Name: Bir CRISPR-konkantör kullanarak Fare Küçük Bağırsak Organoidleri Üzerinde Birden Fazla Gen Kıyamet Protokolü (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-12T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 53 s
Description: Öğrenin fare bağırsak organoidlerinde çoklu gen kıyamet protokolü. CRISPR-konkantör vektörü kullanarak dört gene kadar eşzamanlı kıyamet yapın. Fonksiyon kaybı çalışmalarınızı hızlandırın.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Makalenin eleştirel okunması için Christopher Hindley&#39;e teşekkür ediyoruz. AM, Wntsapp (Marie Curie ITN), AA-R tarafından desteklenmektedir. Tıp Araştırma Konseyi (MRC) ve BK.K tarafından desteklenmektedir. Ve RM, Wellcome Trust ve Royal Society [101241 / Z / 13 / Z] &#39;den bir Sir Henry Dale Bursu tarafından desteklenmekte ve Wellcome Trust ve MRC&#39;den Wellcome Trust - MRC Cambridge Stem Cell Enstitüsüne bir temel hibe yoluyla destek alınmaktadır .

<html> 1. CRISPR-concatemer Vector için gRNA Tasarımı Not: Bu bölümün amacı, en iyi hedefleme stratejisini seçmeyi ve CRISPR-concatemer vektörü için belirli çıkıntıları içeren gRNA&#39;ları nasıl tasarlayacağınızı açıklamaktır. <ol><li> Seçilen bir CRISPR gRNA tasarım aracını kullanarak ilgi genlerine karşı gRNA&#39;lar tasarlayın. Bir örnek için Malzeme Tablosuna bakın. NOT: Paralog genlerin bir çiftini hedeflerken gen başına bir gRNA tasarlamak mümkün olsa da, çift knockout elde etme şansını artırmak için her gen için iki gRNA tasarlanması önerilir ( Şekil 1 ). </li><li> GRNA&#39;ların Bbs I tanıma sitesini içermediğinden emin olmak için bir kısıtlama haritalama aracı kullanın (örnek için Malzeme Tablosuna bakın). </li><li> Tablo 1&#39;de gösterildiği gibi her bir oligoya belirli CRISPR-konsatemer vektör çıkıntıları ekleyin. </li></ol>&quot;Fo: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;fo: keep-with-next.within-page =&quot; always &quot;&gt; <tbody><tr><td></td><td> Kaset 1 </td><td> Kaset 2 </td><td> Kaset 3 </td><td> Kaset 4 </td></tr><tr><td> Sıra (5&#39;-3 &#39;) </td><td> CACCGG [gRNA1] GT </td><td> ACCGG [gRNA2] G </td><td> CCGG [gRNA3] </td><td> ACACCGG [gRNA4] GTT </td></tr><tr><td> Sıra (5&#39;-3 &#39;) </td><td> TAAAAC [RC-gRNA1] CC </td><td> AAAAC [RC-gRNA2] Cı </td><td> AAAC [RC-gRNA3] </td><td> CTAAAAC [RC-gRNA4] CCG </td></tr></tbody></table> Tablo 1: CRISPR-konsatemer Vektörünün Her Kaseti İçin Çıkıntılar. 2. CROSPR-konsatimer Vektörüne gRNA&#39;ların klonlanması <ol><li> Oligosların fosforilasyonu ve tavlanması NOT: Bu adım, tO Her bir gRNA oligo için üst ve alt zincirleri tavlamak ve uçlarını tek bir reaksiyonda fosforile etmek. <ol><li> Tepkime karışımını, oligosları fosforile etme ve buz üzerinde üst ve alt ipliklerini tavlamak için aşağıdaki talimatlara göre hazırlayın. NOT: Tüm oligolar bir reaksiyona toplanabilir; Örneğin, 4 gRNA-konsatemer vektörü durumunda, birlikte 8 oligos bir araya getirilir. </li><li> 3 concatemer için 3.0 μL gRNA üst iplikçik (her gRNA&#39;dan 1.0 μL; 10 μM, 1 μL / gRNA), 3.0 μL gRNA alt ipi (her gRNA&#39;dan 1.0 μL; 10 μM, 1 μL / gRNA), 2.0 μL T4 DNA ligaz tamponu (10x), 1.0 pL T4 PNK ve 20.0 uL toplam hacmine kadar H2O ilave edin. </li><li> Pipetleme yöntemiyle iyice karıştırın ve aşağıdaki ayarları kullanarak bir termostatöre çalıştırın: 30 dakika için 37 ° C, 5 dakika için 95 ° C, 0.3 ° C&#39;de dakikada 25 ° C&#39;ye kadar rampa, 4 ° C&#39;de tutun. </li></ol></li><li> Bbs ben tepki karışımı NOT: Bu bölümde, önceden tavlanmış gRNA oligoları, sindirim ve ligasyon döngüleri dönüşümlü olarak bir adımda konstemer vektörünün uygun pozisyonuna dahil edilir. <ol><li> 3 ve 4 gRNA-konsatemer vektörleri oluşturmak için DNase / RNaz içermeyen suda reaksiyon karışımını 1: 100 oranında inceltin. NOT: 2 gRNA-concatemers klonlandığında bu adım gerekli değildir . </li><li> Aşağıdaki talimatlara uygun olarak, buz üzerinde Bbs I karıştırma reaksiyonunu bir araya toplayın . Yalnızca vektörü içeren bir negatif kontrol ekleyin. </li><li> 100 ng CRISPR-concatemer vektörü, 10.0 μL oligo karışımı, 1.0 μL BSA içeren kısıtlama enzimi tamponu (10x), 1.0 uL DTT (10 mM), 1.0 uL ATP (10 mM), 1.0 μL Bbs I, 1.0 uL T7 ligaz 20.0 uL toplam hacmine kadar, ve H2O. </li><li> Pipetleme yöntemiyle iyice karıştırın ve aşağıdaki ayarları kullanarak bir termostatöre uygulayın: 3 ve 4 gRNA-konsatremeri klonlamak için 50 döngü çalıştırın ve <sTrong&gt; 2 gRNA-konkatemeri için 25 döngü, hem 37 ° C&#39;de 5 dakika, 21 ° C&#39;de 5 dakika, 37 ° C&#39;de 15 dakika, daha sonra 4 ° C&#39;de sonsuza dek tutun . </li></ol></li><li> Exonuclease tedavisi NOT: Bu adım, doğrusallaştırılmış DNA&#39;nın izlerini kaldırarak klonlamanın etkinliğini arttırdığı için önerilir. <ol><li> Bbs I shuffling reaksiyonunu bir DNA exonuclease (bkz . Malzeme Tablosu ) ile aşağıdaki gibi davranın. </li><li> Önceki adımdan (2.2.3) 11.0 μL ligasyon karışımı alın, 1.5 uL ekzonükleaz tamponu (10x), 1.5 uL ATP (10 mM), 1.0 μL DNA ekzonükleaz ekleyin ve toplam su hacmi 15.0 μL&#39;ye getirin. 37 ° C&#39;de 30 dakika inkübe edip 70 ° C&#39;de 30 dakika inkübe edin. NOT: Bu adım, karışımdaki artık doğrusallaştırılmış DNA&#39;yı yok eder ve bu nedenle klonlama verimliliğini arttırır. </li><li> Reaksiyon karışımının 2 μL&#39;ini, kimyasal olarak dönüştürmek için dönüştürme için kullanın.Isı şoku ile E. coli bakterilerini çadır 12 . NOT: Alternatif olarak, reaksiyon -20 ° C&#39;de bir hafta kadar saklanabilir. </li></ol></li><li> Restriksiyon sindirimi NOT: Bu adımın amacı kısıtlama sindirimiyle klonlama prosedürünün başarısını değerlendirmektir. <ol><li> CRISPR-concatemer vektöründe gRNA eklentilerinin varlığını teyit etmek için, aşılama döngüsü ile 4-8 bakteri kolonisini seçin, her klondan bir gece boyunca 37 ° C&#39;de 4 mL LB ortamında bir orbital çalkalayıcıda büyütün. Üreticinin talimatlarına göre plazmid miniprep kiti kullanarak DNA&#39;yı çıkarın (Malzeme Tablosuna bakın). </li><li> Bir bakteri kuluçka makinesi içinde 3 saat boyunca 37 ° C&#39;de inkübe ederek 10 uL reaksiyonda 10 U EcoR + 5 U Bgl II ile ~ 200 ng DNA&#39;yı özümleyin . Büyüklük karşılaştırması için pozitif bir kontrol olarak ilgili orijinal vektör ile ayrı bir reaksiyon karışımı ekleyin. NOT: ThiS, bu iki kısıtlama enziminin tüm konkanteemleri tüketeceğinden, tüm konkanteemlerin var olup olmadığını teyit edecektir. Bunlar, her bir konstemer için beklenen boyutlardır: 2 gRNA-konkantem (800 bp), 3 gRNA-konkatem (1.2 kbp) ve 4 gRNA-konkatemer (1.6 kbp). </li><li> Yaklaşık 20 dakika boyunca 90 V&#39;de% 1 agaroz jel üzerinde sindirim reaksiyonlarını çalıştırın. </li><li> UV transilluminator kullanarak jel görselleştirmek. Band örneklerinin orijinal vektörlerden biriyle eşleşmesini sağlayarak ve DNA merdiveni kullanarak her fragmanın beklenen boyuta sahip olduğundan klonları doğru ekleme boyutuyla tanımlayın. </li><li> Seçilen klonları 37 ° C&#39;de 5 U Bbs I ile bir bakteri inkübatöründe 3 saat boyunca sindirin. Bir kontrol olarak ilgili orijinal vektör ile ayrı bir reaksiyon karışımı ekleyin. NOT: Bu ek sindirim adımı, gRNA&#39;ların doğru konuma klonlandığını teyit etmektir ve sonuç olarak tüm Bbs I tanıma siteleri kaybolmuştur. </li><li> Üzerinde sindirim reaksiyonları çalıştırYaklaşık% 20 oranında 90 V&#39;de% 1 agaroz jel. Yalnızca gRNA&#39;lar içerdiği için Bbs I tarafından kesilmeyen vektörleri doğru olarak düşünün. </li></ol></li><li> Vektör dizilemesi NOT: Bu adımın amacı kısıtlama sindirim analizi ile doğru olarak tanımlanan vektörlerdeki gRNA sekanslarının varlığını doğrulamaktır. <ol><li> Aşağıdaki primerleri kullanarak Sanger sıralama 13 ile pozitif konkantem vektörlerini onaylayın: İletim: TCAAGCCCTTTGTACACCCTAAG (ilk gRNA kasetini kontrol etmek için) Linker1_Forward: GACTACAAGGACGACGATGACAA (ikinci gRNA kasetini kontrol etmek için) Linker2_Reverse: GGCGTAGTCGGGCACGTCGTAGGGGT (ikinci gRNA kasetini kontrol etmek için) Linker2_Forward: ACCCCTACGACGTGCCCGACTACGCC (üçüncü gRNA kasetini kontrol etmek için) Linker3_Reverse: TCCTCCTCTGAGATCAGCTTCTGCAT (üçüncü gRNA kasetini kontrol etmek için) Ters: AGGTGGCGCGAAGGGGCCACCAAAG (son gRNA&#39;yı kontrol etmek için)kaset) </li><li> Sıralanma okumalarındaki dizilerini araştırarak tüm gRNA&#39;nın varlığını kontrol edin. </li></ol></li></ol> 3. Bağırsak Organoidlerin Elektroporasyon ile Transfeksiyon Edilmesi NOT: Lütfen bu prosedürün Fujii ve diğerleri tarafından yayınlanan protokole dayandığına dikkat edin. Fare küçük bağırsak organoid kültürleri için adaptasyon ile 2015 yılında 14 . <ol><li> Ön elektroporasyon NOT: Bu bölüm, fare bağırsak organoitlerinin elektroporasyon öncesinde, tüm antibiyotikleri ve kıvamlandırılmış ortamları kendi kültür ortamlarından çıkararak nasıl hazırlanacağı açıklanmaktadır. Bu, elektroporasyon sırasında olası toksik etkileri önleyecektir. <ol><li> Transfeksiyon prosedürünün 0 gününde organoidler 1: 2 oranda bölünürler. NOT: Bağırsak organoid kültürleri, önceden kurulmuş protokollere göre kript izolasyonu yaparak elde edilebilir 15 . Bakınız <stRong&gt; Tüm medya kompozisyonları için Tablo 2. <ol><li> Organoidleri elektroporasyon için ayırırken, her transfeksiyon için 48 oyuklu bir plakadan en az 6 kuyu tohumlayın. </li><li> 20 uL bodrum matris damla organoids Tohum ve 37 ° C &#39;de WENR + Nic ortamında (Wnt + EGF&#39; + Noggin + R-spondin + Nikotinamit) bunları büyümesi, nemlendirilmiş bir kuluçka makinesi içinde% 5 CO2 (daha önce 15 tarif edilmiştir) . </li></ol></li><li> 2. günde, WENR + Nic&#39;i antibiyotikler olmadan 250 μL EN (EGF + Noggin) + CHIR99021 (Glikojen Synthase Kinaz-3 inhibitörü) + Y-27632 (antibakteriyetsiz) ile değiştirerek değiştirin (bkz. Tablo 2 ). NOT: Bütün basamaklarda, 48 gözlü bir plakanın her oyuğuna eklenen ortam miktarı 250 mcL&#39;dir. </li><li> 3. günde, organoid maddeyi antibiyotiksiz EN + CHIR99021 + Y-27632 +% 1.25 v / v Dimetil sulfoksit (DMSO) olarak değiştirin. </li></ol></li><li> Hücrelerin hazırlanması NOT:Burada, organoidlerin mekanik ve kimyasal ayrışma ile küçük hücre kümelerine nasıl parçalanacağını açıklıyoruz. Bu adımlar, işlemin başarısı için kritik öneme sahiptir. <ol><li> 4. günde, 1 mL&#39;lik bir pipet ucu kullanarak bodrum matris kubbelerini bozun ve organoidleri 1.5 mL&#39;lik bir tüp üzerine aktarın. Bir 48 gözlü plakanın dört oyuğunun bir tüpe alınması. </li><li> Mekanik olarak organoidleri, yaklaşık 200 kez P200&#39;lü bir pipet kullanarak aşağı ve yukarı pipetleyerek küçük parçalara ayırın. Oda sıcaklığında, 600 x g&#39;de 5 dakika santrifüjleyin. </li><li> Ortamı çıkarın ve pelleti bir hücre kültürü sınıfı rekombinant proteazın 1 mL&#39;sinde tekrar süspanse edin (materyal tablosuna bakın). 37 ° C&#39;de en fazla 5 dakika inkübe edin ve daha sonra 4x&#39;lik bir objektifle ters ışık mikroskopu altında 50 μL&#39;lik bir damla damlası kontrol edin. NOT: Elektroporasyondan sonra hücre hayatta kalmasını arttırdığı için 10-15 hücrenin kümeleri arzu edilir. </li><li> Hücre süspansiyonunu düşük bağlayıcı 15 mL tüpe aktarın veAntibiyotiksiz bazal ortamdan 9 mL eklenerek ayrılma (bkz. Tablo 2 ). Oda sıcaklığında, 600 xg&#39;de 5 dakika süreyle santrifüjleyin, sonra süpernatanı atın ve topağı 1 mL düşük serum ortamında tekrar süspansiyon haline getirin (Malzeme Listesine bakın ). </li><li> Bürker&#39;in odasıyla hücrelerin sayısını sayın ve elektroporasyon reaksiyonu başına en az 1 x 10 5 hücre kullanın. 9 mL düşürülmüş serum ortamı 15 mL tüp içine ilave edin ve 400 x g&#39;de 3 dakika oda sıcaklığında santrifüjleyin. </li></ol></li><li> Elektroporasyon NOT: Aşağıdaki bölümlerde, elektroporasyonun nasıl gerçekleştirileceği ve daha sonra organoidlerin iyileştirilmesi hakkında talimatlar verilmektedir. <ol><li> Süpernatanın tümünü çıkarın ve pelleti bir elektroporasyon çözeltisi içinde tekrar süspanse edin (bkz . Malzeme Listesi ). Hücre süspansiyonuna toplam 10 mikrogram DNA ekleyin ve 100 uL&#39;lik bir son hacme elektroporasyon çözeltisi ekleyin ve hücre-DN&#39;yi koruyunBuz üzerinde bir karışım. CRISPR-konektamer vektörlerini bir Cas9 ifade plazmidiyle ( örn. Addgene # 41815) 1: 1 oranında kullanın. NOT: Eklenen DNA&#39;nın toplam hacmi, toplam reaksiyon hacminin% 10&#39;undan az veya ona eşit olmalıdır. </li><li> Transfeksiyon verimliliğini değerlendirmek için bir GFP plazmiti içeren ayrı bir transfeksiyon karışımı ekleyin ( örn. PCMV-GFP, Addgene # 11153 veya herhangi bir genel GFP ifade plasmidi). </li><li> Hücre-DNA karışımını elektroporasyon küvetine ekleyin ve elektroporatör odasına yerleştirin. Elektroporatör üzerindeki uygun düğmeye basarak empedansı ölçün ve 0.030-0.055 Ω olduğundan emin olun. Tablo 3&#39;te gösterilen ayarlara göre elektroporasyon uygulayın. NOT: Empedans değeri izin verilen aralığın dışına çıkarsa, küvet içindeki çözelti hacmini ayarlayın. </li><li> Küvet üzerine 400 μL elektroporasyon tamponu + Y-27632 ekleyin ve daha sonra tümü 1.5 mL&#39;lik bir tüpe aktarın. IncubaTe, oda sıcaklığında 30 dakika dinlendirilerek hücrelerin geri kazanılmasına ve daha sonra bunları 400 x g&#39;de 3 dakika boyunca oda sıcaklığında döndürmeye bırakılmıştır. </li><li> Süpernatantı çıkarın ve peleği 20 mcL / bodrum matrisinde tekrar süspanse edin. 48 oyuklu bir plakada göz başına yaklaşık 1 x 10 4 ila 1 x 10 5 hücre tohumlayın ve EN + CHIR99021 + Y-27632 +% 1.25 v / v DMSO ortamı ekleyin. 37 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> 5. günde, ortamı EN + CHIR99021 + Y-27632&#39;ye değiştirin ve GFP ifadesini gözleyerek transfeksiyon verimliliğini kontrol edin ( Şekil 2 ). Organoidleri 37 ° C&#39;de tutun ve 2 gün sonra EN + CHIR99021 + Y-27632 orta tazeleyin. </li><li> 9. günde, ortamı WENR + Nic + Y-27632&#39;ye değiştirin ve 37 ° C&#39;de inkübe edin. NOT: Y-27632, 7-10 gün sonra (16-19 günlerinde) çıkarılabilir. </li></ol></li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td></td><td> Kaplama darbesi </strong&gt; </td><td> Transfer nabzı </td></tr><tr><td> Voltaj </td><td> 175V </td><td> 20V </td></tr><tr><td> Darbe uzunluğu </td><td> 5 ms </td><td> 50 mms&#39;den </td></tr><tr><td> Darbe aralığı </td><td> 50 mms&#39;den </td><td> 50 mms&#39;den </td></tr><tr><td> Bakliyat sayısı </td><td> 2 </td><td> 5 </td></tr><tr><td> Çürüme oranı </td><td> % 10 </td><td> % 40 </td></tr><tr><td> Polarite </td><td> + </td><td> +/- </td></tr></tbody></table> Tablo 3: Elektroporasyon Ayarları. 4. Büyüme Faktörü Para Çekme Not: Burada, bağırsak organoidlerinde Wnt yolağının negatif regülatörlerini çalarak bir büyüme faktörü geri çekme deneyinin nasıl yürütüleceği örneklendirilmektedir. <ol><li> 10-14 gün sonraR elektroporasyonunda, yukarıda sözü edilen (3.2.1 - 3.2.2) adımları izleyerek organoidleri 48 oyuklu bir plakada 1: 3 oranında bölün. </li><li> Organoid pelleti 20 μL Bazal membran matrisinde süspansiyon haline getirin ve 10 dakika boyunca 37 ° C&#39;de katılaşmasına izin verin. Daha sonra, dönüştürücü büyüme faktörü-yoksun ortam katlamalı 250 uL (EN) hedef genlerin nakavt 5 elde olup olmadığını test etmek için. </li><li> Vahşi tipli vahşi tip (WT) kontrol organoidleri ve mutant organoidler arasındaki yaşamsal farklılığı görmek için organoidleri büyüme faktörü yoksun koşullar altında minimum 2 - 3 pasajda bölün. 5 , 15 . NOT: Vahşi organoitler, büyüme faktöründen yoksun ortamda iki pasajda hayatta kalamaz, mutant hatlar büyüyebilmelidir. </li></ol>

<ol><li>Mali, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-Guided+Human+Genome+Engineering+via+Cas9%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">RNA-Guided Human Genome Engineering via Cas9.</a> Science. 339 (6121), 823-826 (2013).</li>
<li>Koike-Yusa, H., Li, Y., Tan, E. -P., Velasco-Herrera, M. D. C., Yusa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+recessive+genetic+screening+in+mammalian+cells+with+a+lentiviral+CRISPR-guide+RNA+library%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotech%22%5BJournal%5D)">Genome-wide recessive genetic screening in mammalian cells with a lentiviral CRISPR-guide RNA library.</a> Nat Biotech. 32 (3), 267-273 (2014).</li>
<li>Bassett, A. R., Kong, L., Liu, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Genome-Wide+CRISPR+Library+for+High-Throughput+Genetic+Screening+in+Drosophila+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Genet+Genomics%22%5BJournal%5D)">A Genome-Wide CRISPR Library for High-Throughput Genetic Screening in Drosophila Cells.</a> J Genet Genomics. 42 (6), 301-309 (2015).</li>
<li>Diss, G., Ascencio, D., DeLuna, A., Landry, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+paralogous+compensation+and+the+robustness+of+cellular+networks%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Zool+B+Mol+Dev+Evol%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of paralogous compensation and the robustness of cellular networks.</a> J Exp Zool B Mol Dev Evol. 322 (7), 488-499 (2014).</li>
<li>Andersson-Rolf, A., Merenda, A., Mustata, R. C., Li, T., Dietmann, S., Koo, B. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+paralogue+knockout+using+a+CRISPR-concatemer+in+mouse+small+intestinal+organoids%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Simultaneous paralogue knockout using a CRISPR-concatemer in mouse small intestinal organoids.</a> Dev Biol. 420 (2), 1-7 (2016).</li>
<li>Ran, F. A., Hsu, P. P. D., Wright, J., Agarwala, V., Scott, D., Zhang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome+engineering+using+the+CRISPR-Cas9+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system.</a> Nat Protoc. 8 (11), 2281-2308 (2013).</li>
<li>Engler, C., Gruetzner, R., Kandzia, R., Marillonnet, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Golden+gate+shuffling%3A+A+one-pot+DNA+shuffling+method+based+on+type+IIs+restriction+enzymes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Golden gate shuffling: A one-pot DNA shuffling method based on type IIs restriction enzymes.</a> PLoS ONE. 4 (5), (2009).</li>
<li>Sakuma, T., Nishikawa, A., Kume, S., Chayama, K., Yamamoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+genome+engineering+in+human+cells+using+all-in-one+CRISPR%2FCas9+vector+system%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Multiplex genome engineering in human cells using all-in-one CRISPR/Cas9 vector system.</a> Sci Rep. 4 (5), 5400(2014).</li>
<li>Kabadi, A. M., Ousterout, D. G., Hilton, I. B., Gersbach, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+CRISPR%2FCas9-based+genome+engineering+from+a+single+lentiviral+vector%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Multiplex CRISPR/Cas9-based genome engineering from a single lentiviral vector.</a> Nucleic Acids Res. 42 (19), 1-11 (2014).</li>
<li>Yin, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiplex+Conditional+Mutagenesis+Using+Transgenic+Expression+of+Cas9+and+sgRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Multiplex Conditional Mutagenesis Using Transgenic Expression of Cas9 and sgRNAs.</a> Genetics. 200 (2), 431-441 (2015).</li>
<li>Cress, B. F., Toparlak, O. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPathBrick%3A+Modular+Combinatorial+Assembly+of+Type+II-A+CRISPR+Arrays+for+dCas9-Mediated+Multiplex+Transcriptional+Repression+in+E.+coli%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Synth+Biol%22%5BJournal%5D)">CRISPathBrick: Modular Combinatorial Assembly of Type II-A CRISPR Arrays for dCas9-Mediated Multiplex Transcriptional Repression in E. coli.</a> ACS Synth Biol. 4 (9), 987-1000 (2015).</li>
<li>Froger, A., Hall, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transformation+of+plasmid+DNA+into+E.+coli+using+the+heat+shock+method%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Transformation of plasmid DNA into E. coli using the heat shock method.</a> J Vis Exp. (6), e253(2007).</li>
<li>Zimmermann, J., Voss, H., Schwager, C., Stegemann, J., Ansorge, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+Sanger+dideoxy+sequencing+reaction+protocol%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Letters%22%5BJournal%5D)">Automated Sanger dideoxy sequencing reaction protocol.</a> FEBS Letters. 233 (2), 432-436 (1988).</li>
<li>Fujii, M., Matano, M., Nanki, K., Sato, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+genetic+engineering+of+human+intestinal+organoids+using+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Efficient genetic engineering of human intestinal organoids using electroporation.</a> Nat. Protoc. 10 (10), 1474-1485 (2015).</li>
<li>Andersson-Rolf, A., Fink, J., Mustata, R. C., Koo, B. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+video+protocol+of+retroviral+infection+in+primary+intestinal+organoid+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A video protocol of retroviral infection in primary intestinal organoid culture.</a> J Vis Exp. (90), e51765(2014).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok. Yazarlar, çıkar çatışması ilan etmedi.

Bu protokolde, CRISPR-concatemers üretmek için gerekli tüm adımları ve fare bağırsak organoitlerinde aynı anda birden fazla geni çürütmek için CRISPR-konkanteemleri uygulayacağız. Daha önce de belirtildiği gibi, bu strateji, hızı, yüksek verimliliği ve maliyet etkinliği gibi birçok avantaja sahiptir. Bütün prosedürü başarıyla yerine getirmek için, dikkate alınması gereken birkaç kritik husus vardır. Öncelikle, tüm gRNA oligolarının düzgün bir şekilde tavlanması ve fosforile edilmesi esastır; çünkü bunlar kendi başına çok etkili olan Bbs I klonlama reaksiyonunun başlangıç ​​materyalini temsil eder. İkincisi, organoidleri elektroporasyona tabi tuttuğunda, durum başına daha fazla hücre kullanılırsa, mümkün olan en fazla transfeksiyon etkinliği o kadar yüksek olur. Ek olarak, hücre ayrışmasının ardından küçük hücrelerin kümelenmeleri tek hücrelere üstün olduğu da önemlidir. Bununla birlikte, teknik prob ile karşılaşmak mümkündür.Klonlama veya transfeksiyon ilk kez denendiğinde lems; GRNA klonlaması sırasında sorunlar olması durumunda, gRNA oligo dizisini iki kez kontrol etmeniz ve doğruysa, kısıtlama sindirim taraması için ilave bakteri kolonileri seçmeniz önerilir. Transfeksiyon etkinliği ve hücre yaşayabilirliği elektroporasyondan düşükse, durum başına daha fazla hücre kullanarak protokolü tekrar etmeniz ve hücre ayrılma süresini 3 dakikaya düşürmeniz önerilir. CRISPR-konkantemlerin üretimi nispeten ucuz ve kolay olmasına rağmen, organoidlerde daha büyük çaplı genetik ekranlar yapmak, ölçek organik kültür ile ilişkili maliyetlerle ve emek yoğun doğasıyla sınırlı olmadığı için değil. Bu durumda, CRISPR-konkantem yönteminin HEK293 ve fare embriyonik kök hücreleri gibi hücre hatlarıyla da uyumlu olduğunu belirtmek gerekir. Hücresel sistem ne olursa olsun, bu durumun bir başka potansiyel dezavantajıÜç ya da dört farklı genin aynı anda nakavt edilmesini amaçlarken yönelime rastlanabilir. Örneğin, her bir gRNA&#39;nın farklı bir hedefleme etkinliği olacaktır ve aynı anda tüm genlere çarpma değişiklikleri nispeten düşük olabilir; Bu nedenle, aynı gene karşı birden fazla gRNA yönlendirmek için konsatemer sistemi kullanmanız önerilir. Benzer şekilde Golden Gate karıştırmaya dayanan alternatif stratejiler, çok katlı gRNA vektörlerini 7 , 8 üretmek için yıllar içinde önerildi. Bununla birlikte, yöntemimizde paralogları hedeflemek için gRNA kütüphaneleri üretmek için uygun hale getiren, tek bir retroviral vektöre doğrudan klonlamanın tek bir turunda birden fazla gRNA&#39;yı bir araya getirmek mümkündür. CRISPR-konsatremeri MSCV retroviral vektör omurgasında inşa edilmiştir. Böylece, gRNA konkanteri ihtiva eden retrovirüs, aşırı ifade eden kararlı hücre çizgileri üretmek için kullanılabilirRess gRNA&#39;ları. Bir Cas9-uyarılabilir sistemle kombine edildiğinde, sistemimiz kullanılarak uyarılabilir paralog knockouts gerçekleştirebilir. Özetle, burada bir adımda aynı vektöre dört farklı gRNA&#39;nın nasıl klonlanacağını ve bu stratejinin yüksek bir transfeksiyon etkinliği ile organoid kültürüne nasıl uygulandığını açıklıyoruz. Ayrıca, tüm prosedür boyunca başarı şansını en üst düzeye çıkarmak için yararlı öneriler sunuyoruz.

An erratum was issued for: <a href="https://www.jove.com/video/55916/a-protocol-for-multiple-gene-knockout-mouse-small-intestinal">A Protocol for Multiple Gene Knockout in Mouse Small Intestinal Organoids Using a CRISPR-concatemer</a>. There was a typo in step 3.3 of the Protocol.

Erratum: A Protocol for Multiple Gene Knockout in Mouse Small Intestinal Organoids Using a CRISPR-concatemer

Ters genetik yaklaşım, bir genin işlevini araştırmak için yaygın olarak kullanılan bir yöntemdir. Özellikle, bir genin parçalanmasının fenotipik değişikliklere neden olduğu fonksiyon kaybı çalışmaları, biyolojik süreçler konusundaki anlayışımızı oluşturmakta önemli bir rol oynamaktadır. CRISPR / Cas9 yöntemi, genom mühendisliği teknolojisindeki en son ilerlemeyi temsil eder ve mevcut hücre ve organizma genetik pratiğini geliştirmiştir. Cas9, gRNA&#39;ya komplementer spesifik bir DNA sekansına bağlanan ve bir çift telli kopuk (DSB) üreten bir RNA yönlendirmeli endonükleazdır. Bu DSB, homolog rekombinasyon için bir DNA şablonunun yokluğunda kesilen DNA iplikçiklerini hataya eğilimli, homolog olmayan bir uç birleştirme yoluyla yeniden bağlayacak olan DNA tamir makinelerini işe alıyor; bu da, nükleotid (ler) in eklenmesine veya silinmesine neden olabilir; FrameShift Mutasyonlarına Neden Olur 1 . CRISPR / Cas9 uygulamasının büyük kolaylığı ve çok yönlülüğüOach, bilinmeyen gen fonksiyonlarının çözülmesini amaçlayan genom ölçekli nakavt ekranları için oldukça cazip bir araç yaptı. 2 , 3 . Bununla birlikte, gereksiz işlevlere sahip birden çok paralog varsa, tek genli nakavt yaklaşımları sınırlı bir şekilde kullanılmaktadır. Bu nedenle, tek bir gen ablasyon çok az veya hiç fenotipik değişiklik 4&#39;te elde edilen paralogues mümkün dengeleme verilen gen fonksiyonunu belirlemek için yeterli olmayabilir. Bu nedenle, genetik kompozisyonun etkisinin üstesinden gelmek için farklı paralog genleri hedef alan birden çok gRNA vektörü göndererek paralogları paralel olarak ele geçirmek önemlidir. CRISPR / Cas9&#39;un paralog gen nakavtına kullanımını genişletmek için, son zamanlarda, dört önceden-tavlanmış gRNA&#39;yı tek bir retroviral vektör 5&#39;e klonlamak için hızlı, tek aşamalı bir klonlama yöntemi geliştirdik. CRISPR-konkantör adı verilen omurgaTekrarlayan gRNA ekspresyon kasetleri içeren bir MSCV retroviral plasmid üzerinde. Her bir kaset, tek bir tüpe 6&#39;da bir Golden Gate karıştırma reaksiyonu kullanılarak çıkıntılar eşleşen eşzamanlı olarak tavlanmış bir gRNA oligo ile değiştirilebilen Type IIS kısıtlama enzimi Bbs I&#39;in iki ters çevrilmiş tanıma bölgesi içerir. Bu klonlama yöntemi, Bbs I tarafından üretilen farklı çıkıntı diziliminden istifade ederek, birden fazla DNA fragmanının eşzamanlı olarak bir araya getirilmesine olanak sağlayan, sindirim ve ligasyonun tekrar eden döngülerinden oluşur. Bu enzimin eşsizliği, örneğin, tanımanın dışında asimetrik kesikler yapma kabiliyetidir sıra; Bu nedenle, her kaset, Bbs I çekirdeği alanını çevreleyen özel çıkıntılar ile farklı bir diziye sahip olabilir ve bu şekilde, her bir gRNA, konsatemer vektörünün belirli bir konumunda ve yönünde klonlanabilir. Prensip belgesi olarak, bu stratejininFare elektroporasyon 5 bir tur ile eş zamanlı olarak, Wnt yolunun paralog negatif regülatörleri iki çift bozarak bağırsak organoids. Son birkaç yılda pek çok başka grup, insan hücre çizgileri 8 , 9 , zebra balığı 10 ve Escherichia coli gibi çeşitli model sistemlerinde çoklu gen nakavtını başarmak için Golden Gate karıştırma 7 kullanılarak oluşturulan çoklu gRNA ekspresyon vektörlerine dayanan benzer stratejiler geliştirdi. 11 . Protokollerinde, gRNA&#39;lar önce bireysel ara vektörlere klonlanır ve daha sonra bir araya getirilerek nihai bir ürün haline getirilir. Buna karşılık, CRISPR-concatemer stratejimizin en önemli avantajı, tek bir Bbs I karıştırma, klonlama basamağının kolaylığıdır. Diğer gRNA konkantemleri gibi, yöntemimiz de dört&#39;e kadar eşzamanlı nakavt yapılmasını mümkün kılarFarklı genler veya birden fazla gRNA ile bir veya iki genin hedeflenmesini takiben artmış CRISPR nakavt etkinliği ( Şekil 1 ). Bu protokolde, gRNA tasarımından Golden Gate reaksiyonuna kadar başarılı bir klonlamanın onaylanması için, CRISPR-konkantem vektörlerinin oluşumundaki her adımı ayrıntılı olarak açıklıyoruz. Ayrıca, elektroporasyon ve daha sonra büyüme faktörü geri çekme deneyleriyle, fare küçük bağırsak organoitlerine CRISPR-konkantemlerin transfeksiyonu için son derece verimli bir protokol sunuyoruz.

<table><tbody><tr><td>Optimize Edilmiş CRISPR Tasarım Aracı</td><td>Feng Zhang grubu</td><td></td><td>CRISPR gRNA tasarım aracı; http://crispr.mit.edu/</td></tr> <tr><td>Webcutter 2.0</td><td></td><td></td><td>kısıtlama haritalama aracı; http://rna.lundberg.gu.se/cutter2/</td></tr> <tr><td>T4 PNK (Polinükleotid Kinaz)</td><td>New England Biolabs</td><td>M0201L</td><td></td></tr><tr><td>T4 DNA ligaz tamponu</td><td>New England Biolabs</td><td>M0202S</td><td></td></tr><tr><td>T7 DNA Ligase</td><td>New England Biolabs</td><td>M0318L</td><td></td></tr><tr><td>DTT (ditiyotreitol)</td><td>Promega</td><td>P1171</td><td></td></tr><tr><td>ATP (adenozin trifosfat)</td><td>New England Biolabs</td><td>P0756S</td><td></td></tr><tr><td>FastDigest BbsI (BpiI)</td><td>Thermo Fisher</td><td>FD1014</td><td></td></tr><tr><td>Tango tamponu (BSA içeren kısıtlama enzimi tamponu)</td><td>Thermo Fisher</td><td>BY5</td><td></td></tr><tr><td>BglII</td><td>New England Biolabs</td><td>R0144</td><td></td></tr><tr><td>EcoRI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0101</td><td></td></tr><tr><td>Plazmid güvenli eksonükleaz</td><td>Cambio</td><td>E3101K</td><td></td></tr><tr><td>Termal döngüleyici</td><td>Uygulamalı biyosistemler</td><td>4359659</td><td></td></tr><tr><td>10G yetkin E. coli bakterileri</td><td>Cambridge Bioscience</td><td>60108-1</td><td></td></tr><tr><td>Plazmid mini kiti</td><td>Qiagen</td><td>12125</td><td></td></tr><tr><td>Masa üstü mikrosantrifüj</td><td>Eppendorf</td><td>UY-02580-01</td><td></td></tr><tr><td>Aşılama döngüleri</td><td>Microspec</td><td>PLS5</td><td></td></tr><tr><td>Bakteri inkübatörü</td><td>Sanyo</td><td>MIR-262</td><td></td></tr><tr><td>Luria-Bertani suyu (LB)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L3522</td><td></td></tr><tr><td>Agaroz</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4718</td><td></td></tr><tr><td>Agaroz jel elektroforez cihazı</td><td>Bioneer</td><td>A-7020</td><td></td></tr><tr><td>Gelişmiş DMEM/F12 (hücre kültürü ortamı)</td><td>İnvitrojen</td><td>12634-034</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax (L-Glutamin) 100x</td><td>Invitrogen</td><td>35050-068</td><td></td></tr><tr><td>HEPES 1 M (tamponlama maddesi)</td><td>İnvitrojen</td><td>15630-056</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin-streptomisin 100x</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>B27 takviyesi (Nöronal hücre serumsuz takviye) 50x</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>N2 takviyesi (Nöronal hücre serumsuz takviyesi) 100x</td><td>Invitrogen</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>n-Asetilsistein 500 mM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9165-5G</td><td></td></tr><tr><td>Fare EGF 500 &mikro; g/mL</td><td>Invitrogen Biosource</td><td>PMG8043</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Noggin 100 & mikro; g/mL</td><td>Peprotech</td><td>250-38</td><td></td></tr><tr><td>Nikotinamid 1 M</td><td>Sigma</td><td>N0636</td><td></td></tr><tr><td>R-Spondin şartlandırılmış besiyeri</td> n.a.n.a.HEK293 <td></td><td></td><td>hücrelerinden evde üretilmiştir, ayrıntılar için bakınız Sato ve Clevers 2013</td></tr><tr><td>Wnt şartlandırılmış ortam</td><td>n.a.n.a.HEK293</td><td></td> <td>hücrelerinden evde üretilmiştir, detaylar için bakınız Sato and Clevers 2013</td></tr><tr><td>Y-27632 10 &mikro; M</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Y0503-1MG</td><td></td></tr><tr><td>Standart BD Matrigel</td><td>matrisi BD Biosciences</td><td>356231</td><td></td></tr><tr><td>48 kuyulu Plaka</td><td>Greiner Bio One</td><td>677980</td><td></td></tr><tr><td>CHIR99021</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3734-1MG</td><td></td></tr><tr><td>IWP-2</td><td>Hücre Yönlendirme Sistemleri</td><td>SM39-10</td><td></td></tr><tr><td>TripLE (rekombinant proteaz)</td><td>İnvitrojen</td><td>12605-010</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM (indirgenmiş serum ortamı)</td><td>Yaşam teknolojileri</td><td>51985-034</td><td></td></tr><tr><td>Elektroporasyon Küvetleri 2 mm boşluk</td><td>NepaGene</td><td>EC-002S</td><td></td></tr><tr><td>Düşük bağlayıcı 15 mL tüpler</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS430791</td><td></td></tr><tr><td>B&uuml; rker' s odası</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>BR719520-1EA</td><td></td></tr><tr><td>NEPA21 Süper Elektroporatör</td><td>NepaGene</td><td>iletişim tedarikçisi</td><td></td></tr><tr><td>Protein LoBind tüpleri düşük bağlayıcı</td><td>Thermo Fisher</td><td>10708704</td><td></td></tr><tr><td>BTXpress elektroporasyon tamponu</td><td>Harvard Aparatı</td><td>45-0805</td><td></td></tr><tr><td>DMSO (Dimetil sülfoksit)</td> <td>AppliChem</td><td>A3672</td><td></td></tr></tbody></table>

bir crispr-konkantör kullanarak fare küçük bağırsak organoidleri Üzerinde birden fazla gen kıyamet protokolü

A Protocol for Multiple Gene Knockout in Mouse Small Intestinal Organoids Using a CRISPR-concatemer

CRISPR / Cas9 teknolojisi, gen fonksiyonunu anlamada gerekli olan fonksiyon kaybı çalışmalarının fizibilitesini ve hızını büyük ölçüde geliştirmiştir. Yüksek ökaryotlarda, paralog genler, bir genin kaybını telafi ederek potansiyel bir fenotipi maskeleyebilir ve böylece, tek gen nakavtına dayanan genetik araştırmalardan elde edilebilecek bilgileri sınırlayabilir. Fare küçük bağırsak organoitlerinde tek bir transfeksiyon sonrasında çoklu gen nakavtları yaratmak için kılavuz RNA (gRNA) konsatemeri için yeni ve hızlı bir klonlama yöntemi geliştirdik. Stratejimiz, tavlanmış gRNA oligoları ve önceden tasarlanmış bir retroviral vektör ile tek bir Golden Gate karıştırma reaksiyonu gerçekleştirerek, dört tekil gRNA&#39;yı tek bir vektöre konsatemerleştirebilmenizi sağlar. Bu, dört farklı genin aynı anda nakavmesine ya da bir genin birden fazla gRNA tarafından hedeflenmesini takiben arttırılmış nakavt etkinliğine izin verir. Bu protokolde, ayrıntılı olarak gösteriyoruzÇok sayıda gRNA&#39;yı retroviral CRISPR-konkanteemer vektörüne verimli bir şekilde nasıl klonlayabilir ve bağırsak organoidlerinde yüksek verimli elektroporasyon nasıl elde edilir. Örnek olarak, Wnt sinyal yolağının (Axin1 / 2 ve Rnf43 / Znrf3) negatif regülatörlerini kodlayan iki çift genin aynı anda nakavt edilmesinin bağırsak organoidlerini temel büyüme faktörlerinin geri çekilmesine karşı dirençli hale getirdiğini gösteriyoruz.

Konsatemer vektöründe doğru sayıda gRNA eklentisinin varlığını teyit etmek için, tüm gRNA ifade kasetlerini çevreleyen enzimler ( EcoR I + Bgl II) ile kısıtlama sindirimi yapılır (her kaset boyutu ~ 400 bp, Şekil 1 ). Örneğin, 4 gRNA-konsatimer vektör üretirken agaroz jelinde alt grubun beklenen boyutu yaklaşık 1.6 Kbp&#39;dir; Bundan daha düşük herhangi bir bant, 4 gRNA kasetinin tamamının vektöre eklenmediğini gösterir ( Şekil 2A ). Buna ek olarak, her zaman Bbs I tanıma bölgelerinin kaybolduğunu ve enzimin vektörü kesmediğini kontrol etmesi önerilir ( Şekil 2B ). Yapılar teyit edildikten sonra optima elde etmek için elektroporasyon ile fare intestinal organoidlerine verilebilirler.L seviyelerinde transfeksiyon etkinliği (% 70&#39;e kadar), GFP kontrolü ( Şekil 3 ) ile gösterilmiştir. Son olarak, bu stratejinin etkinliğini işlevsel olarak test etmek için Cas9 ile transfekte edilen bağırsak organoidleri ve Axin1 / 2 ve Rnf43 / Znrf3&#39;e karşı konektör vektörleri, EN (R-spondin geri çekilmesi) ve EN + IWP2 (R-spondin ve Wnt geri çekilmesi, IWP2 : Porcupin inhibitörü, 2.5 uM) en az 3 pasaj ( Şekil 4 ) için ortam. Transfekte edilmemiş WT organoitleri her iki koşulda da ölürken, Axin1 / 2 nakavt organoidleri hem Wnt yolağının aşağı aktivasyonu nedeniyle hayatta kalmışlardır; Buna ek olarak, Rnf43 / Znrf3 mutant organoitleri R-spondin yokluğunda hayatta kalırlar ancak yol açan Wnt&#39;in tükenmesine neden olan IWP2 varlığında hayatta kalamazlar. Birlikte ele alındığında, bu gözlemler, bu paralog çiftlerinin nakavt edilmesinin,Organoid fenotipini bekledi. Bu sonuçların ayrıntıları Gelişimsel Biyoloji 5&#39;de yayınlanmıştır. <img alt="Şekil 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55916/55916fig1.jpg" /> Şekil 1: CRISPR-concatemer&#39;in 4 Kaset ile Şematik Olarak Gösterilmesi. Her bir 400 bp&#39;lik kaset ile bir U6 yükseltici, iki ters çevrilmiş Bbs I bölgesi (aynı zamanda BB olarak gösterilir) ve bu sırayla gRNA iskelesi bulunan 4 gRNA-konsatimer vektörünün şeması. Karıştırma reaksiyonu sırasında, Bbs I bölgeleri, çıkıntılar eşleşen gRNA fragmanları ile değiştirilir ve sonuç olarak kaybedilir. GRNA oligolarının doğru eklenmesini kontrol etmek için sıralama primerlerinin bağlanma yerleri mavi oklarla gösterilir. Fwd = ileri primer, Rev = ters primer, Link 1/2/3 = linker bölgeleri 1/2/3. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55916/55916fig1large.jpg" target="_blank">Lütfen c</a>Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için yalamak. <img alt="şekil 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55916/55916fig2.jpg" /> Şekil 2: Concetemer Vektörlerinin Temsilci Sindirim Modelleri. ( A ) EcoR I ve Bgl II ile 3 ve 4 gRNA-konsatema vektörlerinin çift sindirimi. Doğru sindirim modeli yeşil bir işaret ile işaretlenirken, yalnızca 1 veya 2 gRNA eklemeli vektörler kırmızı bir çaprazla işaretlenir. Şerit 1, pozitif kontrol olarak kullanılan (&quot;+&quot; ile işaretlenmiş) bir 4 gRNA-konsatEMer ebeveyn vektörünün sindirimini gösterir; Benzer şekilde, şerit 5, &quot;+&quot; ile işaretlenmiş bir 3 gRNA-konstemer ebeveyn vektörünün sindirimini gösterir. ( B ) Bbs I ile sindirim, sindirilmemiş concatemer vektörlerinin doğru boyutunu (yeşil kenarlar ile gösterilir) gösteren. Bbs I bölgelerini kaybetmiş bir gRNA içeren konsatemer vektörün sindirimi pozitif bir kontrol olarak kullanılır veD &quot;+&quot; ile işaretlenmiştir. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55916/55916fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55916/55916fig3.jpg" /> Şekil 3: Başarılı Elektroporasyona Bağlı Bağırsak Organoitlerinin Temsili Görüntüsü. Transfeksiyon etkinliğini değerlendirmek için bir GFP plazmidinin transfeksiyonu yararlıdır. Elektroporasyondan yaklaşık 24 saat sonra, az sayıda hücre içeren organoidler zaten görülebilir ve elektroporasyon prosedürü başarılı olursa,% 70&#39;e kadar yeşil flüoresan görüntülenir. BF = parlak alan, GFP = yeşil floresan proteini. Ölçek çubuğu = 2.000 μm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55916/55916fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.</a> Şekil 4: Mutant Bağırsak Organoitlerinin Temsilci Görüntüleri. Wnt yolağı Axin1 ve Rnf43&#39;in negatif düzenleyicilerinin nakavtları, paraloglarıyla birlikte, bağırsak organoidlerini büyüme faktörü yoksunluğuna dirençli kılar. Özellikle Axin1 / 2 nakavt organoidleri (Axin1 / 2 KO) R-spondin (EN: EGF + Noggin) ve Wnt (EN + IWP2: EN + Porcupin inhibitörü) yokluğunda büyüyebilirken Rnf43 / Znrf3 mutant organoidleri (R &amp; Z KO), ancak R-spondin (EN) yokluğunda hayatta kalabilir. Buna karşılık, WT organoitler sadece kontrol kültürü durumunda, WENR + Nic (Wnt + EGF + Noggin + R-spondin + Nikotinamid) hayatta kalabilirler. Ölçek çubukları = 1,000 μm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55916/55916fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-Sayfa = &quot;1&quot; fo: keep-with-next.within-sayfa = &quot;her zaman&quot;&gt; <tbody><tr><td> Bazal orta </td><td></td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> 4 ° C&#39;de 4 hafta süreyle saklayın </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Hücre kültürü ortamı </td><td> 500 mL </td><td> Malzeme tablosuna bakınız </td></tr><tr><td> L-Glutamin 100x </td><td> 5 mL </td><td></td></tr><tr><td> Tamponlayıcı madde 1 M </td><td> 5 mL </td><td> Malzeme tablosuna bakınız </td></tr><tr><td> Penisilin Streptomisin 100x </td><td> 5 mL </td><td></td></tr><tr><td> WENR + Nic (Wnt + EGF + Noggin + R-spondin + Nikotinamid) </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 2 hafta boyunca 4 ° C&#39;de saklayın </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Bazal orta </td><td> 50 mL&#39;ye kadar </td><td></td></tr><tr><td> Nöronal hücre serumundan arındırılmış ek madde (50x) </td><td> 1 mL </td><td> Ma tablosuna bakedilen malzemelerden </td></tr><tr><td> Nöronal hücre serumundan arındırılmış ek madde (100x) </td><td> 500 uL </td><td> Malzeme tablosuna bakınız </td></tr><tr><td> N-Asetilsistein (500 mM) </td><td> 125 uL </td><td></td></tr><tr><td> Fare EGF (100 ug / mL) </td><td> 25 uL </td><td></td></tr><tr><td> Fare Noggin (100 ug / mL) </td><td> 50 uL </td><td></td></tr><tr><td> R-Spondin klimalı ortam </td><td> 5 mL </td><td></td></tr><tr><td> Wnt3a klimalı ortam </td><td> 25 mL </td><td></td></tr><tr><td> Nikotinamid (1 M) </td><td> 250 uL </td><td></td></tr><tr><td> EN + KİRAZ + Y-27632 (EGF + Noggin + CHIR + Y-27632) </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 2 hafta boyunca 4 ° C&#39;de saklayın </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Penisilin Streptomisin içermeyen bazal ortam </td><td> 20 mL&#39;ye kadar </td><td></td></tr><tr><td>Nöronal hücre serumundan arındırılmış ek madde (50x) </td><td> 400 μL </td><td> Malzeme tablosuna bakınız </td></tr><tr><td> Nöronal hücre serumundan arındırılmış ek madde (100x) </td><td> 200 uL </td><td> Malzeme tablosuna bakınız </td></tr><tr><td> N-Asetilsistein (500 mM) </td><td> 50 uL </td><td></td></tr><tr><td> Fare EGF (100 ug / mL) </td><td> 10 uL </td><td></td></tr><tr><td> Fare Noggin (100 ug / mL) </td><td> 20 uL </td><td></td></tr><tr><td> Y-27632 (10 uM) </td><td> 20 uL </td><td></td></tr><tr><td> CHIR99021 (8 uM) </td><td> 10 uL </td><td></td></tr><tr><td> EN (EGF + Noggin) </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 4 ° C&#39;de 4 hafta süreyle saklayın </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Bazal orta </td><td> 50 mL&#39;ye kadar </td><td></td></tr><tr><td> Nöronal hücre serumundan arındırılmış ek madde (50x) </td><td&gt; 1 mL </td><td> Bkz. Malzeme Tablosu </td></tr><tr><td> Nöronal hücre serumundan arındırılmış ek madde (100x) </td><td> 500 uL </td><td> Bkz. Malzeme Tablosu </td></tr><tr><td> N-Asetilsistein (500 mM) </td><td> 125 uL </td><td></td></tr><tr><td> Fare EGF (100 ug / mL) </td><td> 25 uL </td><td></td></tr><tr><td> Fare Noggin (100 ug / mL) </td><td> 50 uL </td><td></td></tr></tbody></table> Tablo 2: Organoid Medya Bileşimi.

Bu protokol, CRISPR / Cas9 teknolojisini kullanarak çoklu gen nakavtları yaratmada özel olarak kullanılan bir kılavuz RNA konformemer vektörüne birden fazla tekli kılavuz RNA&#39;yı klonlamak için gereken aşamaları açıklar. Bağırsak organoitlerinde çift nakavt üretimi bu yöntemin olası bir uygulaması olarak gösterilmiştir.

Bir CRISPR-konkantör kullanarak Fare Küçük Bağırsak Organoidleri Üzerinde Birden Fazla Gen Kıyamet Protokolü

CRISPR/Cas9 technology has greatly improved the feasibility and speed of loss-of-function studies that are essential in understanding gene function. In ...

Bu protokolün genel amacı, birden fazla rehber RNA'yı tek bir CRISPR-konkatemer vektörüne klonlamak ve çoklu genlerin aynı anda nakavt edilmesini sağlamak amacıyla fare bağırsak organoidlerinde yüksek verimli elektroporasyon gerçekleştirmektir. Bu yöntem, paralel kompanzasyonun potansiyel etkisini aşmayı mümkün kılarak fonksiyon kaybı çalışmalarının verimliliğini büyük ölçüde artırabilir. CRISPR-konkatemer stratejimizin temel avantajları, tek bir klonlama adımının kolaylığı ve dört farklı gene kadar aynı anda nakavt yapabilme imkanıdır.Prosedürün gösterimi, laboratuvarımdan doktora öğrencisi Alessandra Merenda tarafından gerçekleştirilecektir. Rehber RNA'ların veya gRNA'ların CRISPR-konkatemer vektörüne klonlanması, her bir gRNA oligonükleotidi için üst ve alt zincirlerin tavlanması ve uçlarının fosforillenmesi amacıyla yapılan tek bir reaksiyonla başlar. Üç konkatemer için reaksiyon karışımını buz üzerinde hazırlayın; üç µL üst zincir gRNA, üç µL alt zincir gRNA, iki µL T4 DNA ligaz tamponu, bir µL T4 polinükleotid kinaz ve toplam hacim 20 µL olana kadar su kullanın.Pipetleme yoluyla iyice karıştırın ve termosayklerı şu ayarlarda çalıştırın: 30 dakika boyunca 37 °C, beş dakika boyunca 95 °C, dakikada 0.3 °C hızla 25 °C'ye düşüş ve 4 °C'de bekleme. Bir sonraki adım, önceden tavlanmış gRNA oligonükleotidlerinin konkatemer vektörünün uygun konumlarına yerleştirildiği Bbs1 karıştırma reaksiyonudur. Üçlü ve dörtlü gRNA konkatemer vektörleri oluşturmak için reaksiyon karışımını DNA ve RNA içermeyen su ile 1:100 oranında seyreltin.Bbs1 karıştırma reaksiyonlarını buz üzerinde hazırlayın. 100 nanogram CRISPR-concatemer vektörü, 10 mikrolitre oligo karışımı, bir mikrolitre restriksiyon enzimi tamponu, bir mikrolitre DTT, bir mikrolitre ATP, bir mikrolitre Bbs1 enzimi, bir mikrolitre T7 ligazı ve toplam hacim 20 mikrolitre olana kadar su kullanın. Pipetleme ile iyice karıştırın; vektör içeren bir negatif kontrol ekleyin.Reaksiyonları bir termosiklet cihazında aşağıdaki ayarlarla çalıştırın; üç ve dört gRNA konkatamerinin klonlanması için, 37 °C'de beş dakika ve 21 °C'de beş dakika şeklinde 50 döngü uygulayın, ardından 37 °C'de 15 dakika bekletin ve son olarak süresiz olarak 4 °C'de muhafaza edin. İki gRNA konkatameri için, birinci adımın 25 döngü olduğu aynı ayarları uygulayın. Bbs1 karıştırma reaksiyonu tamamlandığında, her bir ligasyon karışımından 11 µL alın ve toplam hacim 15 µL olacak şekilde 1,5 µL ekzonükleaz tamponu, 1,5 µL ATP, 1 µL DNA ekzonükleazı ve su ekleyin.37 °C'de 30 dakika, ardından 70 °C'de 30 dakika inkübe edin. Sonrasında, reaksiyon karışımı, standart bir protokol izlenerek kimyasal olarak kompetan E.Coli bakterilerini transforme etmek için kullanılır. CRISPR-konkatemer vektöründeki gRNA eklemelerinin varlığını doğrulamak için, bakteri kolonilerini bir ekim halkasıyla seçin ve her birini dört mililitre LB besiyerine inoküle edin.Klonları orbital bir çalkalayıcıda 37 °C'de gece boyunca büyütün. Ertesi gün, üretici talimatlarına uygun olarak bir plazmid miniprep kiti kullanılarak DNA ekstre edilir. Her bir DNA örneğinden yaklaşık 200 ng'ı, 10 µL'lik bir reaksiyonda 10 ünite EcoR1 ve beş ünite BglII ile karıştırın.Boyut karşılaştırması için pozitif kontrol olarak, ilgili orijinal vektörü içeren ayrı bir reaksiyon karışımı ekleyin. Reaksiyonları 37 °C'de üç saat boyunca inkübe edin. Sindirim reaksiyonlarını %1'lik agaroz jel üzerinde 90 V'da yaklaşık 20 dakika boyunca yürütün.Doğru insert boyutuna sahip klonları belirlemek için jeli bir UV transilüminatör kullanarak görüntüleyin. gRNA'ların doğru konuma klonlandığını ve sonuç olarak tüm Bbs1 tanıma bölgelerinin kaybolduğunu doğrulamak için, seçilen klonları beş ünite Bbs1 ile sindirin. Kontrol olarak, karşılık gelen orijinal vektörü içeren ayrı bir reaksiyon karışımı ekleyin.37 °C'de üç saat boyunca inkübe edin, ardından sindirim reaksiyonlarını %1'lik agaroz jel üzerinde 90 volt ile yaklaşık 20 dakika boyunca yürütün. Bbs1 tarafından kesilmeyen vektörleri tanımlamak için jeli bir UV transilüminatör kullanarak görselleştirin. Elektroporasyon için organoidleri ayırırken, transveksiyon başına 48 kuyucuklu bir plakanın en az altı kuyucuğuna ekim yapın.Organoidleri 20 µL bazal matris damlacıklarına ekimleyin ve bunları nemlendirilmiş bir inkübatörde, 37 °C ve %5 CO2 altında, kuyuk başına 250 µL WENR artı nikotinamid ortamında büyütün. İkinci günde, WENR artı nikotinamid ortamını, antibiyotiksiz 250 µL EGF artı noggin, GSK3 inhibitörü ve rock inhibitörü ortamı ile değiştirin. Üçüncü günde, organoid ortamını antibiyotiksiz EGF artı noggin, GSK3 inhibitörü, rock inhibitörü ve %1,25 DMSO ile değiştirin.Dördüncü günde, bir mililitrelik pipet ucu kullanarak bazal matris kubbelerini dağıtın ve organoidleri 1,5 mililitrelik bir tüpe aktarın. 48 kuyucuklu bir plakanın dört kuyucuğundaki içeriği tek bir tüpe çekin. P200 pipet ile yaklaşık 200 kez aşağı yukarı pipetleyerek organoidleri mekanik olarak küçük parçalara ayırın.Oda sıcaklığında, 600 ×g hızda beş dakika boyunca santrifüjleyin. Santrifüj işleminden sonra, tüm tüplerdeki besiyerini uzaklaştırın ve peletleri bir mililitre hücre kültürüye uygun rekombinant proteaz içerisinde yeniden süspande edin. 37 °C'de en fazla beş dakika inkübe edin.Proteaz işleminin dikkatle izlenmesi önemlidir çünkü elektroporasyonun başarısı, tek hücreler yerine hücre kümeleri içeren bir hücre süspansiyonu elde edilmesine bağlıdır. Örnekten 50 µL'lik bir damlayı, dört kat objektifli bir ters ışık mikroskobu altında kontrol edin. Elektroporasyon sonrası hücre sağkalımını artırdığı için 10 ila 15 hücreli kümeler tercih edilir.Hücre süspansiyonunu düşük bağlanma özelliğine sahip 15 mililitrelik bir tüpe aktarın ve antibiyotiksiz dokuz mililitre bazal ortam ekleyerek disosiyasyonu durdurun. Oda sıcaklığında, 600 ×g'de beş dakika boyunca santrifüj edin. Süpernatantı uzaklaştırın ve pellet'i bir mililitre düşük serumlu ortamda yeniden süspanse edin.Burker kamarası kullanarak hücre sayımını yapın; her elektroporasyon reaksiyonu için minimum 1 × 10⁵ hücre gereklidir. Hücre süspansiyonunu içeren 15 ml tüpe 9 ml düşük serumlu besiyeri ekleyerek bu prosedüre başlayın ve oda sıcaklığında, 400 ×g hızda üç dakika boyunca santrifüjleyin. Tüm süpernatantı uzaklaştırın ve peleti bir elektroporasyon çözeltisi içinde yeniden süspande edin.İki yeni tüpe toplam 10 µg DNA ekleyin. Ardından, son hacim 100 µL olacak şekilde elektroporasyon çözeltisi ekleyin ve hücre-DNA karışımını buz üzerinde muhafaza edin. Hücre-DNA karışımını elektroporasyon küvetine aktarın ve küveti elektroporatör haznesine yerleştirin.Elektroporatör üzerindeki uygun düğmeye basarak empedansı ölçün ve değerin 0,030 ile 0,055 ohm arasında olduğundan emin olun. Metin protokolünde belirtilen ayarlara göre elektroporasyon işlemini gerçekleştirin. Küvete 400 microliter elektroporasyon tamponu ile rock inhibitörü ekleyin ve ardından tüm içeriği 1,5 milliliter'lik bir tüpe aktarın.Hücrelerin toparlanmasına izin vermek için oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edin. 30 dakika sonra, oda sıcaklığında 400 ×g'de üç dakika santrifüjleyin. Süpernatantı uzaklaştırın ve pelletleri kuyu başına 20 µL bazal matriste yeniden süspanse edin.48 kuyucuklu bir plakadaki kuyucuk başına yaklaşık 1x10⁴ ile 1x10⁵ hücre ekleyin ve EGF artı noggin, GSK3 inhibitörü, rock inhibitörü ve %1,25 dimetil sülfoksit içeren besiyeri ekleyin. 37 °C'de inkübe edin. Ertesi gün, besiyerini EGF artı noggin, GSK3 inhibitörü ve rock inhibitörü ile değiştirin ve GFP ekspresyonunu gözlemleyerek transfeksiyon verimliliğini kontrol edin.Organoidleri 37 °C'de tutun. İki gün sonra, besiyerini taze besiyeri ile değiştirin. Elektroporasyondan dört gün sonra, besiyerini nikotinamid ve ROCK inhibitörü içeren WENR besiyeri ile değiştirin ve hücreleri 37 °C'de inkübe etmeye devam edin.Konkatemer vektördeki doğru sayıda gRNA eklenmesi, EcoR1 ve BglII ile çift kısıtlama sindirimi yapılarak doğrulanır. Alt bandın beklenen boyutu, dörtlü gRNA konkatemer vektörü için yaklaşık 1,6 kilobaz ve üçlü gRNA konkatemer vektörü için 1,2 kilobazdır. Ek olarak, Bbs1 ile sindirim, gRNA'ların doğru konuma klonlandığını ve dolayısıyla tüm Bbs1 tanıma bölgelerinin kaybolduğunu doğrular.Doğrulanmış konstrüktler, GFP ekspresyonu ile gösterildiği üzere %70'e varan bir transveksiyon verimliliği elde etmek için elektroporasyon yoluyla fare intestinal organoidlerine aktarılır. Bu videoyu izledikten sonra, aynı anda birden fazla geni nakavt etmek amacıyla gRNA konkatemer vektörlerinin nasıl oluşturulacağı ve elektroporasyon kullanılarak 3D organoid kültürlerine nasıl verimli bir şekilde aktarılacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

a-protocol-for-multiple-gene-knockout-mouse-small-intestinal

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu videoda, kültürlenmiş fare bağırsak organoid hücrelerinde birden fazla geni aynı anda devre dışı bırakmak için bir CRISPR birleştirici kullanan bir gen nakavt tekniği açıklanmaktadır. Bu yöntem, hastalıklı bir geni devre dışı bırakmak ve bir genin ve paraloglarının işlevini aydınlatmak için kullanılır.

CRISPR Birleştirici Aracılı Çoklu Gen Nakavt: Fare Bağırsak Hücrelerinde Homolog Olmayan Uç Birleştirme Yolu ile Birden Fazla Geni Aynı Anda Nakavt Etme Tekniği

Bu video protokolünde, primer intestinal epitel organoidlerinde lentiviral transdüksiyonun ve bu kültürlerin kantitatif RT-PCR, RNA-mikroarray ve immünohistokimya ile işlenmesi ve aşağı akış analizinin adım adım açıklamasını veriyoruz.

Lentiviral İletim ve Bağırsak Organoids Mansabında Analizi için Protokol

Fare oositlerinin mikroenjeksiyonu hem klasik transgenezis ( yani, transgenlerin rastgele bütünleşmesi) hem de CRISPR aracılı gen hedeflemesi için yaygın olarak kullanılır. Bu protokol, kalite kontrolü ve genotiplendirme stratejileri üzerinde özel bir vurguyla mikroenjeksiyondaki en son gelişmeleri gözden geçiriyor.

Oositlerin Mikroenjeksiyonu ile Genetiği Değiştirilmiş Farelerin Üretilmesi

Biz adım adım talimatları tarif: 1) etkin bir şekilde bağırsak organoidleri Lenti-veya retroviral dönüştürücü için manyetik nano maddeler kullanarak mühendis ve 2) mühendislik organoidler dondurulmuş bölümler oluşturmak. Bu yaklaşım, akım etkilerinin incelenmesi için organoidlerde gen ifadesini verimli bir şekilde değiştirmek için güçlü bir araç sağlar.

Primer fare bağırsak Organoidlerin genetik mühendisliği dondurulmuş bölümleme için Manyetik Nano madde dönüştürücü viral vektörler kullanma

Bu protokol, daha büyük plazmidlere sahip dört farklı gastrointestinal organoid varlığın transfeksiyonu için etkili bir elektroporasyon yöntemini açıklar (10 kB ölçüde). Bir gün içinde yapılabilir ve kapsamlı hazırlık veya özel, maliyet yoğun elektroporasyon tamponlar gerektirmez.

Gastrointestinal Organoidlerin Genetik Mühendisliği için Evrensel ve Etkili Elektroporasyon Protokolü

Burada, immün yetmetik farelerin deri ve ağız boşluğundaki çeşitli genlerin işlevlerini aynı anda değerlendirmek için utero embriyonik lentiviral enjeksiyonlarda ultrason güdümlü ultrason güdümlü kullanarak hızlı ve doğrudan bir in vivo CRISPR / Cas9 tarama metodolojisini açıklıyoruz.

Fare Derisi ve Ağız Boşluğundaki Gen İşlevlerini Aynı Anda Değerlendirmek için Vivo CRISPR/Cas9 Taraması

Mevcut protokol, gen kaseti knock-in ve flokslu fareleri verimli bir şekilde üretmek için CRISPR-Cas9 ve donör DNA'sının zigot mikroenjeksiyonunu tanımlamaktadır.

Farelerde gen kaseti knock-in ve flox alelleri oluşturmak için zigot mikroenjeksiyonu

Burada, CRISPR RNP Zygotes Elektroporasyonu (CRISPR-EZ) adı verilen genetiği değiştirilmiş farelerin verimli bir şekilde üretilmesi için tasarlanmış basit bir tekniği açıklıyoruz. Bu yöntem, elektroporasyon yoluyla düzenleme reaktiflerini embriyolara %100'e yaklaşan bir verimlilikle teslim eder. Bu protokol, memeli embriyolarındaki nokta mutasyonları, küçük genomik eklemeler ve delesyonlar için etkilidir.

Zigotların CRISPR Elektroporasyonu ile Farelerin Verimli Genom Düzenlemesi

Burada, genotip-fenotip bağımlılıklarını araştırmak ve glioblastoma tedavisi için potansiyel ilaçları taramak için laboratuvar mühendisliği glioblastoma organoidleri (LEGO) üretmek ve kullanmak için kapsamlı bir protokolün ana hatlarını çiziyoruz.

Laboratuvar Mühendisliği: Glioblastoma Organoid Kültürü ve İlaç Taraması

Burada, dilimlenmiş insan kortikal organoidlerinin elektroporasyon ile akut genetik manipülasyonunu sunuyoruz. Bu kortikal organoid modeller, ventrikül benzeri yapılar dilimlemeden sonra kolayca tanımlanabildiğinden, insan kortikal gelişiminin, nörogelişimsel bozuklukların ve kortikal evrimin fonksiyonel olarak araştırılmasını sağladığından, enjeksiyona özellikle uygundur.

Gen Fonksiyonu Çalışmaları için Dilimlenmiş İnsan Kortikal Organoidlerinin Elektroporasyonu

Öğrenin fare bağırsak organoidlerinde çoklu gen kıyamet protokolü. CRISPR-konkantör vektörü kullanarak dört gene kadar eşzamanlı kıyamet yapın. Fonksiyon kaybı çalışmalarınızı hızlandırın.

Bir CRISPR-konkantör kullanarak Fare Küçük Bağırsak Organoidleri Üzerinde Birden Fazla Gen Kıyamet Protokolü

Daha fazla video keşfet