Name: Proteom çapında Quantification maddelerinin homojenliği tek molekül düzeyinde etiketlenmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-04-19T13:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 29 s
Description: Öğrenin, tek molekül düzeyinde protein etiketleme homojenliğini floresan işaretleme ve elektroforez kullanarak değerlendirmeyi. Bu yöntem, patojenik moleküllerin tanısı için hassas protein analizi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Masae Ohno ve Kazuya Nishimura deneysel yardım ve tavsiye için teşekkür ederiz. Bu eser PRESTO (JPMJPR15F7), Japonya bilim ve teknoloji ajansı, genç bilim adamları (A) (24687022), araştırmacı araştırma (26650055) zorlu ve yenilikçi alanlara (23115005), Japonya Derneği bilimsel araştırma için Grants-in-aid tarafından desteklenmiştir Bilim ve hibe Takeda Bilim Vakfı ve Mochida Anıtı Vakfı tarafından promosyon Medikal ve ilaç araştırma için. S.L. RIKEN Uluslararası Program ilişkilendirmek (IPA) programından destek kabul eder.

1. hücre hazırlık
<ol><li>HeLa hücreleri 37 ° C'de 10 cm tabak içinde yetiştirmek altında %5 CO2 ' Dulbecco'nın modifiye kartal orta % 10 fetal sığır serum içeren.</li>
	<li>% 70 confluency, ATCC yönergeleri17takip alabilirseniz katlanarak büyüyen hücreleri toplamak.<ol>
<li>1 fosfat tamponlu tuz (PBS) (pH 7,4) x 5 mL hücrelerle durulayın. PBS kaldırın.</li>
		<li>1 mL %0.1 tripsin-ethylenediaminetetraacetic asit (EDTA) ekleyin. 37 ° C'de 5 dk kuluçkaya</li>
		<li>İlerlemesini hücre ayrılma mikroskobu tarafından izlemek.</li>
		<li>Hücreleri yuvarlak haline gelir ve yemek müstakil kez büyüme orta 4 mL ekleyin ve pipetting tarafından hücre Aglomerasyon kırmak.</li>
		<li>Bir hücre sayaç kullanarak hücreleri saydırmak.</li>
		<li>150 x g bir santrifüj tüpü 10 min için de santrifüj kapasitesi. Orta kaldırmak ve hücre Pelet ile 5 mL 1 x PBS (pH 7,4) de resuspend.</li>
		<li>1.2.6 arasındaki adımları yineleyin. 1 x 106 hücre/mL sayısı adımda 1.2.5 kullandığı, son bir konsantrasyon (pH 7,4) PBS'ye hücrelerde resuspend. Not: Hücre süspansiyon için birkaç ay bölünmemeli ve-80 ° C'de depolanmış olabilir. Donma/çözülme döngüsü yinelenen kaçınılmalıdır.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. hücre lizis ve floresan etiketleme
<ol><li>Arabellek lysing 10 mL olun (0.1 M Borat, % 1 Sodyum Lauryl Sülfat (SDS) ve % 1'i ara 20). PH 12 2 M NaOH kullanarak ayarlayın. Dikkat: Konsantre NaOH aşındırıcı. Bu çözüm hazırlarken uygun eldiven ve gözlük giymek. Not: Lysing arabellek oda sıcaklığında bir hafta kadar depolanabilir.</li>
	<li>1 M dithiothreitol (DTT) 1 μL ile tampon ve 4 lysing, Mix 100 μL μL %50 3-[(3-cholamidopropyl) dimethylammonio] -1-propanesulfonate (çocuklar).</li>
	<li>Mix 1 μL karışık lysing arabellek adım 2.2 ile hücre kültür (yaklaşık 1.000 hücreleri). Çözüm yavaş yavaş kabarcıklar önlemek için pipetting tarafından lunaparkçı. Nazik ajitasyon ile 5 min için oda sıcaklığında karanlıkta kuluçkaya. Çözüm yavaş yavaş pipetting tarafından yeniden lunaparkçı.</li>
	<li>2 μg/ml Cy3 NHS-ester boya 1 μL ekleyin. Çözüm yavaş yavaş kabarcıklar önlemek için pipetting tarafından lunaparkçı. Karanlıkta nazik ajitasyon ile oda sıcaklığında 5 min için kuluçkaya. Not: Bu arabelleği yüksek pH yüksek reaktivite için önde gelen proteinler, nötralizasyon lizin kalıntılarının neden olur.</li>
	<li>2 μg/ml Cy3 NHS-ester boya 1 μL ilavesi yineleyin. Çözüm yavaş yavaş kabarcıklar önlemek için pipetting tarafından lunaparkçı. Karanlıkta nazik ajitasyon ile oda sıcaklığında 10 dakika için kuluçkaya. Not: Bu bazı Cy3 NHS-ester boya hidrolize ve reaksiyon arabellek yüksek pH tarafından devre dışı bırakıldı çünkü NHS-ester boya ilavesi etiketleme verimliliği artırabilir tekrar.</li>
	<li>PH 7.2 0.8 m 100 μL ekleyerek 4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic asit (HEPES) ayarlamak-NaOH pH 7.2 tepki gidermek için. Çözüm yavaş yavaş kabarcıklar önlemek için pipetting tarafından lunaparkçı.</li>
	<li>19 mg/mL biotin-(polietilen glikol (PEG))220 μL eklemek-Amin ve 20 mg/ml 1 5 μL-etil - 3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC). Çözüm yavaş yavaş kabarcıklar önlemek için pipetting tarafından lunaparkçı. Karanlıkta nazik ajitasyon ile oda sıcaklığında 1 h için kuluçkaya. Not: Bu biotinylation adım protein molekülleri sabit bir yoğunluk ve protein türler için hiçbir önyargı ile mikroskop coverslip gidermek gereklidir.</li>
	<li>Unreacted etiketleme reaktifler kaldırmak ve üreticinin yönergeleri izleyin 10 kDa kesme ile bir Ultrafiltrasyon sütun kullanarak örnek konsantre. Not: Protokol burada duraklatılmış. Örnek-80 ° C'de birkaç hafta saklanır.</li>
</ol>3. Proteom ayrılık ve kurtarma
<ol><li>4 x SDS örnek arabellek (200 mM Tris-HCl pH 6.8, % 4 SDS, % 4 gliserol ve % 0,4 bromophenol mavi) ekleyin. Not: boya zarar görmemesi için protein örnek olarak standart SDS-sayfa içinde ısıtmalı değil ve oda sıcaklığında tutulmalıdır.</li>
	<li>Standart SDS-sayfa protein örnek ve % 20 Akrilamid jel kullanarak moleküler bir merdiven için gerçekleştirin. Örnek göç göç kadar sabit voltaj (160 V), jel içinde açık sadece jel çıkar.</li>
	<li>Protein bantları (şekil 3) konumunu belirlemek için jel görüntü.</li>
	<li>Protein kesirler üzerindeki bant konumlar dayalı keskin bir bıçak kullanarak ilgi de dahil olmak üzere jel bölümlerini kesip. Fractioning 16, 23, 55 ve 120 kDa tepeler ve 19-25, 25-32, 32-42, 42 – 54, 54-69, 69-97, 97-136 ve 136 – 226 kDa bölgeleri şekil 3' te gösterilmektedir.</li>
	<li>6 – 8 kDa, üreticinin yönergeleri izleyerek gözenek büyüklüğü ile electroelution bir dialyzer kullanarak proteinler ayıklayın. Not: Ayıklanan örnek-80 ° C'de birkaç hafta saklanır.</li>
</ol>4. mikroskop coverslip hazırlık
<ol><li>Avidin arabelleği (5 mM HEPES NaOH pH 7.2, 10 ng/mL avidin ve 2 mg/mL sığır serum albumin (BSA)) 200 μL her örnek için hazırlayın.</li>
	<li>22 x 22 mm ve 0.15 mm kalınlıkta coverslips hazırlayın. Temiz ve onların yüzeyleri etkinleştirmek için bir plazma temizleyici 1 dk ile plazma hava coverslips maruz.</li>
	<li>Kat ile avidin spin-kaplama 200 μL 500 RPM, 1000 devir/dakika, 30 saniye ve ardından 5 saniye için bir spin coater kullanarak avidin arabelleği tarafından coverslips. Coverslips kuru bildirmek için oda sıcaklığında 15 dk için kuluçkaya.</li>
	<li>Coverslips protein örnek için hazırlayın.<ol>
<li>(3.5) alınan protein örneğin 100 kere 5 mM HEPES NaOH pH 7.2 oranında seyreltin.</li>
		<li>Yer 100 μL seyreltilmiş örnek yüzeyinde avidin kaplı coverslip ortasına (Adım 4.3).</li>
		<li>15 dakika oda sıcaklığında karanlıkta kuluçkaya.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Pozitif kontrol hazırlayın.<ol>
<li>Yer 100 μL 10 ng/mL, 5 mM HEPES NaOH pH 7.2 avidin ortasındaki kaplı coverslip (Kimden adım 4.3) floresan biotin saf.</li>
		<li>15 dakika oda sıcaklığında karanlıkta kuluçkaya. Not: Bu olumlu denetim coverslip avidin yoğunluğu bağlama noktaları, LO hesaplamak için kullanılan sağlar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Negatif kontrol hazırlayın.<ol>
<li>Spin-ceket plazma coverslip 5 mm HEPES NaOH ve 2 mg/mL BSA (olmadan avidin) 200 μL ile temizledim.</li>
		<li>15 dakika kuruması için oda sıcaklığında kuluçkaya.</li>
		<li>10 ng/mL saf floresan biotin 100 μL 5 mM HEPES NaOH pH 7.2 ekleyin.</li>
		<li>15 dakika oda sıcaklığında karanlıkta kuluçkaya. Not: Bu negatif kontrol coverslip non-spesifik bağlama avidin olmadan coverslip için floresan biotin miktarda sağlar.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Coverslip ucu orta dokunmak coverslip kenarlarında pipetting her coverslip 200 μL distile su ile durulayın. Bu yıkama üç kere tekrar edin. Not: coverslip su alıyorum sonra su hemen geri coverslip tamamen kurumasını önlemek için üzerinde yer almalıdır.</li>
	<li>Hava plazma coverslips adım 4.2 olduğu gibi aynı sayıda için maruz.</li>
	<li>Temizlenmiş coverslip kurutma önlemek için adım 4.7 örnek bağlı coverslip yerleştirin.</li>
</ol>5. gözlem tek molekül Floresans mikroskobu ile
<ol><li>Bir geniş-alan veya fani alan Floresans mikroskobu başlatın. Dikkat: Doğrudan veya dağınık lazer radyasyon veya deri hasar göz neden olabilir. Uygun koruyucu gözlük giymek ve lazer ışık yolunu kalkan. Not: mikroskop kurulum için lütfen bizim önceki yayın16' bakın. Kısaca, bir yüksek güçlü 488 nm lazer uyarma, yüksek sayısal diyafram objektif lens ve yüksek hassasiyet kamera ile donatılmış geniş-alan veya fani alan floresan mikroskop bu ölçüm için kullanılabilir. Ayrıca, otomatik bir ölçüm için bir bilgisayar kontrollü XY translasyonel örnek sahne, lazer uyarilmalar için mekanik panjurlar ve bir otomatik odaklama sistemi yüklenecek tavsiye edilir.</li>
	<li>Coverslip mikroskobunun ayarla ve odak bulmak.</li>
	<li>En az 100 adet fotoğraf elde etmek için bir kiremit taraması gerçekleştirin. Not: Lazer aydınlatma için örnek resimleri photobleaching en aza indirmek için kamera ile kaydederken kullandığı için mekanik panjurlar ile kontrol edilmelidir. Pek çok örnekleri varsa, otomatik ölçüm mikroskop aygıtları denetlemek için bir bilgisayar programı kullanarak önerilir. Her resim bir 60 x objektif lens kullanırken genellikle 100-500 tek molekül noktalar içerir.</li>
</ol>6. görüntü analizi ve bilgi çıkarma
<ol><li>Görüntü olmayacak nedeniyle lazer aydınlatma desen varsa,18düzeltmek için görüntü işleme dışarı taşımak.<ol>
<li>Bir başvuru yansıması düzgün yayılmış boyalar ile aynı adım 5.3 ayarlama bir kamera ile oluşan bir coverslip örnek ile ölçerek elde etmek.</li>
		<li>Mahsup görüntüyü aynı kamera ayarı kullanarak hiçbir lazer uyarma ile ölçerek elde etmek.</li>
		<li>Her örnek görüntü ve referans görüntü her piksel değeri mahsup resmin değeri ile çıkarın.</li>
		<li>Her piksel değeri subtracted örnek görüntüler subtracted başvurusu görüntüsünde bölün.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Düzgün alınan görüntüleri toplamak ve görüntü arka plan çıkarmak.<ol>
<li>Görüntüleri büyük floresan toplamları içeren el ile kaldırın.</li>
		<li>Görüntü arka plan top inişli çıkışlı algoritması19 50 piksel ImageJ20kullanarak topu RADIUS ile uygulanarak kaldırın.</li>
		<li>ImageJ kullanarak bulanık görüntüleri çıkararak görüntüleri netleştirmek (görüntü işlevi keskinleştirmek).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bulmak ve tek molekül noktalar görüntülerde çözümleyebilirsiniz.<ol>
<li>Tek molekül noktalar ImageJ kullanarak Yen eşik algoritma21 ile tanımlayın.</li>
		<li>Noktalar toplamalardan ImageJ (ROI Yöneticisi) kullanarak proteinlerin dışlamak için 20'den fazla piksel kamera ve noktalar karanlık gürültü çıkarmak için ikiden az piksel ile filtre.</li>
		<li>Her görüntü sıralarda saymak. Düzeltilmiş görüntüleri (adım 6.1.4), analiz aydınlatma kullanarak toplam piksel her nokta için yoğunluklarını ImageJ kullanarak.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Etiketleme doluluk (LO) aşağıdaki formülü kullanarak hesaplar: LO = (sayı sayıları örnekteki / olumlu denetim sayıları sayı) x 100</li>
	<li>Floresan boyalar tek protein molekül (n̄boya) bağlı ortalama sayısını hesaplayın.<ol>
<li>Bir çubuk grafik her spot yoğunluklarını analiz. Not: Histogram genellikle birkaç tepeler vardır ve her tepe boya molekülleri bir protein bağlı farklı bir sayısını gösterir. Birinci, ikinci ve üçüncü en yüksek histogram karşılık gelen molekülleri, 1, 2 ve 3 sırasıyla.</li>
		<li>Histogram üzerinden ortalama yoğunluğu hesaplayabilirsiniz. De ilk tepe tepe yoğunluğunu uygun bir Gauss uygulayarak hesaplar.</li>
		<li>N̄boya ortalama yoğunluğu en yüksek yoğunluğu ile bölerek hesaplayın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Wilhelm, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mass-spectrometry-based+draft+of+the+human+proteome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mass-spectrometry-based draft of the human proteome.</a> Nature. 509 (7502), 582-587 (2014).</li>
<li>Guo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunoaffinity+enrichment+and+mass+spectrometry+analysis+of+protein+methylation%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+Cellular+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Immunoaffinity enrichment and mass spectrometry analysis of protein methylation.</a> Molecular & Cellular Proteomics. 13 (1), 372-387 (2014).</li>
<li>Tyanova, S., Temu, T., Cox, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MaxQuant+computational+platform+for+mass+spectrometry-based+shotgun+proteomics%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">The MaxQuant computational platform for mass spectrometry-based shotgun proteomics.</a> Nature Protocols. 11 (12), 2301-2319 (2016).</li>
<li>Neuhoff, V., Arold, N., Taube, D., Ehrhardt, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+staining+of+proteins+in+polyacrylamide+gels+including+isoelectric+focusing+gels+with+clear+background+at+nanogram+sensitivity+using+Coomassie+Brilliant+Blue+G-250+and+R-250%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Improved staining of proteins in polyacrylamide gels including isoelectric focusing gels with clear background at nanogram sensitivity using Coomassie Brilliant Blue G-250 and R-250.</a> Electrophoresis. 9 (6), 255-262 (1988).</li>
<li>Berggren, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Background-free%2C+high+sensitivity+staining+of+proteins+in+one-+and+two-dimensional+sodium+dodecyl+sulfate-polyacrylamide+gels+using+a+luminescent+ruthenium+complex%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Background-free, high sensitivity staining of proteins in one- and two-dimensional sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels using a luminescent ruthenium complex.</a> Electrophoresis. 21 (12), 2509-2521 (2000).</li>
<li>Butt, R. H., Coorssen, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coomassie+blue+as+a+near-infrared+fluorescent+stain%3A+a+systematic+comparison+with+Sypro+Ruby+for+in-gel+protein+detection%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+%26+cellular+proteomics%22%5BJournal%5D)">Coomassie blue as a near-infrared fluorescent stain: a systematic comparison with Sypro Ruby for in-gel protein detection.</a> Molecular & cellular proteomics. 12 (12), 3834-3850 (2013).</li>
<li>Nanda, J. S., Lorsch, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Labeling+a+protein+with+fluorophores+using+NHS+ester+derivitization%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Labeling a protein with fluorophores using NHS ester derivitization.</a> Methods in Enzymology. , 87-94 (2014).</li>
<li>Kim, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+site-specific+labeling+of+proteins+via+cysteines%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+chemistry%22%5BJournal%5D)">Efficient site-specific labeling of proteins via cysteines.</a> Bioconjugate chemistry. 19 (3), 786-791 (2008).</li>
<li>Dickson, R. M., Cubitt, A. B., Tsien, R. Y., Moerner, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On%2Foff+blinking+and+switching+behaviour+of+single+molecules+of+green+fluorescent+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">On/off blinking and switching behaviour of single molecules of green fluorescent protein.</a> Nature. 388 (6640), 355-358 (1997).</li>
<li>Penna, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+CRAC+channel+consists+of+a+tetramer+formed+by+Stim-induced+dimerization+of+Orai+dimers%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The CRAC channel consists of a tetramer formed by Stim-induced dimerization of Orai dimers.</a> Nature. 456 (7218), 116-120 (2008).</li>
<li>Ji, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+stoichiometry+of+the+unitary+calcium-release-activated+calcium+channel%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Functional stoichiometry of the unitary calcium-release-activated calcium channel.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (36), 13668-13673 (2008).</li>
<li>Ulbrich, M. H., Isacoff, E. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subunit+counting+in+membrane-bound+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Subunit counting in membrane-bound proteins.</a> Nature Methods. 4 (4), 319-321 (2007).</li>
<li>Sugiyama, Y., Kawabata, I., Sobue, K., Okabe, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+absolute+protein+numbers+in+single+synapses+by+a+GFP-based+calibration+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Determination of absolute protein numbers in single synapses by a GFP-based calibration technique.</a> Nature Methods. 2 (9), 677-684 (2005).</li>
<li>Puchner, E. M., Walter, J. M., Kasper, R., Huang, B., Lim, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Counting+molecules+in+single+organelles+with+superresolution+microscopy+allows+tracking+of+the+endosome+maturation+trajectory%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Counting molecules in single organelles with superresolution microscopy allows tracking of the endosome maturation trajectory.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (40), 16015-16020 (2013).</li>
<li>Grassart, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Actin+and+dynamin2+dynamics+and+interplay+during+clathrin-mediated+endocytosis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Actin and dynamin2 dynamics and interplay during clathrin-mediated endocytosis.</a> The Journal of Cell Biology. 205 (5), 721-735 (2014).</li>
<li>Leclerc, S., Arntz, Y., Taniguchi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extending+Single+Molecule+Imaging+to+Proteome+Analysis+by+Quantitation+of+Fluorescent+Labeling+Homogeneity+in+Complex+Protein+Samples%5BTitle%5D)+AND+%22Bioconjugate+chemistry%22%5BJournal%5D)">Extending Single Molecule Imaging to Proteome Analysis by Quantitation of Fluorescent Labeling Homogeneity in Complex Protein Samples.</a> Bioconjugate chemistry. 29 (8), 2541-2549 (2018).</li>
<li>Ian Freshney, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aIan+Freshney%2C+R+%22Culture+of+Animal+Cells%3A+A+Manual+of+Basic+Technique+and+Specialized+Applications%22">Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique and Specialized Applications</a>. , John Wiley & Sons. (2015).</li>
<li>Taniguchi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+E.+coli+proteome+and+transcriptome+with+single-molecule+sensitivity+in+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Quantifying E. coli proteome and transcriptome with single-molecule sensitivity in single cells.</a> Science. 329 (5991), 533-538 (2010).</li>
<li>Sternberg, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biomedical+Image+Processing%5BTitle%5D)+AND+%22Computer%22%5BJournal%5D)">Biomedical Image Processing.</a> Computer. 16 (1), 22-34 (1983).</li>
<li>Rueden, C. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ImageJ2%3A+ImageJ+for+the+next+generation+of+scientific+image+data%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">ImageJ2: ImageJ for the next generation of scientific image data.</a> BMC Bioinformatics. 18 (1), 529(2017).</li>
<li>Yen, J. C., Chang, F. J., Chang, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+criterion+for+automatic+multilevel+thresholding%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Transactions+on+Image+Processing%22%5BJournal%5D)">A new criterion for automatic multilevel thresholding.</a> IEEE Transactions on Image Processing. 4 (3), 370-378 (1995).</li>
<li>Livnah, O., Bayer, E. A., Wilchek, M., Sussman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+structures+of+avidin+and+the+avidin-biotin+complex%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional structures of avidin and the avidin-biotin complex.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (11), 5076-5080 (1993).</li>
<li>Mostovenko, E., Hassan, C., Rattke, J., Deelder, A. M., van Veelen, P. A., Palmblad, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+peptide+and+protein+fractionation+methods+in+proteomics%5BTitle%5D)+AND+%22EuPA+Open+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Comparison of peptide and protein fractionation methods in proteomics.</a> EuPA Open Proteomics. 1, 30-37 (2013).</li>
<li>Volpe, P., Eremenko-Volpe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+studies+on+cell+proteins+in+suspension+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Quantitative studies on cell proteins in suspension cultures.</a> European Journal of Biochemistry. 12 (1), 195-200 (1970).</li>
<li>Huang, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Counting+low-copy+number+proteins+in+a+single+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Counting low-copy number proteins in a single cell.</a> Science. 315 (5808), 81-84 (2007).</li>
<li>Johnson, A. C., Bowser, M. T. H. igh- <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-Speed%2C+Comprehensive%2C+Two+Dimensional+Separations+of+Peptides+and+Small+Molecule+Biological+Amines+Using+Capillary+Electrophoresis+Coupled+with+Micro+Free+Flow+Electrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">High-Speed, Comprehensive, Two Dimensional Separations of Peptides and Small Molecule Biological Amines Using Capillary Electrophoresis Coupled with Micro Free Flow Electrophoresis.</a> Analytical Chemistry. 89 (3), 1665-1673 (2017).</li>
</ol>

Yazarlar aşağıdaki rakip mali interest(s) ilan: RIKEN S.L. ve yardımcı mucitler adlandırılan Y.T. ile bu sonuçlar üzerinde bir patent başvurusu under.

Bu kağıt ayırma SDS-sayfa (Adım 3) ile sonra etiketleme homojenliği hücrelerdeki her etiketli protein türlerin ölçmek için bir protokol açıklar. Ayırma yöntemi ayrılık ve ayırma proteinlerin yüksek çözünürlüklü, özel ekipman23gerektiren süre izin sıvı Kromatografi veya kapiller Elektroforez, gibi diğer yöntemleri ile yedek olabilir. NHS-ester içinde geçerli protokolü kullanılarak etiketleme yöntemi maleimide-ester veya antikorlar, örneğin kullanarak diğer yöntemleri ile değiştirilebilir.
<p cl...

Protein molekülleri hücre içinde ifade kümesinin tamamını ölçmek için amaçlayan Proteom analizleri, mevcut biyolojik ve tıbbi çalışmalar değerli bir yaklaşımdır. Bu analizin yaygın spectra protein iyonlaşma1,2,3ile oluşturulan temel protein türü tanımlar kütle spektrometresi kullanır. Elektroforez, polyacrylamide Jel Elektroforez (sayfa) dahil olmak üzere, Kapiler Elektroforez ve iki boyutlu (2D) Jel Elektroforez Proteom analizler için alternatif bir yöntem olduğunu. Bu yöntem belirsiz floresan elektroforetik ayrımı ve algılama ve miktar her protein türlerin takip analiz hücrelerdeki tüm protein molekülleri etiketlerine göre üzerinde dayanır. Gerekli non-spesifik protein etiketleme elde etmek için bir strateji proteinler Coomassie mavi ve Sypro Ruby4,gibi5,6 Elektrostatik ve hidrofobik etkileşimler yoluyla bağlayabilirsiniz floresan boyalar kullanmaktır . N-hydroxysuccinimide (NHS) ester veya hangi kovalent proteinler Birincil aminler ve thiols gibi ortak artıkları ile bağlayabilirsiniz, maleimide, sırasıyla7, içeren boya ile kovalent etiketleme kullanmak için alternatif bir stratejidir 8.
Bu arada, Floresans algılama hassasiyeti düşük-bereket proteinler ve az sayıda hücre analiz etmek için idealdir. Tek molekül Floresans görüntüleme bireysel floresan boyalar ve in vitro ve içinde vivo9,10,11,12etiketli proteinler algılanmasını sağlayan en önemli yöntemlerinden biridir, 13,14,15. Bu görüntüleme yönteminin uygulamaya Proteom Elektroforez tabanlı analiz bireysel fluorescently etiketli protein sayımı tarafından son derece hassas ve kantitatif testleri etkinleştirmek için bekleniyor. Ancak, bu floresan boyalar ile etiketleme tüm protein molekülleri yeterince homojen olup olmadığı ve nasıl bu homojenliği farklı protein türler (şekil 1) tarafından etkilenir belirsizdir. Basit toplu çözüm ölçümleri8 'verimlilik kaplin' veya 'verimlilik etiketleme' denilen proteinlere floresan boyalar molar oranı elde etmek için kullanılabilir, ancak bu özellik arasında etiketleme homojenliği ilgili bilgi sağlamaz protein molekülleri.
Burada, biz tüm protein türleri16hücre (Şekil 2) için etiketleme homojenliği araştırmak bir tahlil için protokol tanımlamak. Bu testin iki anahtar adım protein saflaştırma ve görüntüleme vardır. İlk adımda, hücrelerdeki tüm proteinler fluorescently etiketlenir ve biotinylated sonra ayrı ayrı Jel Elektroforez kullanarak ayıklanır, electroelution tarafından takip. İkinci adımda, ayıklanan örneklerinde bireysel protein, Floresans özelliklerini tek molekül görüntüleme üzerinde göre değerlendirilir. Bu veri, parametreleri gibi proteinler yüzdesi ile en azından bir tane etiketli sayım çözümleme için önemli boya, hangi etiketleme doluluk (LO)16dediğimiz ve floresan boyalar ortalama sayısı bir tek protein molekülüne bağlı (n̄ boya), karakterize edilebilir. İletişim kuralı ' HeLa hücre Proteom NHS ester tabanlı siyanür 3 (Cy3) boya ile etiketleme için en iyi duruma getirilmiş bir yordam bir örnek olarak sunulur ve istenen araştırma hedeflerine göre etiketleme diğer yordamlar ile değiştirilebilir.

<table><tbody><tr><td>22x22x0.15 mm lamel</td><td>VWR</td><td>470019-004</td><td></td></tr><tr><td>488 nm Argon lazer</td><td>Tutarlı</td><td>Innova 70C</td><td></td></tr><tr><td>488 nm dikroik ayna</td><td>Semrock</td><td>FF495-Di03</td><td></td></tr><tr><td>488 nm emisyon filtresi</td><td>Semrock</td><td>FF02-520/28</td><td></td></tr><tr><td>560 nm dikroik filtre</td><td>Semrock</td><td>Di02-R561</td><td></td></tr><tr><td>560 nm emisyon filtresi</td><td>Semrock</td><td>FF02-617/73</td><td></td></tr><tr><td>560 nm fiber lazer</td><td>MBP İletişim</td><td>F-04306-2</td><td></td></tr><tr><td>60x yağa daldırma lensi</td><td>Olympus</td><td>PLAPON 60x</td><td></td></tr><tr><td>Avidin</td><td>Nacalai-tesque</td><td>03553-64</td><td></td></tr><tr><td>Biotin-PEG-amin</td><td>Thermo Scientific</td><td>21346</td><td></td></tr><tr><td>Biyotinile Alexa Fluor 488</td><td>Nanocs</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Borat</td><td>Nacalai-tesque</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9547</td><td></td></tr><tr><td>CHAPS</td><td>Dojindo</td><td>C008-10</td><td></td></tr><tr><td>Cy3 NHS-ester boya</td><td>GE Healthcare</td><td>PA13101</td><td></td></tr><tr><td>Diyalizörü ve nbsp; - D-tüpü, 6-8 kDa</td><td>Merck Millipore</td><td>71507-M</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DTT</td><td>Nacalai-tesque</td><td>14112-94</td><td></td></tr><tr><td>EDC</td><td>Nacalai-tesque</td><td></td><td></td></tr><tr><td>EMCCD kamera</td><td>Andor</td><td>IiXon 897</td><td></td></tr><tr><td>Epi floresan mikroskobu</td><td>Olympus</td><td>IX81</td><td></td></tr><tr><td>Jel görüntüleyici</td><td>GE Healthcare</td><td>ImageQuant LAS 4000</td><td></td></tr><tr><td>Penisilin, streptomisin ve Amfoteresin karışımı</td><td>Gibco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plazma temizleyici</td><td>Diener Elektronik</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SDS</td><td>Wako</td><td>NC0792960</td><td></td></tr><tr><td>Boyut arıtma sütunu 10K</td><td>Merck Millipore UFC5010</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9416</td><td></td></tr></tbody></table>

proteom çapında quantification maddelerinin homojenliği tek molekül düzeyinde etiketlenmesi

Proteome-wide Quantification of Labeling Homogeneity at the Single Molecule Level

Hücre proteomes kez Elektroforez deneyleri, nerede proteinler hücrelerdeki tüm türlerin özellikle sigara floresan bir boya ile etiketlenir ve ayırma takip photodetector tarafından fark kullanarak karakterizedir. Tek molekül Floresans görüntüleme NEMS protein algılama bireysel floresan moleküllerin görüntülenmesi için onun yetenek sağlayabilir. Ancak, bu güçlü görüntüleme yöntemi uygulamaya Elektroforez deneyleri floresan her protein türleri arasında Proteom etiketleme homojenliği karakterize için yollar eksikliği ile engel oluyor. Burada, bir tek molekül Floresans görüntüleme tahlil dayalı Proteom genelinde etiketleme homojenliği değerlendirmek için bir yöntem geliştirdi. Bir HeLa hücre örnek, biz 'doluluk etiketleme' olarak adlandırdığı en az bir boya ile etiketli protein oranı kullanarak bizim ölçüm (LO), Aralık için uygulamanın tek molekül görüntüleme için yüksek potansiyel destekleyen %90 %50 belirlendi duyarlı ve hassas Proteom analizleri.

Şekil 4 ham görüntü verilerine HeLa hücre lysate proteinlerin farklı molekül ağırlığı kesirler için hem de pozitif ve negatif Denetim temsil eder. Sergi 100-500 noktalar resim başına protein örnek ve pozitif kontrol, negatif kontrol yok veya birkaç noktalar, protokol yeterince coverslip yüzeye boyalar spesifik olmayan bağlama engeller gösterilen görüntüler. Nokta yoğunluğu histogramlar protein örnekleri ve olumlu denetim boyalar Stokastik bağlayıcı proteinler...

Burada, karmaşık protein örnek tek molekül düzeyinde her protein türler için etiketleme homojenliği değerlendirmek için bir protokol mevcut.

Proteom çapında Quantification maddelerinin homojenliği tek molekül düzeyinde etiketlenmesi

Cell proteomes are often characterized using electrophoresis assays, where all species of proteins in the cells are non-specifically labeled with a ...

Bu yöntem, sıvı numunede protein miktarının sayısallaştırılmasının tek moleküllü proses ile sayma için kalibrasyonunu göstermektedir. Özellikle, protein popülasyonlarının her molekül seviyesinde floresan olarak nasıl etiketlenebileceğini gösterebiliyor. Daha önceki yöntemler floresan ve protein moleküllerinin molar oranlarını analiz etmek için toplu ölçümler yapmış, ancak protein popülasyonlarının gerçekte ne kadar heterojen olarak etiketlendiğini ortaya çıkaramamaktadır.Yöntemlerimiz bunu doğrudan tek molekül seviyesinde yapabilir. Yöntemimiz, numunelerde patojenik moleküllerin verimli bulgularına olanak sağlayacak, gelecekteki tanı yöntemlerine yol açacak olan ultra duyarlı ve gelişmiş moleküler konsantrasyon tahlillerine doğru genişletilebilir. Yöntemimiz floresan antikorlar kullanılarak tek protein türleri analizine ve elektroforez veya kromatografi ile ayrılan tüm proteinler için spesifik olmayan etiketler kullanılarak birden fazla tür analizine uygulanabilir.Tekniğin en kritik noktası veri tekrarlanabilirliği elde etmektir. Birden fazla örneği ölçerken aynı deneysel durumu mümkün olduğunca korumanızı öneririm. Bu tekniğin görsel gösterimi, her deneysel adımın kararlı ve tekrarlanabilir hale getirilen nasıl sağlanacaktır.Ayrıca, mikroskop kapaklarının spin kaplaması ve yıkanması gibi biyokimya protokollerinde de nadir bir adım olacaktır. Bu yordamı başlatmak için, metin protokolünde belirtildiği gibi lysing tampon ve%1 Tween-20'yi hazırlayın. pH'ı 12'ye ayarlamak için sodyum hidroksit kullanın.100 mikrolitre lysing tamponu ile bir molar DDT mikrolitresini ve dört mikrolitre %50 CHAPS'yi karıştırın. Hazırlanan hücre kültürünün bir mikrolitre ekleyin ve kabarcıklar önlemek için yavaş pipetleme tarafından çözelti homojenize. Hafif ajitasyon ile beş dakika oda sıcaklığında karanlıkta kuluçka.Daha sonra, yavaş yavaş yukarı ve aşağı borulama tarafından çözelti rehomojenize. Cy3 NHS ester boya bir mikrogram ekleyin ve kabarcıklar önlemek için pipetleme yavaşlatarak çözelti homojenize. Hafif ajitasyon ile 10 dakika oda sıcaklığında karanlıkta kuluçka.Aynı miktarda boya ekleyerek ve numuneyi bir kez kuluçkaya yatırarak bu işlemi tekrarlayın. Çözeltinin pH'ını 7,2'ye ayarlamak ve reaksiyonu gidermek için 100 mikrolitre 0,8 molar HEPES-sodyum hidroksit ekleyin. Çözeltiyi homojenize etmek için yavaşça yukarı ve aşağı pipet.Sonra, Biotin-2-amin ve EDC beş mikrolitre 20 mikrolitre ekleyin. Yavaş yavaş yukarı ve aşağı borular oluşturarak çözeltiyi homojenize edin. Hafif ajitasyon ile bir saat boyunca oda sıcaklığında karanlıkta kuluçka.Bundan sonra, tepkisiz etiketleme reaktiflerini çıkarmak ve numuneyi yoğunolarak konsantre etmek için 10 kiloDalton kesme ile ultrafiltrasyon sütunu kullanın. Protein numunesi ve moleküler merdiven için standart SDS-PAGE yaptıktan sonra, protein bantlarının yerini belirlemek için jeli görüntüleyin. Bantların konumlarına göre protein fraksiyonları içeren jel kısımlarını kesmek için keskin bir bıçak kullanın.İlk olarak, 22 milimetre tarafından 22 milimetre ve 0.15 milimetre kalınlığında kapakları dışarı ayarlayın. Yüzeylerini temizlemek ve etkinleştirmek için kapakları hava plazmasına bir dakika lığına maruz bırakmak için bir plazma temizleyicikullanın. Daha sonra, 500RPM beş saniye için avadin tampon 200 mikrolitre ile coverlips spin için bir spin coater kullanın, 1000RPM 30 saniye takip.Kapak dudaklarını oda sıcaklığında 15 dakika kuluçkaya yatırArak havanın kurumasını bekleyin. Protein örneği için kapak lar hazırlamak için seyreltilmiş bir protein örneği kullanın. Seyreltilmiş numunenin 100 mikrolitresini avadin kaplı kapakların ortasına yerleştirin.15 dakika oda sıcaklığında karanlıkta kuluçka. Pozitif kontrolü hazırlamak için, pH 7.2'de beş mikromolar HEPES-sodyum hidroksite 100 mikrolitre saflaştırılmış floresan biyotin yerleştirin. 15 dakika oda sıcaklığında karanlıkta kuluçka.Negatif kontrolü hazırlamak için spin coat plazma, avadin olmadan mililitre başına iki miligram olan beş HEPES-sodyum hidroksitin 200 mikrolitresi ile kapakları kapsamaktadır. PH 7.2'de beş mikromolar HEPES-sodyum hidroksitte saflaştırılmış floresan biyotine 100 mikrolitre ekleyin. Oda sıcaklığında 15 dakika karanlıkta kuluçkaya yat.Bundan sonra, her coverslip'i 200 mikrolitre distile su ile durulayın, kenarlarında borular ile tutarak, pipet ucuyla kapak kaymanın ortasına dokunmamaya özen. Bu yıkamayı üç kez tekrarlayın. Daha sonra, bir dakika lığına eşit sayıda yeni kapak dudakını hava plazmasına maruz bırakın.Kurumasını önlemek için numuneye bağlı her kapak lı nın üzerine temizlenmiş bir kapak fişi yerleştirin. Geniş alan veya evanescent alan floresan mikroskobu başlatın. Mikroskoba bir kapak kayması ayarlayın ve odak noktasını bulun.Ardından, en az 100 görüntü elde etmek için bir döşeme tayini gerçekleştirin. Bu çalışmada, hücrelerde etiketlenmiş her protein türünün etiketleme homojenliği SDS-PAGE ile ayrıldıktan sonra ölçüldü. HeLa hücre lisatından proteinlerin farklı molekül ağırlıklı fraksiyonlarının ham görüntü verilerinin yanı sıra pozitif ve negatif kontroller de burada görülmektedir.Hem protein örneği hem de pozitif kontrol görüntü başına 100 ile 500 nokta arasında sergilenirken, negatif kontrol çok az ıstabiri yok. Bu, sürecin boyaların kapak yüzeyine spesifik olmayan bağlanmasını yeterince engellediğini gösterir. Protein örnekleri ve pozitif kontrol için spot yoğunluklu histogramlar, boyaların proteinlerdeki primer aminlere ve avadin tetramer yapılarına stokstik bağlanmasını temsil eden birden fazla tepe yi tir.Tüm noktalar sürekli lazer uyarma ile yanıp sönen ve adım adım fotobeyazlatma gösterdi, tek molekül düzeyinde gözlem vurgulayarak. Etiketleme doluluk, ya da LO, daha sonra pozitif kontrol de her protein örnekleke lerinin oranı hesaplanır. HELa hücreli lysate numunesinden ölçülen LO, daha küçük molekül ağırlık fraksiyonu için %50 ile daha yüksek molekül ağırlık fraksiyonu için %90 arasında değişmektedir.Tüm proteom numunesinin ayrıştırılmadan LO'su %72 olarak görülür Özellikle kapak kapaklarının hazırlanması sırasında taze yapılmış reaktiflerin kullanılması ve tozdan kaçınmak önemlidir. Bu işlemden sonra, her proteinin konsantrasyonlarını ölçmek için belirli bir hacimde tek molekül sayma analizi yapılabilir. Örneğin, herhangi bir ham ürün veya jel ve kılcal elektroforez ürünleri üzerinde analiz yapılabilir.Bu teknik, tek moleküllü floresan görüntülemenin moleküler tıp, organik kimya ve omik analizine kullanılmasının önünü açar. Konsantrasyon ve sayılar arasındaki kavramı birleştirerek. Konsantre sodyum hidroksit aşındırıcıdır ve kullanım sırasında yeterli koruma takılmalıdır.Ayrıca, yüksek güçlü lazer radyasyongöz hasarına neden olabilir, bu yüzden koruyucu gözlük takılabilir.

proteome-wide-quantification-labeling-homogeneity-at-single-molecule

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biyokimya

Kütle spektrometresi gelişmeler dokuların bir dizi protein ifade ve modifikasyon yüksek verimlilik analizi sağladı. Subselüler fraksiyonasyon ve hastalık modelleri, spektrometresi ve biyoinformatik biyolojik sistemlerde yeni özellikleri ortaya çıkarabilir nicel kitle ile birlikte. Burada açıklanan yöntem, kalp hastalığı arasında bir ortamda kromatin ilişkili proteinlerin analiz eder ve diğer kolayca...

Hastalığında Kromatin Proteomlar Kantitatif Analiz

Indirgeyici dimetilasyonu (Redi etiketleme) tarafından peptidlerin kararlı izotop etiketleme doğru kütle spektrometresi tabanlı nicel Proteomikte için hızlı, ucuz bir stratejidir. Burada, hemen hemen her tür örnek uygulanabilir Redi yaklaşım kullanılarak protein karışımlarının hazırlanması ve analizi için güçlü bir yöntem ortaya koymaktadır.

Kararlı İzotop Etiketleme için indirgeyici dimetilasyonu kullanma Sayısal Proteomiks

Plazmada kombine proteomik ve glikomik saflaştırma ve LC-MS/MS miktar tayini için yüksek verimli bir protokol geliştirilmiştir. N-bağlı glikozilasyon motiflerinin deamidasyon analizi, deglikosile edilmiş bölgelere özgüydü. N-glikanların doğru kantitasyonu, glikan hidrazid etiketleri stratejisi ile etiketleme yapılırken filtre destekli N-glikan ayrımının bireysellik normalizasyonuna bağlanmasıyla elde edildi.

Nicel Glycomics ve Proteomik Kombine Arıtma Stratejisi

Biz doğru bir şekilde sıvı Kromatografi yüksek çözünürlüklü bir Kütle Spektrometre için arabirim ile proteinler ile izobarik etiketleme, geniş ayırma, Biyoinformatik araçlarını ve kalite kontrol adımları birlikte quantitate için bir protokol mevcut.

Derin Proteom izobarik etiketleme, kapsamlı sıvı Kromatografi, kütle spektrometresi ve yazılım destekli miktar tarafından profil oluşturma

Bu el yazması ile DNA probları fluorescently etiketli tek molekül Floresans in situ hibridizasyon (smFISH) E. colideneylerde kullanmak için bireysel mesajcı RNA (mRNA) Tutanaklar etiketleme yöntemi açıklar. smFISH eş zamanlı algılama, Yerelleştirme ve miktar tek mRNA molekülleri sabit tek tek hücreleri içinde izin veren bir görselleştirme yöntemidir.

Transkript bireysel Escherichia coli hücrelerdeki tek molekül Floresans In Situ hibridizasyon deneyleri için etiketleme yöntemi

Bu iş akışı, nicel küresel proteomik analiz için aynı anda birden fazla protein çeviri sonrası modifikasyonun (PtM) zaman ve maliyet-etkin zenginleşmesinin performansını açıklar. Protokol, ptm çapraz konuşmasına biyolojik kavrayışlar kazandırmak için birden fazla konjuge antikorla peptid düzeyinde PTM zenginleştirme, ardından da veri bağımsız iktisap kütle spektrometresi analizini kullanmaktadır.

Niceleme ve Site Yerelleştirmesi Için İki Çeviri Sonrası Modifikasyonun Eşzamanlı Affinity Zenginleştirmesi

Aşağıdaki adımların her biri için ayrıntılı bilgi içeren optimize edilmiş bir tandem kütle etiketi (TMT) etiketleme protokolü salıyoruz: protein ekstraksiyonu, nicelikselleştirme, yağış, sindirim, etiketleme, proteomik bir tesise teslim ve veri analizleri.

Proteomik Tesis Gönderimi ve Müteakip Veri Analizi için TMT Örnek Hazırlama

Açıklanan protokol, iki yaklaşım kullanarak doku örneklerinin optimize edilmiş bir nicel proteomik analizini sağlar: etiket bazlı ve etiketsiz nicellik. Etiket tabanlı yaklaşımlar proteinlerin daha doğru nicelliği avantajına sahipken, etiketsiz bir yaklaşım daha uygun maliyetlidir ve bir kohorttan yüzlerce örneği analiz etmek için kullanılır.

Doku Örneklerinin Kütle Spektrometresi Bazlı Av Tüfeği Proteomik Kapsamlı İş Akışı

Burada, kitle spektrometresi bazlı proteomik enfeksiyon sırasında konak ve patojen arasındaki etkileşimin profilini çıkarmak için bir protokol sunuyoruz. Bu protokol, tek bir deneyde hem konakçının (örneğin, makrofajlar) hem de patojenin (örneğin Cryptococcus neoformans)protein bolluğundaki değişiklikleri ölçmek için etiketsiz niceleme kullanır.

Keşif Odaklı Konak-Patojen Etkileşimleri için Etiketsiz Nicel Proteomik İş Akışı

Burada, çeşitli hücre tiplerinin hücre yüzeyi proteomunun karakterizasyonu için bir proteomik iş akışını açıklıyoruz. Bu iş akışı, hücre yüzeyi proteini zenginleştirmeyi, müteakip numune hazırlamayı, bir LC-MS/MS platformu kullanarak analizi ve özel yazılımla veri işlemeyi içerir.

Hücre yüzeyi proteomunun etiketsiz miktar tayini için "hücre yüzeyi yakalama" iş akışı

Öğrenin, tek molekül düzeyinde protein etiketleme homojenliğini floresan işaretleme ve elektroforez kullanarak değerlendirmeyi. Bu yöntem, patojenik moleküllerin tanısı için hassas protein analizi sağlar.

Proteom çapında Quantification maddelerinin homojenliği tek molekül düzeyinde etiketlenmesi

Daha fazla video keşfet