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Composé d’Administration j’ai

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administration composé est souvent une partie intégrante d’une étude sur des animaux, et de nombreux facteurs doivent être évalués afin de s’assurer que le composé est livré correctement et de manière humaine. Les deux routes principales d’administration sont entérale-via le tube digestif et parentérale-extérieur du tube digestif. La principale différence, c’est si le composé est donné par voie entérale elle subit un métabolisme hépatique avant d’entrer dans la circulation sanguine. Considérant que, par toute voie parentérale, comme par voie intraveineuse ou intramusculaire, la substance ignore ce premier passage dans le foie, entraînant généralement une biodisponibilité plus élevée.

Dans cette première vidéo de la série sur l’administration composée, nous allons commencer par examiner les facteurs qui influent sur le choix de la voie d’administration en général. Et puis nous vais passer en revue les injections parentérales plus communes méthodes, y compris sous-cutanée abrégées en SC ou SubQ, intrapéritonéale ou IP, intramusculaire ou IM et intraveineuse AKA IV.

commençons par examiner quelques choses qu’il convient de garder à l’esprit avant d’effectuer n’importe quel type de procédure d’administration composés. La première étape consiste à préparer la solution ou en suspension à doser, et la première considération fondamentale pour la préparation de la substance est la stérilité. Prévient-on introduction de pathogènes dans l’animal, il est important que le matériel d’injection ainsi que les aiguilles et les seringues à utiliser sont stériles.

La deuxième considération est compati physiologiquebogard. Une solution de dosage, si administré entérale ou parentérale, doit être physiologiquement tamponnée au pH adapté pour le composé doit être correctement absorbée et afin d’éviter des lésions tissulaires. Le troisième facteur est la viscosité de l’article de l’injection, qui joue un rôle essentiel dans le choix de l’aiguille. Habituellement, les aiguilles de calibre de 20 à 30 sont utilisés dans les procédures d’administration parentérale pour souris et rats. Les moyeux de ces aiguilles sont habituellement de couleur pour faciliter leur identification.

La solution devrait avoir assez de fluidité pour passer au moins une de ces aiguilles. Si la solution peut passer par plus d’un, puis, en général, le choix est le plus petit calibre possible. Le prochain facteur est le volume d’administration que les affects seringue sélection. Semblables à des aiguilles, la plus petite seringue possible nécessaire pour le dosage précis des graduations correctes, il faut choisir. Le calibre de l’aiguille et le volume de l’administration sont également dépendantes sur la route et les espèces, la taille et âge de l’animal étant administré. Voir le tableau 1 ci-dessous pour examiner les valeurs liées aux routes discutés dans cette vidéo. L’examen final important est le taux d’absorption, qui varie sensiblement en fonction de chaque voie d’administration et peut jouer un rôle dans le choix de la méthode mieux adaptée.

maintenant, nous nous attardons sur les caractéristiques particulières des méthodes couramment employés injection.

SC ou Injection SubQ place la matière entre les couches de la peau et le muscle dans un espace virtuel créé en soulevant la peau. Cela permet pour la sécurité des injections de plus gros volumes, mais le taux d’absorption est plus lent que les autres routes, fournissant un effet plus soutenu. Au cours de l’administration de la propriété intellectuelle, le composé est injecté directement dans la cavité péritonéale. Il s’agit d’une autre méthode couramment employée pour livrer de grandes quantités de solution. Bien qu’une injection Intrapéritonéale est considéré comme l’administration par voie parentérale, le mécanisme d’absorption est effectivement plus semblable à l’administration par voie orale.

Injection IM an fournit un composé directement dans les fessiers ou les muscles gastrocnémiens. Une substance qu'injectée IM est rapidement absorbé en raison du nombre abondant des vaisseaux dans les tissus musculaires, ce qui pourrait rendre un itinéraire préféré dans certains cas. Incorrecte ou répétée injection dans le muscle peut provoquer des lésions nerveuses entraînant une nécrose musculaire ou de paralysie. Enfin, une injection IV dans la veine de la queue de l’animal est le moyen le plus efficace de l’administration, comme la substance est directement introduite dans le système circulatoire. Notez que le composé doit être injecté dans une des veines queue caudales latérales situées sur les côtés de la queue. Il y a un bateau qui longe la ligne de médiane ventrale de la queue, ce qui n’est pas convenable pour les injection.

maintenant que nous avons discuté de l’arrière-plan, nous allons apprendre les procédures, en commençant par les injections SC. Pour les souris, choisir l’animal par sa queue et lui permettre de se reposer sur une autre surface solide, comme couvercle fil-bar. Puis, manuellement empêcher l’animal en soulevant la peau autour du cou, formant une tente. Ensuite, mettre l’animal sur la table avec les pattes arrières reposant sur la surface et poser la paume de votre main sur la table pour éviter trop de poids sur l’animal qui peut compromettre la respiration.

Pour injecter, ramasser la seringue avec la solution à doser et diriger le parallèle de l’aiguille vers la colonne vertébrale et loin de la tête pour éviter les risques de crevaisons sur le crâne. Ensuite, insérez l’aiguille avec le biseau vers le haut, qui permet une glisse doucement dans la peau. Tirer sur le piston pour vérifier la mise en place correcte de l’aiguille. S’il y a la contre-pression lorsque le piston est tiré vers l’arrière, puis l’aiguille est dans la position correcte. Si l’air est aspiré par le piston, puis l’aiguille devront être repositionnées.

Après avoir vérifié que l’aiguille est correctement positionnée, injectez doucement avec un mouvement constant. Pause après l’injection et tourner l’aiguille légèrement sous la peau pour prévenir la perte de l’article de l’injection. Puis, pincer la peau au point d’injection et de retirer l’aiguille. Cette même méthode peut être utilisée chez les rats sevrés.

Pour les rats adultes, l’animal doit d’abord être immobilisés à l’aide d’un appareil, la procédure pour laquelle est abordée dans la vidéo de « Bases de manipulation et de retenue » de cette collection. Ensuite, on peut effectuer l’injection sous-cutanée de la même manière comme fait chez la souris.

ensuite, nous allons apprendre comment effectuer une injection Intrapéritonéale. Chez la souris, utilisez la technique retenue à deux mains pour empêcher manuellement l’animal, encore décrit dans la vidéo de « Bases de manipulation et de retenue ». Veiller à ce que votre main non-dominante est positionné assez haut sur le manche pour empêcher l’animal de tourner. Stabiliser l’arrière-train en plaçant la queue entre les troisième et quatrième doigts ou en épinglant la peau fermement entre les doigts restants et la base du pouce.

Ensuite, placez l’animal pour exposer son abdomen. Inclinez l’animal avec la tête vers le bas à un angle de 30° pour permettre les intestins à tomber vers l’avant. L’emblème de l’injection peut se résumer comme suit : Tracez une ligne imaginaire qui s’étend horizontalement à travers le corps, en haut de la hanche, du flanc à flanc. Puis dessinez la frontière médiale, ou la ligne médiane, le long de la ligne où rencontre les poils qui poussent dans des directions opposées. Enfin, imaginez le bord latéral, qui est une ligne du haut les hanches vers le prépuce chez les hommes et à la suite des trayons chez les femelles. Ceci fournit la zone triangulaire pour la sécurité des injections de IP.

la prochaine méthode que nous allons discuter est injection IM. Retenue dans cette technique pour les souris et les rats nécessite deux personnes ou l’utilisation d’un tube de retenue. Ici, nous allons décrire la méthode seule personne utilisant un dispositif de retenue.

D’abord, placez l’animal dans le tube et avec les pattes dehors, tirez la queue à la position de l’animal. Ensuite, saisissez la peau du flanc à la partie crâniale du fémur pour allonger la jambe et empêcher la flexion de l’articulation fémoro. Ensuite, placez le dispositif de retenue pour permettre la visualisation du site d’injection.

Pour identifier le point de repère fessier, localiser le muscle fessier masse postérieur sur le fémur. L’OS peuvent être palpé et le muscle grand est facilement ressenti. Notez la ligne médiane qui relie le point de la pointe du jarret à la queue. Vous pouvez souvent voir la crête où les cheveux des surfaces latérales et intérieures se retrouvent de plus en plus dans des directions opposées. En règle générale, les injections sont réalisées au latéral l’aspect de la ligne médiane. Le muscle gastrocnémien est le muscle du mollet et injection dans ce muscle est également préférable d’effectuer de la face postérieure.

Pour le muscle fessier, au landmark situé, insérer l’aiguille à une profondeur maximale d’environ 5 mm. Eviter de repositionnement de la seringue pendant l’injection pour prévenir les lésions musculaires. Ensuite, aspirez pour veiller à ce que le placement est dans le muscle, pas un vaisseau sanguin. Et enfin, injecter le matériau de façon lente et régulière, puisque l’injection rapide causera traumatisme tissulaire. Retirer l’aiguille de façon perpendiculaire, suivant le même itinéraire que celui de l’insertion. Pour le muscle gastrocnémien, insérer l’aiguille à une profondeur maximale de 3 mm et effectuer l’injection de la même manière que pour le muscle fessier.

Enfin, nous allons apprendre à effectuer une injection IV dans les veines de queue des rongeurs. La même méthode est apapplicables pour les souris et les rats.

Placer l’animal dans un tube cylindrique de retenue et de réchauffer le corps entier de l’animal à l’aide d’un tampon de chauffage électrique défini sur moyen pendant environ 2-5 minutes. Continuer à réchauffer l’animal, jusqu'à ce que les vaisseaux sanguins deviennent dilatés, ce qui est nettement plus gros. N’oubliez pas, les nervures latérales caudale queue sont situés sur les côtés de la queue. L’artère qui est dans la ligne médiane ventrale n’est pas adapté aux fins de l’injection. Faites tourner le dispositif de retenue et positionner la queue tel que les veines de queue latéral pointent vers le haut et qui s’est tenue sous tension. Ne pas appliquer une tension excessive ou le navire peut être étiré et le flux sanguin diminué.

Placer l’aiguille conique-up directement sur les vaisseaux sanguins dans la partie distale que possible et appliquez une légère pression pour introduire l’aiguille dans le parallèle de la queue de la colonne vertébrale. Injecter le matériau dans un mouvement lent et fluid et remarquez que le navire blanches comme le sang est poussé par le matériel d’injection. Si l’aiguille n’est pas correctement positionné dans la cuve, il y aura une forte résistance lors de l’injection et si vous vous injectez avec force la matière remplira l’espace sous-cutané et la queue se gonfler. Arrêter immédiatement car ce produit - qui est conçu pour être injecté par voie intraveineuse - peut être corrosif pour les tissus environnants. Retirer l’aiguille et essayez une autre injection plus proche sur la queue. Après l’injection réussie, retirer l’aiguille et appliquez une pression sur le site d’injection afin d’assurer la bonne hémostase avant de regagner la cage de l’animal.

maintenant que vous êtes familiarisé avec les méthodes courantes d’injection, penchons-nous sur certaines applications de ces voies d’administration, autres que les medicaments.

Dans de nombreuses expériences, les souris sont injectés avec un agent pathogène spécifique à l’étude de l’infection. Ici, les chercheurs ont utilisé la voie sous-cutanée d’introduire des bactéries résistantes aux antibiotiques qui provoque des lésions, et la taille de ces lésions a servi une lecture pour la virulence de l’agent pathogène. Plusieurs scientifiques sont intéressés à étudier la distribution et la survie des cellules souches après délivrance systémique. Dans cette étude, les chercheurs effectué queue injection dans la veine de Tags génétiquement des cellules souches neurales dans un modèle animal de la sclérose en plaques et trouve la distribution des cellules injectées à la moelle épinière et des régions du cerveau.

Dans une autre expérience, les chercheurs injectés fluorescent tag myoblastes par voie intramusculaire dans un modèle animal de la dystrophie musculaire. Par la suite, bioluminescence a été réalisée afin d’analyser l’implantation réussie des cellules souches. Enfin, les injections peuvent également être employées pour produire des modèles animaux. Ces scientifiques effectué une injection intrapéritonéale de diméthylnitrosamine - puissante toxine du foie - les rats Wistar mâles pour générer un modèle animal de la fibrose hépatique, qui était alors utilisé pour étudier le développement de la maladie du foie.

vous avez regardé juste le premier versement de JoVE administration composé discutant les injections parentérales couramment utilisées. N’oubliez pas, l’itinéraire de livraison optimale dépend de plusieurs facteurs notamment le pH, le volume et la viscosité de la solution injectée. Et chaque technique a ses avantages et inconvénients, qui doivent être examinés en fonction des besoins expérimentaux. Comme toujours, Merci pour regarder !

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