-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Genlerin Multistep Strand deplasman litografi kullanarak işlevsel yüzey immobilizasyon
Genlerin Multistep Strand deplasman litografi kullanarak işlevsel yüzey immobilizasyon
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
Functional Surface-immobilization of Genes Using Multistep Strand Displacement Lithography

Genlerin Multistep Strand deplasman litografi kullanarak işlevsel yüzey immobilizasyon

Full Text
7,935 Views
11:05 min
October 25, 2018

DOI: 10.3791/58634-v

Günther Pardatscher*1, Matthaeus Schwarz-Schilling*1, Sandra Sagredo1, Friedrich C. Simmel1

1Physics Department,Technical University of Munich

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Biz bir basit tekniğinde gen uzunluğunda DNA moleküllerinin immobilizasyon için boş hücre gen ifade deneyler biochips üzerinde gerçekleştirmek için kullanılan bir yüzey üzerinde açıklayınız.

DNA biyoçipleri, in vitro gen devrelerinin uzun süre ler boyunca çalışmasını sağlayan BASF grubu tarafından geliştirilen, kendi kendini yeniden sentetik biyoloji için cazip bir araştırma platformudur. Bu protokolle, bu teknolojiyi daha geniş bir araştırmacı yelpazesine sunmayı umuyoruz. Befor litografi olarak adlandırdığımız yöntemimiz, DNA iplikçik yer değiştirme reaksiyonuna dayalı DNA'nın immobilizasyonu için bir stratejiyi temsil ediyor.

Bu tekniğin gücü, çok aşamalı litografik yetenekleri, basit tekrarlanabilirliği ve tüm bileşenlerin ticari kullanılabilirliği ile ilgilidir. Diğer biyoçip çözümlerine benzer şekilde, bephore farklı teknolojilerle kombine edilebilir. Örneğin, fonksiyonel gen fırçaları protein ekspresyonu için mikro bölmeler içinde monte edilebilir.

Başlamak için, bir cam kabında% 30 amonya çözeltisi bir parçası ile beş parça su karıştırarak bir RCA karışımı hazırlamak. Karıştırırken karışımı sıcak bir tabakta 70 dereceye ısıtın. Bir kez 70 santigrat derece ulaşır, bir parçası% 30 hidrojen peroksit ekleyin.

Sonra çözelti içine 100 milimetre çapında silikon gofret yerleştirin, ondan organik madde ve parçacıklar kaldırmak için. 30 dakika sonra, substrat çıkarmak, iyice bir yıkama şişesi su ile durulayın ve bir azot tabancası ile kurulayın. Hemen substrat PEGylation ile devam edin.

Bunu başarmak için, ilk seyreltik biotin-PEG-Silane kuru toluen mililitre başına 5 miligram, ve girdap çözeltisi kadar iyice karıştırılır. Bir cam Petri kabına yerleştirilen substrat ile, yavaş yavaş tüm yüzeyi kaplayan, substrat üzerine çözelti pipet, ama çözüm kenarına akmasına izin kaçının. Yüzey kapatıldıktan sonra Petri kabını kapatın ve ek bir kapak ekleyin.

30 dakika sonra kapağı çıkarın ve Petri kabına yaklaşık 40 mililitre isopropil alkol ekleyin. Sonra substrat çıkarmak, tekrar iyice izopropil alkol ile durulayın ve bir azot tabancası ile kurulayın. Kuruduğunda, gerekli olana kadar karanlıkta substrat saklayın.

Bir santimetre parçalar tarafından bir santimetre oluşturmak için bir cam kesici veya neşter kullanarak bir substrat hazırlayın. Daha sonra, merkezden substrat kenarına doğru kısa bir çizik yaparak basit bir hizalama işareti ekleyin. Azot tabancası kullanarak çipteki küçük parçacıkları patlatın.

Daha sonra, iki bileşenli silikon tutkal iki damlacık karıştırın ve çizik ucu etrafında alan boş bırakarak, çip yüzeyine tutkal uygulayın. Orada tutkal bir hidrofobik bariyer sağlar, çip üzerinde sulu çözeltiler tutarak. Bu sonraki yıkama adımlarını kolaylaştırır ve kuluçka için gerekli DNA miktarını azaltır.

Daha sonraki bir adımda, tutkal kolayca soyulmuş olabilir. Aşağıdaki adımlarda, fotocleavable DNA sadece sarı ışık ortamında işlenir. Oda sıcaklığında bir befor karışımı yaklaşık 10 mikrolitre ile çip kapağı ve buharlaşmayı azaltmak için kısmen su ile dolu bir kutu ya da çip yerleştirin.

Bir saat sonra, herhangi bir bağlanmamış befor karışımı kaldırmak için PBS ile çip birkaç kez yıkayın. Sonra, çipe pasifasyon karışımından 10 mikrolitre ekleyin. İki saat sonra, bağlanmamış pasifasyon ajanlarını çıkarmak için çipi PBS ile birkaç kez yıkayın.

Uygun bir maske tutucusu sığdırmak için baskılı bir fotoğraf maskesini uygun boyuta kesin. Alan durağının konumuna takın ve maskeyi tutucuda hizalamak için hizalama işaretlerini kullanın. Mikroskop aşamasına yerleştirilen substrat ile, aydınlatma yoluna kırmızı bir filtre yerleştirin ve substrat yüzeyine odaklanın.

Daha sonra, maruz kalacak substrat bölgeye gidin. Ardından maske tutucuyu takın, aydınlatmayı engelleyin ve UV filtresine değiştirin. Düşük ışık yoğunluğunda deklanşörü açın ve maskeyi substrata hızla odaklamak için kamerayı kullanın.

Alt tabaka şimdi hizalanmış ve maske odakta, kameraya ışık yolunu engelleyin ve istenilen pozlama süresi için yüksek ışık yoğunluğunda substratı aydınlatın. Pozlamadan sonra, numuneyi mikroskoptan çıkarın ve kurutmadan mümkün olduğunca fazla arabelleği substrattan dikkatlice çıkarın. Daha sonra, yüzeye bağlanma sırası ile 10 ila 20 mikrolitre DNA ekleyin.

Kurumasını engellemek için substratı ıslak bir kutuya yerleştirin ve DNA'yı oda sıcaklığında iki saat boyunca substrat üzerinde kuluçkaya yatırın. Ters bir mikroskopüzerinde bölümlenmiş gen ekspresyonunu gözlemlemek için, önce numune tutucunun iki parçasını ayrı ayrı hazırlayın. Çift taraflı yapışkan bant kullanarak, hareketsiz gen fırçası ile bir befor çipi talaş ile talaş ile fiş tutucuya yapıştırarak başlayın.

Daha sonra, tutucunun alt kısmının orta deliğine biraz vakum yağı ekleyin ve talaş tutucuyu takın. Şimdi tutucunun üst kısmını birleştirin. Mümkün olduğunca küçük bölmeleri ile ince bir PDMS çip kesin, daha sonra difüzyon Sonraki tarafından atık ve öncümoleküllerin değişimi için izin vermek için bir tarafa açık bir kanal bırakarak, plazma tedavi oksijen plazma ile PDMS çipin arka tarafında bir cam kapak kayma.

Tedaviden hemen sonra, PDMS çipini cam kaydıraktan sonra bölmeleri yukarı bakacak şekilde yerleştirin. Sonra, 70 santigrat derece bir saat PDMS ile cam pişirin. Numune tutucunun tamamını montajdan kısa bir süre önce, cam kaydırağı DAHA ÖNCE OLDUĞU GIBI PDMS çiple plazma gibi tedavi edin.

Daha sonra, üst tutucunun büyük deliğinin etrafına biraz vakum yağı ekleyin ve üzerine PDMS içeren cam kaydırağı yerleştirin. Bardağı yavaşça yağın üzerine bastırın. Arabelleği çipten dikkatlice çıkarın ve 10 mikrolitre kendini yeniden ifade sistemiyle bir kez yıkayın.

Daha sonra, çip üzerine 60 mikrolitre kendini yeniden ifade sistemi ekleyin ve kenarlardan iki bileşenli silikon tutkal çıkarın. Şimdi, PDMS üzerine ifade sisteminin 20 mikrolitre ekleyin. Damlacık'ı PDMS'ye yerleştirdikten sonra, bölmelerin ıslak ve hava kabarcıkları olmadan stereoskopik mikroskobu hızlıbir şekilde kontrol edin.

Hava kabarcıkları varsa, onları yıkamaya çalışın. Tutucunun iki parçasını birleştirmek ve odaları ve DNA fırçalarını hizalamak için stereoskopik mikroskop altında çalışır. İki vida ve wingnuts her iki elinizle kolayca erişilebilir böylece bir kavrayedici kol ile alt tutucu immobilize.

Üst tutucuyu alt tutucuya takın ve hücresiz ifade sistemi damlacıkları kaynayana kadar indirin. Ardından, bölmelerin ve hizalama işaretinin XY düzleminde benzer bir bölgede olduğundan emin olun. Alttan, tutucunun alt tarafına dokunana kadar kanat larını vidalayın.

XY düzlemindeki bölmeleri ve çipi hizalarken kanatsoklarını hafifçe sıkın. Bu adım biraz deneyim gerektirir ve numune tutucunun yapısına bağlıdır. PDMS çip üzerine sadece nazik bir kuvvetle bastırılmalıdır.

Daha sonra, su ile anti-buharlaşma muhafaza bir sünger sprey ve kutuya tutucu yerleştirin. Sonra, iki bileşenli silikon tutkal ile beş mililitrelik şırınga doldurun ve kutumühür için kullanabilirsiniz. Son olarak, kutuyu sıcaklık kontrollü bir mikroskoba aktarın ve floresan mikroskop kullanarak DNA fırçasını ve reaksiyonu görüntüleyin.

Burada before cam bir slayt üzerinde gerçekleştirilen iki aşamalı litografik işlem, floresan olarak etiketlenmiş DNA iplikçiklerinin üst üste binme desenlerini verir. Çip teki gen ekspresyonunun bu gösteriminde, DNA soldaki odada hareketsiz hale getirilmiştir. İfade karışımına maruz kaldığında, sarı floresan protein YPet immobilize DNA'dan sentezlenir.

Gen ekspresyonu sisteminin aktivitesini değerlendirmek için, floresan kurtarma bir beyazlatma adımı sonra gözlenir. İki saat sonra floresan şiddeti hızla düzeldi. Ancak, dört ve altı saat sonra, ifade karışımı taze bir kaynağı olmadan, reaksiyon saat dört civarında sona erdiğini belirten, kurtarmak vermedi.

Gen ekspresyonu kapalı bir sistemde sınırlı olmasına rağmen, mikro-akışkanlar aracılığıyla ek öncül moleküller ile ekspresyon bölmeleri temin ederek uzun süreler boyunca sürdürülebilir. Befor yöntemi, kendi kendine yeniden gen ekspresyonu için etkileşimedebilen DNA fırçalarının sistemlerini oluşturmak için uygulanabilen oligonükleotidleri veya gen uzunluğu DNA'sını hareketsiz hale getirmek için kullanılır. Bu teknik aynı zamanda biyofizikteki tek moleküllü floresan çalışmaları gibi diğer uygulamalar için de kullanılabilir.

Bu videoyu izledikten sonra, gofret veya cam slaytlar bephore biyoçipler imal etmek ve araştırma projelerinize entegre etmek gerekir.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Biyomühendislik sayı: 140 boş hücre gen ekspresyonu sentetik biyoloji biochips litografi havacilik DNA strand deplasman

Related Videos

Yüzey immobilize Biyomoleküller Tek Molekül Floresans Ölçümler için Otomatik Sistem

10:57

Yüzey immobilize Biyomoleküller Tek Molekül Floresans Ölçümler için Otomatik Sistem

Related Videos

13.2K Views

Bir mikroakışkan Platform kullanarak Yüksek throughput Protein Ekspresyonu Jeneratör

09:26

Bir mikroakışkan Platform kullanarak Yüksek throughput Protein Ekspresyonu Jeneratör

Related Videos

12.2K Views

Sürekli Akış Microspotter kullanma Modifiye yüzeye hücrelerin Batık Baskı

08:29

Sürekli Akış Microspotter kullanma Modifiye yüzeye hücrelerin Batık Baskı

Related Videos

9.2K Views

Hidrolize Çapraz bağlayıcılar yoluyla Adenoviral vektörler gergin kullanma Metalik Stent Yüzeylerden Vasküler Gen Transferi

12:30

Hidrolize Çapraz bağlayıcılar yoluyla Adenoviral vektörler gergin kullanma Metalik Stent Yüzeylerden Vasküler Gen Transferi

Related Videos

10.2K Views

Robotik Microcontact Baskı (R-μCP) kullanarak Karmaşık Kültürü Substratlar ve Sıralı nükleofilik Giren Fabricating

08:23

Robotik Microcontact Baskı (R-μCP) kullanarak Karmaşık Kültürü Substratlar ve Sıralı nükleofilik Giren Fabricating

Related Videos

10.9K Views

Hücre Yüzey Rehberlik ve Bioprinting için Otomatik Robotik Dağıtım Tekniği

10:14

Hücre Yüzey Rehberlik ve Bioprinting için Otomatik Robotik Dağıtım Tekniği

Related Videos

7.7K Views

Uzun Süreli Hücresiz Gen Ekspresyonunun İletimi için Çok Katmanlı Mikroakışkan Platform

11:23

Uzun Süreli Hücresiz Gen Ekspresyonunun İletimi için Çok Katmanlı Mikroakışkan Platform

Related Videos

10.7K Views

Doku Seviyesi Mekaniğinin Kontrol Altına Almak İçin Uyumlu Yüzeylerde İnsan Embriyonik Kök Hücre Kolonilerinin Geometrisinin Desenlemi

10:04

Doku Seviyesi Mekaniğinin Kontrol Altına Almak İçin Uyumlu Yüzeylerde İnsan Embriyonik Kök Hücre Kolonilerinin Geometrisinin Desenlemi

Related Videos

8.8K Views

Lazer Kesim Şablonlar Kullanılarak Basit Litografisiz Tek Hücreli Mikrodesenleme

08:59

Lazer Kesim Şablonlar Kullanılarak Basit Litografisiz Tek Hücreli Mikrodesenleme

Related Videos

8K Views

DNA Kullanarak Hücrelerin Basit, Uygun Fiyatlı ve Modüler Deseni

08:59

DNA Kullanarak Hücrelerin Basit, Uygun Fiyatlı ve Modüler Deseni

Related Videos

4.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code