-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Tek Molekül Lokalizasyon Mikroskobu Kullanılarak Hücre Çekirdeğinde Mutlak DNA Yoğunluğunun Harit...
Tek Molekül Lokalizasyon Mikroskobu Kullanılarak Hücre Çekirdeğinde Mutlak DNA Yoğunluğunun Harit...
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Mapping Absolute DNA Density in Cell Nuclei using Single-molecule Localization Microscopy

Tek Molekül Lokalizasyon Mikroskobu Kullanılarak Hücre Çekirdeğinde Mutlak DNA Yoğunluğunun Haritalanması

Full Text
752 Views
10:57 min
November 11, 2025

DOI: 10.3791/64268-v

Márton Gélleri1, Hilmar Strickfaden2

1Institute of Molecular Biology (IMB), 2Max Planck Institute for Polymer Research

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study describes a method for measuring absolute DNA densities within adherent cell nuclei, utilizing Voronoi tessellation of single-molecule localization microscopy (SMLM) data. This approach enables the investigation of spatial constraints in chromatin structures, linking genetic information with cell cycle stages.

Key Study Components

Research Area

  • Cell biology
  • Genetics
  • Microscopy and imaging techniques

Background

  • Understanding DNA density is crucial for investigating chromatin architecture.
  • Current methods often rely on post-translational modifications of histones.
  • Knowledge of total DNA content is essential for accurate measurements.

Methods Used

  • Voronoi tessellation of SMLM data
  • Adherent cell nuclei as the biological system
  • Image analysis software such as CellProfiler and ImageJ

Main Results

  • Measurements yield DNA densities expressed in base pairs per square micrometer.
  • Future directions include correlating density differences with epigenetic modifications.
  • Method validates the influence of cell cycle stages on DNA content measurement.

Conclusions

  • This protocol allows for precise evaluations of DNA density in cell nuclei.
  • The study paves the way for integrating genomic data with physical characteristics of chromatin.

Frequently Asked Questions

How is DNA density measured in this study?
DNA density is measured using Voronoi tessellation of single-molecule localization microscopy data combined with cell cycle analysis.
What biological systems are primarily investigated?
The method focuses on adherent cell nuclei, providing insights into chromatin architecture.
What role does cell cycle stage play in this method?
Cell cycle stages inform the DNA content and density calculations, enhancing the accuracy of measurements.
What technologies are utilized in the measurement process?
The study employs single-molecule localization microscopy and image analysis software such as CellProfiler and ImageJ.
What are potential future applications of this method?
Future experiments could explore correlations between DNA density and epigenetic modifications using immunofluorescence or Hi-C data.
How is data processed after image acquisition?
Data is processed using tailored algorithms for localization and filtering within software like ThunderSTORM in ImageJ.
What implications does this research have for genetics?
This method enhances our understanding of genomic organization and may elucidate relationships with genetic traits or diseases.

Mevcut protokol, tek moleküllü lokalizasyon mikroskobu verilerinin, bilinen hacmin, genom boyutunun ve hücre döngüsü aşamasının Voronoi mozaiklemesini kullanarak yapışık hücre çekirdekleri içindeki mutlak DNA yoğunluklarını ölçen bir yöntemi açıklamaktadır.

Mevcut yöntem, hücre çekirdeklerindeki mutlak DNA yoğunluğu ölçümlerinin, aksi takdirde yalnızca translasyon sonrası histon modifikasyonları ile karakterize edilen kromatin yapılarındaki uzamsal kısıtlamaları araştırmasına izin verir. SMLM ile birleştirilmiş Voronoi mozaiklemesi, mikrometre kare başına baz çifti cinsinden DNA'nın mutlak yoğunluk tahminlerine izin verir. İhtiyaç duyulan tek önsel bilgi, ölçülen hücre çekirdeğinin toplam DNA içeriğidir.

Gelecekteki deneylerde, mutlak yoğunluk farklılıklarının, epigenetik modifikasyonların immünofloresansı veya Hi-C verileri gibi diğer yöntemlerden elde edilen biyolojik bilgilerle ilişkili olup olmadığını araştırmak ilginç olacaktır. Önceden kaydedilmiş tek görüntüleri bir araya getirerek taranan alanı yeniden oluşturarak başlayın. CellProfiler'ı açın ve cellcycleanalysis.cpproj işlem hattını yükleyin.

İşlem hattının ilk adım görüntülerinde, başvuru görüntüsü de dahil olmak üzere görüntüleri sürükleyip bırakın. Ardından, referans görüntülerin saklanacağı bir konum tanımlayın. Ardından Test Modunu Başlat simgesine ve ardından Çalıştır'a tıklayın.

Analiz edilecek görüntüdeki çekirdeklerin histogramı görüntülendikten sonra, G1, S ve G2 fazları için yoğunluk aralıklarını belirleyin ve bunların boru hattının sonraki filtre nesnesi adımlarına girildiğinden ve bu adımların aktif olduğundan emin olun. Ardından, ardışık düzenin ikinci yarısına devam etmek için Çalıştır düğmesine tekrar tıklayın. Farklı hücre döngüsü aşamalarını, G1, S veya G2'yi temsil eden kaplamalara sahip üç resme bakın ve daha fazla görüntüleme için G1 veya G2'deki çekirdekleri seçin, böylece görüntü çekirdeklerinin baz çiftlerindeki DNA miktarı bilinir.

Hücreleri tek molekül lokalizasyon mikroskobunda yeniden konumlandırın ve FPALM işleminin uygun şekilde yanıp sönmesini sağlayın. İlk olarak, dilim başına yalnızca 500 kare kullanarak seçilen çekirdeğin 3B yığınını kaydedin. Bu, orta bölümdeki nispi DNA miktarının belirlenmesine izin verir ve daha sonra üst yapısını ortaya çıkarmak için çok daha fazla çerçeve ile görüntülenir.

Görüntü serisi alımına 50 milisaniyelik bir pozlama süresi kullanarak başlayın, bu da saniyede yaklaşık 20 karelik bir kare hızıyla sonuçlanır. 200 nanometre adım aralıkları ve ışık optik bölümü başına yalnızca 500 kare ile çekirdekten bir Z yığını alın. Yığın alındıktan sonra, ilk z konumuna dönün ve aynı 50 milisaniye pozlama süresine sahip 50.000 karelik ana veri setini elde edin.

FPALM veri kümesini ImageJ'de açın. Yanıp sönen sinyallerin algılanmasına yönelik ayarları optimize etmek için ThunderSTORM'a ve ardından Analizi çalıştır'a tıklayın. Şimdi Kamera kurulumunu seçin.

Görüntü verilerinin doğru piksel boyutunu, A/D sayısını, kullanılan kameranın kuantum verimliliğini, temel seviyeyi ve EM kazancını girin ve ardından Tamam'ı tıklatın. Yanıp sönen sinyalleri sığdırarak yerelleştirme koordinatlarını belirlemek için algoritmayı seçin. Görüntü filtreleme bölümünde, B-Spline sırası 3 ve B-Spline ölçeği 2 ile Dalgacık filtresi B-Spline'ı kullanın. Ardından, Moleküllerin yaklaşık lokalizasyonu Yöntemini Yerel maksimum olarak ayarlayın, Tepe yoğunluğu eşiğini ve Bağlantıyı 8 komşuluk olarak ayarlayın.

Moleküllerin alt piksel lokalizasyonu bölümünde, Yöntem olarak PSF tümleşik Gauss'u seçin, Sığdırma yarıçapı px'i 3 olarak ayarlayın, Sığdırma yöntemini Maksimum olasılık olarak seçin ve İlk sigma'yı 1,6 olarak ayarlayın. Sonra tıklayın OK sinyallerin algılanmasını ve görüntünün yeniden oluşturulmasını başlatmak için. Alım farklı görüntü yığınlarına bölünmüşse, yerelleştirme tablolarını ThunderSTORM'da birleştirin.

Bunu yapmak için, açılır pencerede İçe Aktar'a tıklayın. Geçerli tabloya ekle seçeneğinin etkinleştirildiğinden ve tablodaki yerelleştirmelerin geçersiz kılınmasını önlemek için doğru başlangıç numarasının kullanıldığından emin olun. Ardından dosya yolunu seçin ve bir dosyayı birbiri ardına içe aktarmak için Tamam'ı tıklayın.

Ardışık karelerde sinyallerin fazla sayılmasını önlemek için, molekül başına maksimum 20 nanometre mesafe, maksimum 1 kapalı kare ve 0 maksimum kare kullanarak yerelleştirme verilerini birleştirin ve ardından Birleştir'i tıklatın. Veri alt bölümlerini çapraz ilişkilendirerek sapmayı ölçmek ve düzeltmek için Sapma düzeltme menüsünü açın ve okları tıklatın. 3 kutu ekleyin ve Büyütmeyi 5'e ayarlayın.

Ardından Uygula'ya tıklayın, x ve y kaymasını gösteren pencere görünecektir. Her dilim için 500 kare ile önceden kaydedilmiş 3B yığının her dilimindeki DNA içeriğiyle orantılı sinyal miktarını belirlemek için Eklentiler'i, ardından ThunderSTORM'u ve ardından İçe/Dışa Aktar'ı seçin ve yığının ilk dilimi için sonuç tablosunu içe aktarın. 3B yığının diğer görüntü düzlemlerinden gelen sinyallerin aşırı sayılmasını önlemek için, dilimler arasındaki z cinsinden 200 nanometre adım aralığının dışından gelen sinyallerin kaldırılması gerekir.

Histogramı çiz'e basın ve açık Dağıtım iletişim kutusunda z'yi seçin ve Tamam'a basın. Tepe noktasının konumunu belirleyin ve optik adım boyutu 200 nanometre olan sinyalleri seçmek için filtre alanını kullanın. Görselleştirme'ye tıklayın ve Histogramlar seçeneğini seçin, ardından Tamam'a tıklayın. Ortaya çıkan görüntüyü TIFF formatında bir klasöre kaydedin. Tüm dilimleri açın ve Görüntü'yü, ardından Yığınlar'ı ve ardından Yığınlanacak Görüntüler'i kullanarak bunları birleştirin.

Tüm görüntü alanını seçtikten sonra Analiz Et'e gidin, Araçlar'a tıklayın ve ROI Yöneticisi'ni seçin. Ekle'ye tıklayın, ardından Analiz Et'e tıklayın, ardından Ölçümleri Ayarla'ya tıklayın ve Entegre yoğunluk'u seçin. Şimdi, Daha Fazla seçeneğini seçin, Çoklu Ölçü'yü seçin, Tüm yığınları ölç ve Dilim başına bir satır seçeneğini işaretleyin.

Tamam'a tıkladığınızda sonuçlar görünecektir. Tüm dilimlerin yoğunluklarının toplamı, tüm çekirdeğin DNA içeriği ile orantılıdır, tıpkı tek tek dilimlerin yoğunluklarının tüm genomun fraksiyonlarıyla orantılı olması gibi. 50.000 karelik sinyalleri içeren merkez düzlemin sonuç tablosunu açtıktan sonra, 100 nanometre kalınlığa filtreleyin.

Daha önce gösterildiği gibi ortaya çıkan sinyallerin histogramını oluşturun ve merkez bölümün entegre yoğunluğunu ölçün. MATLAB betiği TS2orte'yi çalıştırarak orta bölümdeki ultrastrüktürel bilgileri içeren büyük ThunderSTORM yerelleştirme tablosunu csv formatından ORTE formatına dönüştürün. m, yerelleştirme tablosunu bir MATLAB matrisine dönüştürür ve mat formatında kaydeder.

LAND-voronoi klasörüne gidin ve coreAlgorithm alt klasöründe voronoicluster dosyasını açın. m ve mutlak yoğunluk hesaplamaları için kullanılan hücre tipine ve hücre döngüsü aşamasına göre DNA içeriğini, tüm çekirdek fraksiyonu DNA'sının gözlemlenen merkez bölümünün fraksiyonunu ve lokalizasyonlarını ve dönüşüm faktörünü ayarlayın. Analizi başlatan komut dosyasını düzenleyin voronoi.m.

Orte yerelleştirme verilerine ve sonuç dosyaları için çıktı klasörüne dosya yolunu ayarlayın. Mozaiklemenin yapılması gereken alanı tanımlayan koordinatları belirtin. Aynı giriş veri kümesi içinde hesaplanacak birden çok alan tanımlayın.

Komut dosyasını çalıştırdıktan sonra, alan dağılımının histogramını ve yoğunluklarını gösteren grafikler içeren diğer dosyalarla birlikte mutlak DNA yoğunluklarını gösteren görüntüyü arayın. m çıktı klasöründeki hesaplanan her bir Voronoi hücresinin yoğunluklarını içeren dosya. 50.000 kareden oluşan FPALM ölçümü, 100 nanometre kalınlığındaki bir orta bölüm içinde tespit edilen 6 lokalizasyonun gücüne 2,68 çarpı 10 ile sonuçlandı.

Yeniden oluşturulan görüntünün lokalizasyon doğruluğu 10 nanometreydi. Çok sayıda lokalizasyon, mutlak DNA yoğunluklarını gösterirken süper çözünürlüklü görüntülemenin kombinasyonuna izin verdi. Ölçülen DNA yoğunluklarının çekirdek boyunca eşit olarak dağılmadığı ve geniş bir dinamik aralığı kapsadığı açıktı.

Çekirdek içindeki daha büyük Voronoi hücrelerini gösteren alanların daha yüksek büyütmeleri, düşük DNA yoğunluklarını gösterirken, daha küçük hücreler yüksek DNA yoğunluklarını gösterdi. G1C3H10T yarım çekirdekte ölçülen DNA yoğunlukları, farklı bir tür ve türün çekirdeği içindeki mutlak DNA yoğunluğu dağılımını gösterdi. Temel organizasyon erken G1 HeLa çekirdeğine benzese de, ayrıca parasentrik heterokromatin kurucu kümelerine sahipti.

Biraz artan nükleer boyuta rağmen G2 çekirdeğinde dramatik bir mimari değişiklik gözlenmedi. TSA ile tedavi edilen HeLa çekirdeği, nükleer topografya ve DNA yoğunluğu açısından dikkate değer farklılıklar gösterdi. Daha yüksek DNA yoğunluğuna sahip adalar gösteren periferik heterokromatin dışında, kromatinin geri kalanı çok daha homojen ve yoğunlaşmamış görünüyordu.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

JoVE'de Bu Ay Sayı 225 SMLM fBALM Sytox Orange DNA yoğunluğu Kromatin Voronoi Mozaikleme

Related Videos

Tek Molekül Görüntüleme Nükleer Ulaştırma

12:13

Tek Molekül Görüntüleme Nükleer Ulaştırma

Related Videos

13.7K Views

Doğrudan Etiketli Problar kullanarak Sağlam 3D DNA BALIK

12:16

Doğrudan Etiketli Problar kullanarak Sağlam 3D DNA BALIK

Related Videos

35.4K Views

Fotoaktive Tek molekül Takip Kullanma Canlı Bakteriyel Hücrelerde Protein-DNA Etkileşimleri görselleştirme

16:21

Fotoaktive Tek molekül Takip Kullanma Canlı Bakteriyel Hücrelerde Protein-DNA Etkileşimleri görselleştirme

Related Videos

18.3K Views

Protein-DNA Etkileşiminin Çalışmaları Tek molekül Manipülasyon ve Görüntüleme birleştiren

14:43

Protein-DNA Etkileşiminin Çalışmaları Tek molekül Manipülasyon ve Görüntüleme birleştiren

Related Videos

12K Views

Yüksek içerik, Open Source Software tarafından desteklenen Evrensel Mikroskop Verilerden Floresan Göstergeler, Bireysel Hücre Niceleme için iş akışı

09:57

Yüksek içerik, Open Source Software tarafından desteklenen Evrensel Mikroskop Verilerden Floresan Göstergeler, Bireysel Hücre Niceleme için iş akışı

Related Videos

13.5K Views

DNA değişiklikler için Immunostaining: Confocal görüntülerin sayısal analiz

09:42

DNA değişiklikler için Immunostaining: Confocal görüntülerin sayısal analiz

Related Videos

10.2K Views

Tek Moleküllü İzleme Mikroskobu - Sitosolik Moleküllerin Diffüz Durumlarını Belirlemede Bir Araç

10:20

Tek Moleküllü İzleme Mikroskobu - Sitosolik Moleküllerin Diffüz Durumlarını Belirlemede Bir Araç

Related Videos

8.7K Views

3D Çok Renkli DNA FISH Aracı İnsan Birincil Hücrelerde Nükleer Mimari Çalışma

11:25

3D Çok Renkli DNA FISH Aracı İnsan Birincil Hücrelerde Nükleer Mimari Çalışma

Related Videos

10.8K Views

Tek moleküllü korelasyon kuvveti ve floresan mikroskobu için yerinde nükleozom düzeneği

05:58

Tek moleküllü korelasyon kuvveti ve floresan mikroskobu için yerinde nükleozom düzeneği

Related Videos

1.6K Views

Çekirdek Miktarını Kolaylaştırmak için Bilgisayarla Görme Kitaplıklarını Kullanma

06:25

Çekirdek Miktarını Kolaylaştırmak için Bilgisayarla Görme Kitaplıklarını Kullanma

Related Videos

611 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code