemi ve yukarıda belirtilen çeşitli biyolojik etkileri analiz prosedürü açıklar. Ayrıca, chip işlemleri de tarif edilmiştir.

<table><tbody><tr><td><güçlü > Reaktif / Malzemeler< güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>75 mm x 38 mm Düz Mikroskop Slaytları</td><td>Corning</td><td>2947-75X38</td><td></td></tr><tr><td>Aseton</td><td>Sigma Aldrich, Co.</td><td>320110</td><td>ACS reaktifi, > %99,5</td></tr> <tr><td>İzopropil alkol</td><td>Sigma Aldrich, Co.</td><td>W292907</td><td>&ge; %99,7, FCC, FG</td></tr><tr><td>Sülfürik asit</td><td>Sigma Aldrich, Co.</td><td>320501</td><td>ACS reaktifi, %95.0-98.0</td></tr> <tr><td>Hidrojen peroksit</td><td>Sigma Aldrich, Co.</td><td>216763</td><td>ağırlıkça %30 H2O</td></tr><tr><td>Astar P-20</td><td>Microchem</td><td>MCC Primer 80/20</td><td></td></tr><tr><td>NFR fotorezist</td><td>JSR</td><td>NFR016D2</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Photomask Photoplotstore</td><td>N/A</td><td>4x4 Doğrudan yazma maskesi</td></tr><tr><td>MF-319 Geliştirici</td><td>Shipley (Rohm ve Haas)</td><td>Microposit MF-319</td><td></td></tr><tr><td>1165 Fotorezist Sökücü</td><td>Dow Chemical, Co. </td><td>DEM-10018073</td><td>1-metil-2-pirolidinon bazlı</td></tr><tr><td>S1813 fotorezist</td><td>Shipley (Rohm ve Haas)</td> <td>S1813</td><td></td></tr><tr><td>PLL-g-PEG</td><td>SuSoS</td><td>PLL(20)-g[3.5]- PEG(2)</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>15630080</td><td></td></tr><tr><td>Parafin filmi</td><td>HACH</td><td>251764</td><td></td></tr><tr><td>SU-2025 fotorezist</td><td>Microchem</td><td>SU-2025</td><td></td></tr><tr><td>PDMS</td><td>Dow Corning</td><td>184 SIL ELAST KİTİ 0.5KG</td><td></td></tr><tr><td>Mikro Delikli Boru</td><td>Saint-Gobain PPL Corp.</td><td>S-54-HL</td><td></td></tr><tr><td>Metal pimler</td><td>New England Küçük Boru</td><td>NE-1300-01</td><td>Kesim Borusu (düz), 0.025" Dış çap x 0,017 inç Kimlik x 0,50 inç Uzun</td></tr><tr><td>HeLa hücreleri</td><td>Duke Hücre Kültürü Tesisi</td> <td>(307-CCL-2) HeLa, s.148</td><td></td></tr><tr><td>DPBS (1x) tampon</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>14190144</td><td></td></tr><tr><td>DMEM kültür ortamı</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>11995065</td><td></td></tr><tr><td>Fibronektin Sığır Proteini, Plazma</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>33010018</td><td></td></tr><tr><td>%0,25 Tripsin-EDTA (1x)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>25200056</td><td></td></tr><tr><td>Propidium İyodür</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>P21493</td><td></td></tr><tr><td>Karboksilat Mikroküreler 1.00&nbsp; &mu; m</td><td>Polysciences, Inc</td><td>08226-15</td><td></td></tr><tr><td>Karboksilat Mikroküreler 2.00&nbsp; &mu; m</td><td>Polysciences, Inc</td><td>18327-10</td><td></td></tr><tr><td>EDC (1-etil-3- (3-dimetilaminopropil) karbodiimid hidroklorür)</td> <td>ThermoFisher Scientific</td><td>22980</td><td></td></tr><tr><td>Sülfo-NHS</td><td>Sülfo-NHS (N-hidroksisülfosüksinimid)</td> <td>24510</td><td></td></tr><tr><td>Peptit-2000</td><td>Gelişmiş BioMatrix</td><td>5020-5MG</td><td></td></tr><tr><td>FITC Ek V</td><td>ThermoFisher Bilimsel</td><td>A13199</td><td></td></tr><tr><td>Fura-2,</td><td>ThermoFisher Bilimsel</td><td>F1221</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma Aldrich, Co.</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>F-127</td><td>canlandırıcı</td><td>P6866</td><td>0.2 ve mikro; m filtrelenmiş (Suda% 10 Çözelti)</td></tr><tr><td>Azaltılmış serum ortamı&nbsp;</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>11058021</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company<</td><td>strong>Katalog Numarası</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plazma aşer</td><td>Emitech</td><td>K-1050X</td><td>O2 / Ar plazma küllenmesi fotorezist ve diğer organik malzemeler</td></tr><tr><td>Maske hizalayıcı</td><td>SUSS MicroTec&nbsp;</td><td>Karl Suss MA6/BA6</td><td></td></tr><tr><td>E-kirişli evaporatör</td><td>CHA Industries CHA Industries</td><td>Solution E-Beam</td><td></td></tr><tr><td>RIE</td><td>Trion Technology&nbsp;</td><td>Trion Teknolojisi Fantom II</td> <td>(oksit / nitrür / polimer) aşındırma</td></tr><tr><td>Stereoskop</td><td>AmScope</td><td>American Scope SM-4TZ-FRL</td><td>Stereo Mikroskop</td></tr><tr><td>Şırınga pompası</td><td>Chemyx Inc</td><td>NanoJet</td><td></td></tr><tr><td>Hücre kültürü inkübatörü</td><td>NuAire</td><td>AutoFlow NU-8500 Su Ceketi CO2 İnkübatör</td><td></td></tr><tr><td>Biyolojik Güvenlik Kabinleri</td><td>NuAire</td><td>NU-425-400</td><td></td></tr><tr><td>Su banyosu</td><td>VWR</td><td>1122s</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>IEC</td><td>Centra CL2</td><td></td></tr><tr><td>Mikroskop</td><td>Zeiss</td><td>Axio Gözlemci Z1</td><td></td></tr><tr><td>Nd: YAG lazer ve nbsp; (Lazer 1)</td><td>Yeni Dalga Araştırma</td><td>Tempest</td><td></td></tr><tr><td>Nd: YAG lazer & nbsp; (Lazer 2)</td><td>Yeni Dalga Araştırması</td><td>Orion</td><td></td></tr><tr><td>Gecikme jeneratörü</td><td>Berkeley Nükleonikleri&nbsp;</td><td>BNC 565-8c</td><td></td></tr><tr><td>Flaş lambası</td><td>Dyna-Lite</td><td>ML1000 fiber bağlantılı flashtube</td><td></td></tr><tr><td>yüksek hızlı kamera</td><td>DRS Hadland</td><td>&nbsp; Imacon 200</td><td></td></tr><tr><td>yüksek hızlı&nbsp; kamera</td><td>Shimadzu</td><td>HPV-X</td><td></td></tr><tr><td>yüksek hızlı kamera</td><td>Vision Research</td><td>Phantom V7.3</td><td></td></tr><tr><td>PIV yazılımı</td><td>LaVision</td><td>DaVis 7.2</td><td></td></tr><tr><td>kamera</td><td>Zeiss</td><td>AxioCam MRc 5</td><td></td></tr><tr><td>yazılımı</td><td>Zeiss</td><td>AxioVision</td><td></td></tr><tr><td>PTI sistemi</td><td>Horiba</td><td>S/N: 1705 RAM-X</td><td></td></tr><tr><td>EasyRatio yazılımı</td><td>Horiba</td><td>Easy Ratio Pro 2</td><td>sürüm 2.3.125.86</td></tr><tr><td>63 kez; objektif</td><td>Zeiss</td><td>LD Planı Neofluar</td><td></td></tr></tbody></table>

tek hücreli seviyesinde kavitasyon kabarcık (ler) -hücre etkileşim ve sonuç biyoetkiler incelenmesi için yüzey desenlendirme ile mikroakışkan sistemi

A Microfluidic System with Surface Patterning for Investigating Cavitation Bubble(s)&#8211;Cell Interaction and the Resultant Bioeffects at the Single-cell Level

Bu yazıda, öncelikle kesin tandem kabarcıklar ve iyi tanımlanmış yerlerde ve şekillerle yakın desenli tek tek hücrelerin üretilmesini kontrol eden aynı cam alt tabaka, altın nokta ve fibronektin kaplı bölgeler ile, bir mikroakışkan çip üretim protokol açıklar. Daha sonra bir kaç-mikrosaniye zaman gecikmesi ile altın nokta bir çift aydınlatıcı iki darbeli lazer kullanarak tandem baloncuklar nesil göstermektedir. Biz yüksek hızda görüntüleme ile kabarcık kabarcık etkileşimi ve jet oluşumunu görselleştirmek ve parçacık görüntüleyerek hız ölçümü (PIV) kullanılarak bileşke akım alanını karakterize eder. Son olarak, biz makromolekül alımı ile hücre zarı poration, ekli integrin bağlayıcı boncuk değiştirmeler tarafından belirlenen lokalize membran deformasyon ve oranlı metrik görüntüleme gelen hücre içi kalsiyum yanıtı da dahil olmak üzere tek bir hücre analizi için bu tekniğin bazı uygulamaları sunuyoruz. Bizim sonuçları hızlı ve yön jeti akışı yanlısı olduğunu göstermekyakın yetişen bir hücrenin yüzeyi üzerinde yüksek ölçüde lokalize edilen kesme stresi getirebileceği ikili kabarcık etkileşimi tarafından üretilen. Ayrıca, farklı biyolojik etkileri ikili kabarcık hücreye dikme mesafe ayarlanarak püskürtme akışının gücü değiştirerek indüklenebilir.

Bu çalışmada tarif mikroakışkan platformu balonu kabarcıklı etkileşimlerini incelemek ve tek hücre düzeyinde kavitasyon kaynaklı Biyolojik Etkileri çeşitli analiz etmek için kullanılabilir. Burada, deneysel sistemde gerçekleştirilebilir deneysel çalışmalar ve biyo-tahliller, çeşitli göstermek için çok sayıda örnek sunulmuştur. Biz ilk jet oluşumu, ortaya çıkan akış alanının görselleştirme ve jet hızı (Şekil 5a) hesaplanması ile tandem baloncuklar geçici etkileşimleri açı...

Tandem kabarcık üretimi için altın nokta çiftleri ve yakındaki tek hücreli modelleme için fibronektin kaplı adalar üretmek üzere bir mikroakışkan çip üretildi. Elde edilen akış alanı, parçacık görüntü hızı ile karakterize edildi ve hücre zarı porasyonu, zar deformasyonu ve hücre içi kalsiyum yanıtı dahil olmak üzere çeşitli biyoetkileri incelemek için kullanıldı.

Tek hücreli Seviyesinde Kavitasyon Kabarcık (ler) -Hücre Etkileşim ve Sonuç biyoetkiler incelenmesi için yüzey Desenlendirme ile mikroakışkan Sistemi

In this manuscript, we first describe the fabrication protocol of a microfluidic chip, with gold dots and fibronectin-coated regions on the same glass ...

Bu deneysel prosedürün genel amacı, ardışık kabarcıkların oluşumunu ve hedef hücrelerin konum ile şeklini hassas bir şekilde kontrol etmek için yüzey desenleme kullanarak, mikroakışkan hapsetme altındaki kavitasyon kaynaklı biyolojik etkileri incelemektir. Bu mikroakışkan sistem, terapötik uygulamalar ve ses yayılımı ile ses operasyonları için ilgili olan bu geçişli kavitasyon kabarcıkları ve hücrelerin deneylenmesine olanak tanır. Bu tekniğin temel avantajı, yüzey desenlemeden kaynaklanan hassasiyet artışıdır.Münferit hücrelerin biyolojik etkilerini incelememize olanak tanır ve güvenilir kabarcık-kabarcık etkileşimi sayesinde yüksek akışlı yükleme sağlar. Çipteki yüzey desenleme ve hücre hazırlama adımları çeşitli teknikler ve ipuçları içeren karmaşık süreçler olduğundan, prosedürlerin görsel olarak gösterilmesi kritik öneme sahiptir. Tüm mikrofabrikasyon prosedürlerini, temiz oda kıyafeti giyerek bir temiz odada gerçekleştirin.Kabarcık oluşumu için lazer enerjisini soğuracak kadar büyük, ancak tekil hücrelerin yapışmasını önleyecek kadar küçük olması için her bir altın noktanın alanını 25 ila 30 kare mikron arasında tasarlayın. Cam lamı metin protokolüne uygun olarak kimyasal bir davlumbazda temizleyin, ardından spin coating davlumbazına geçin. Spin coder'ı iki saniye içinde 1000 RPM'ye hızlanacak ve bu hızı beş saniye boyunca koruyacak, ardından üç saniye içinde 3000 RPM'ye çıkacak ve bu hızı 30 saniye boyunca sürdürecek şekilde programlayın.Ardından, cam lamı vakum yardımıyla spin kaplayıcıya sabitleyin. Daha sonra lamı P20 ile kaplayın ve döndürme döngüsünü başlatın. Sonrasında, aynı döngüyü kullanarak NFR negatif fotoresist uygulayın.Şimdi, lamı bir sıcak tablada 95 °C'de 60 saniye boyunca pişirin. Oda sıcaklığına soğuduğunda fotolitografi işlemini gerçekleştirin. Krom maskeyi maska hizalayıcıya yerleştirin ve desenli tarafın lama doğru aşağı baktığından emin olun.Ardından, fotolitografi reçetesini dokuz saniyelik UV pozlamaya sahip sert pozlama moduna ayarlayın ve cam altlığı maskeyle hizalayın. UV pozlamanın ardından, lamı 95 °C'de bir dakika boyunca fırınlayın ve ardından daha önce olduğu gibi soğumasını bekleyin. Lam üzerindeki deseni geliştirmek için lamı 60 saniye boyunca geliştirici çözeltiye yerleştirin, ardından lamı distile su ile yıkayın ve nitrojen gazı ile kurulayın.Desen mikroskobik inceleme ile onaylandıktan sonra, lamı 120 degrees celsius sıcaklıkta beş dakika boyunca fırınlayın ve oda sıcaklığına kadar soğumaya bırakın. Ardından, reaktif iyon aşındırma makinesinde 500 tor ve 100 watts değerlerinde 90 saniye boyunca plazma ile temizleyin. Bir E-beam evaporatörü kullanarak, numuneyi plaka tutucuya bantlayın.Cihazı, önce 5 nanometrelik bir titanyum tabakası, ardından 15 nanometrelik bir altın tabakası yatıracak şekilde programlayın. Bu işlem tamamlandığında cihazı havalandırın. Ardından, NFR direncinin üzerindeki altını temizlemek için lamı bir beher içindeki fotoğrafdirenç sökücü çözücüde gece boyunca bekletin.Ertesi gün, lamı önce asetonla, ardından IPA ile yıkayın ve sonrasında nitrojen ile kurutun. Lamı DI su ile durulayın ve tekrar nitrojen ile kurutun. Şimdi, lamı 115 degrees celsius sıcaklıkta beş dakika boyunca ısıtın.Ardından, altın nokta desenli lamı 100 watt gücünde 90 saniye boyunca bir oksijen plazma külleyici kullanarak temizleyin. Her bir fibronektin kodlu adacığın alanını, HeLa hücrelerinin kare bir bölgede yeterli düzeyde yayılmasını kolaylaştırırken birden fazla hücrenin adacık üzerinde kümelenme olasılığını minimize edecek şekilde 700 ila 900 kare mikron arasında ayarlayın. Fabrikasyon işlemi, altın deseninkine çok benzerdir.S18 pozitif fotoresist kullanarak lamın kodlamasını daha önce olduğu gibi döndürerek yapın ve kodlamayı 115 degrees celsius sıcaklıkta pişirin. Ardından, maske üzerindeki işaretleri substrattakilerle hizalayarak fotolitografi işlemini gerçekleştirin. Doğru açıyı onaylamak için merkez bölgedeki deseni kontrol edin ve altın noktalar ile H deseni arasındaki destekleme mesafesini ayarlayın.UV pozlamayı, sonrasında pişirme yapmadan dokuz saniye boyunca gerçekleştirin. Bir sonraki fark, geliştirme adımının sadece 45 saniye sürmesidir. Reaktif iyon aşındırma işlemi için parametreleri 500 tor, 100 watt ve 90 saniye olarak ayarlayın.Ardından, bir parça parafin filminin üzerine bir damla PLLG peg pasivasyon çözeltisi damlatın ve çözeltiyi lamın desenli tarafına gelecek şekilde sandviç yapın. Hava kabarcığı kalmamasına dikkat edin. 45 dakika sonra, lamı filmden çıkarın.Lamı DI su ile durulayın ve ardından nitrojen ile kurutun. Sonrasında, lamı sırasıyla fotoresist sökücü 1165 içerisinde bekletin. Daha sonra DI su ile hazırlanmış yüzde 50'lik 1165 içerisinde bekletin.Ardından sadece DI su kullanın. Her banyo sırasında, çözeltiyi bir ultrasonik banyoda 90 saniye boyunca çalkalayın. Şimdi, lamı bir sıcak plaka üzerinde kurutun, ardından bir desikatörde mühürleyin ve 4 degrees celsius sıcaklıkta saklayın.Slaytları metin protokolünde açıklandığı şekilde bir mikrokanal çipine monte edin. Çevresel alandaki PLLG çubuğunu uzaklaştırmak için reaktif iyon aşındırma işlemi uygulamadan önce, cam substratın desenli alanını küçük PDMS plaka ile korumaya dikkat edin. Desenli camı RIE cihazından çıkarın ve küçük PDMS plakayı kaldırın.Mikrokanallı PDMS'yi düşük dozda oksijen plazmasına maruz bıraktıktan sonra, bir stereoskop altında desenli cam altlığa göre hizalayın. Mikrokanallı PDMS ile desenli cam altlığı konformal temas halinde getirin. Artık çipi kullanmaya geçebilirsiniz.İlk olarak, mikrokanaldan 30 dakika boyunca dakikada bir mikrolitre hızında PBS akıtarak çipi hazırlayın. Ardından, çipi aynı akış hızında 45 dakika boyunca fibronektin çözeltisi ile doldurun. Bekleme süresince, hücreleri mililitre başına beş milyon hücre olacak şekilde hazırlayın.Sağlıklı durum ve yüksek konfluens bu prosedür için kritiktir. Daha sonra, çip üzerinden akan çözeltiyi PBS ile değiştirin ve akış hızını on µL/dakika değerine yükseltin. PBS'nin beş dakika boyunca akmasını sağlayın.Ardından, hazırlanan hücreleri bir şırınga yardımıyla çipe enjekte edin. Bir damla tüpten dışarı aktığında enjeksiyonu durdurun ve çıkışı kapatın. Daha sonra, çipi 30 dakika boyunca bir inkübatöre yerleştirin.Daha sonra, çıkışı serbest bırakın ve çipi beş dakika boyunca dakikada on µL hızla hücre kültürü ortamı ile yıkayın. Beş dakika sonra, akışı dakikada 0,75 µL'ye düşürün ve çip ile pompayı iki saat boyunca bir inkübatöre yerleştirin. İki saat sonra, altın nokta desenine yönlendirilmiş zamanlama kontrollü iki darbeli NDI lazerle bir ters mikroskop altında çipi izleyerek ve sonuçları kaydetmek için hazır bir yüksek hızlı kamera ile ardışık kabarcık oluşumuna geçin.50 mikronluk kabarcıklar için, iki lazer arasındaki gecikmeyi 2,5 mikrosaniye olarak ve güçlerini on mikrojul olarak ayarlayın. Ardından, yüksek hızlı kamera kaydını lazerlerle senkronize edin ve 200 nanosaniyelik pozlamalarla saniyede iki milyon kare hızında kayıtlar yapın. Böylece kabarcık genişlemesi, çökme, kabarcık-kabarcık etkileşimi ve jet oluşumunun dinamikleri kaydedilmiş olur.Tanımlanan teknik kullanılarak, tandem baloncukların jet oluşumuyla olan geçici etkileşimleri, ortaya çıkan akış alanının görselleştirilmesi ve jet hızının hesaplanması gibi kabarcık-kabarcık etkileşimleri ve kavitasyon kaynaklı çeşitli biyolojik etkiler tek hücre düzeyinde incelenmiştir. Tandem baloncuğun çevresindeki yönlü jet akışı saniyede yaklaşık on metre civarındadır, genişliği yaklaşık on mikrondur ve bu nedenle yakındaki hedef hücreler üzerinde impulsif ve lokalize bir kayma gerilmesi ile gerilme gradyanı oluşturma kapasitesine sahiptir. Tandem baloncuğun indüklediği hücre zarı deformasyonu da çalışılmıştır.Membran deformasyonu ve toparlanması, hücre membranının ön kenarına tutturulmuş fonksiyonelleştirilmiş boncukların yer değiştirmesiyle vurgulanmaktadır. Yan yana duran üçlü bir boncuk grubunun koordinatlarından, yerel alan gerinimi hesaplanmıştır. Bu şema, hücre yüzeyindeki farklı konumlardaki maksimum alan değişimini göstermektedir.Öncü kenar öncelikle gerilirken, hücrenin artçı kenarı veya yan tarafları sıkışmaktadır; bu durum, tandem kabarcıkla tetiklenen jet akışının meydana getirdiği heterojenliği ve hücre deformasyonunu göstermektedir. Hücre öncü kenarındaki alan geriniminin zamansal değişimi, birkaç hızlı osilasyonun ardından yaklaşık 100 mikrosaniye boyunca devam eden büyük ve sürdürülebilir bir gerilme ve sonrasında birkaç milisaniyelik zaman ölçeğinde kademeli bir toparlanmadan oluşur. Bu videoyu izledikten sonra, yüzey desenlemesi ile kontrol edilen şekil ve konumdaki tek hücrelerin biyolojik etkilerini incelemek için kontrol edilebilir bir kabarcık-kabarcık etkileşiminin nasıl oluşturulacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.Bu prosedürün ardından, tandem kabarcık tedavisinin hücre iskeleti yeniden düzenlenmesini incelemek için hücre iskeleti incelmesi ve konjugal görüntüleme gibi diğer ölçümler daha sonra gerçekleştirilebilir. Geliştirildikten sonra bu teknik, subpretik ultrason alanındaki araştırmacıların, tek hücre düzeyinde yakalama kaynaklı biyolojik etkileri keşfetmelerine yol açacaktır. Bu prosedür uygulanırken, hücre desenlemesi sırasında başarı için iyi bir hücre konfluensinin ve durumunun korunması gerektiğini hatırlamak önemlidir.Temiz oda kimyasalları ve lazerlerle çalışmanın son derece tehlikeli olabileceğini ve bu prosedürü gerçekleştirirken eldiven ve lazer gözlüğü takmak gibi önlemlerin her zaman alınması gerektiğini unutmayın.

a-microfluidic-system-with-surface-patterning-for-investigating

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Biz hücre yakalama ve kültür etkinleştirebilirsiniz mikroakışkan cihazların imalatı için bir protokol tanımlamaktadır. Bu yaklaşımda, mikroakışkan kanallar içinde oluk gibi desenli mikro, içinde hücre sabitleyebilirsiniz Shear stresin düşük olduğu bölgelerde oluşturmak için kullanılır.

Hücresel Davranış incelenmesi için Groove Desenler mikroakışkan Aygıt

Mikroakışkan cihazlar gerçek zamanlı olarak ve uygun fiziksel ölçeklerde karmaşık doğal süreçler görselleştirmek için kullanılabilir. Biz yeraltı bakteri büyüme ve taşımacılık eğitimi için doğal gözenekli ortamın temel özellikleri taklit basit bir mikroakışkan cihaz geliştirdik.

Gözenekli Ortam Mikrobiyal Ulaştırma incelenmesi için basit mikroakışkan Sistemleri: Mikrodünya Pencere

Kaynak: Kurz, D. L. ve diğerleri. Gözenekli ortamlarda biyotıkanmayı incelemek için mikrofluidik platform. J. Vis. Exp. (2022)Video, biyofilm oluşumunu incelemek için mikrofluidik cihazın kullanıldığını gösteriyor. Mikrokanala bakteriyel bir süspansiyon getirilir ve ardından biyofilm gelişimi için kuluçka yapılır. Akış daha sonra yeniden başlatılır ve basınç izleme ile görüntüleme kullanılarak biyofilm oluşumu ve gözenek tıkanıklığı zamanla tespit edilir.

Biyofilm oluşumu sırasında gerçek zamanlı görüntüleme ve basınç takibi için mikrofluidik bir cihaz

Bu protokolde, prokaryotik mikroorganizmaların tek hücreli analizi için bir mikroakışkan pikolitre biyoreaktörün (PLBR) üretimi, kurulumu ve temel çalışması tanıtılmaktadır. Endüstriyel olarak ilgili mikroorganizmalar, geleneksel yöntemlerle neredeyse imkansız olan, belirli zaman dilimlerinde büyüme hızı, morfoloji ve fenotipik heterojenlik hakkında bilgi sahibi olmaya izin veren ilke kanıtı olarak analiz edildi.

Mikrobiyal Tek Hücreli Analiz için Mikroakışkan Pikolitre Biyoreaktör: Fabrikasyon, Sistem Kurulumu ve Çalışması

Bu mikron çaplı daralması bir düzeni sekansından geçerken hücre için gereken süreden daha ölçmek için mikroflüidik bazlı analiz göstermektedir.

Mikroakışkan Tekniği Hücre deformabilitesi Probe

Bir yüzey üzerinde canlı hücre tek katmanlarının eksiltici desenlemesini gerçekleştirmek için bir protokol sunuyoruz. Bu, bir mikroakışkan prob (MFP) kullanılarak yapışık hücrelerin lokal ve seçici parçalanması ile elde edilir. Yerel bölgelerden alınan hücre lizatı, aşağı akış analizi için kullanılabilir ve bu da moleküler profilleme çalışmalarına olanak tanır.

mikroakışkan Probe ile Canlı Hücre Katmanlar hızlı Subtractive Desenlendirme

Sunulan deneysel protokol, başarılı ilaç dağıtımı ve/veya diğer biyoeffeksler için gerekli koşulların araştırılmasını sağlamak amacıyla bir hücre kültürü cihazında kavitasyon aktivitesinin gerçek zamanlı ölçümlerini yapmak için kullanılabilir.

Kavitasyon Gelişmiş Tedavi Çalışma

İki kabarcık arasındaki birleşme tekniğine dayanan tek, sıkışmış bir akustik kabarcığın şekil salınımlarını kontrol etmek için hızlı ve güvenilir bir teknik önerilmektedir. Kararlı durum, simetri kontrollü kabarcık şekli salınımları, kabarcık arayüzünün yakınında üretilen sıvı akışının analizine izin verir.

Akustik Levitasyon Sisteminde Küresel Olmayan Kabarcık Salınımları ile Mikroakışın İndüksiyonu

Mikroakışkan bir çip üzerinde fare embriyonik dokusunun kültürü ve manipülasyonu için bir protokol sağlanır. Yol modülatörlerinin darbelerini uygulayarak, bu sistem fare somitogenezinin fonksiyonel araştırması için sinyal salınımlarını harici olarak kontrol etmek için kullanılabilir.

Somitogenezi Yöneten Sinyal Salınımlarının Fonksiyonel Olarak İncelenmesi İçin Bir Mikroakışkan Yaklaşımı

Bakteri ve kolloidler gibi bir sıvıda asılı mikro boyutlu nesneleri polidimetilsiloksisan substratında öngörülen dizilere desenleştirmek için mikroakışkan bir platformda kapilarite destekli montaj kullanan bir teknoloji sunuyoruz.

Sıralı Capillarity destekli Montaj yoluyla Mikroorganizmaların ve Mikropartiküllerin Deseni

Mevcut protokol, yüksek çözünürlüklü mikroskopi görüntülemeyi eşzamanlı basınç farkı ölçümleriyle birleştirerek yarı-2D gözenekli ortamlarda biyofilm gelişimini incelemek için mikroakışkan bir platformu tanımlamaktadır. Platform, gözenekli ortamlardaki gözenek boyutunun ve sıvı akış hızlarının biyotıkanma üzerindeki etkisini ölçer.

Gözenekli Ortamlarda Biyotıkanıklığı İncelemek için Mikroakışkan Bir Platform

Öğrenin mikroakışkan sistemlerde kavitasyon kabarcıklarının tek hücreli biyoetkilerini yüzey desenlendirme ile nasıl incelendiğini. Bu yöntem hücre zar geçirgenliği ve kalsiyum yanıtını araştırmak için kullanılır.

Tek hücreli Seviyesinde Kavitasyon Kabarcık (ler) -Hücre Etkileşim ve Sonuç biyoetkiler incelenmesi için yüzey Desenlendirme ile mikroakışkan Sistemi (Video) | JoVE Journal

Tek hücreli Seviyesinde Kavitasyon Kabarcık (ler) -Hücre Etkileşim ve Sonuç biyoetkiler incelenmesi için yüzey Desenlendirme ile mikroakışkan Sistemi

Daha fazla video keşfet