Author Produced

ゼブラフィッシュの定期的ケアとメンテナンス( * These authors contributed equally

Biology
 

Summary

このプロトコルは、ゼブラフィッシュの飼育に最適な条件を維持するために定期的なメンテナンスやケアについて概説します。ビデオでは、システムの保守、定期的な住宅、給餌、繁殖、およびゼブラフィッシュ幼生の引き上げのためのプロトコルを示しています。

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Avdesh, A., Chen, M., Martin-Iverson, M. T., Mondal, A., Ong, D., Rainey-Smith, S., Taddei, K., Lardelli, M., Groth, D. M., Verdile, G., Martins, R. N. Regular Care and Maintenance of a Zebrafish (Danio rerio) Laboratory: An Introduction. J. Vis. Exp. (69), e4196, doi:10.3791/4196 (2012).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

このプロトコルは、ゼブラフィッシュの実験室の定期的ケアおよび保守について説明します。ゼブラフィッシュは現在、遺伝学、薬理学と行動研究で人気を集めている。脊椎動物のように、人間とゼブラフィッシュシェアかなりの遺伝子配列類似性および種々のヒト疾患状態の動物モデルとして使用されている。他の一般的な脊椎動物のモデルと比較して、ゼブラフィッシュの利点は、高い繁殖力、低メンテナンスコスト、透明な胚、かつ急速な発展があります。ゼブラフィッシュの研究への関心の拍車のために、生産的なゼブラフィッシュの住宅施設を設置し、及び維持する必要性も高まっている。文学はゼブラフィッシュの実験室のメンテナンスのために利用可能ですが、簡潔なビデオプロトコルが欠けている。このビデオでは、摂食飼育およびゼブラフィッシュ幼生の飼育、定期的な住宅のためのプロトコルを示しています。このプロセスは、研究者がzebrafisの自然な行動と最適な条件を理解するのに役立ちますH畜産それゆえ、魚の飼育条件に由来する実験的な問題のトラブルシューティングを行います。このプロトコルは、ゼブラフィッシュの実験室を確立するために、また、動物モデルとしてゼブラフィッシュを使用しようとしている学生を卒業する予定の研究者にとって非常に助けになるでしょう。

Protocol

1。システムメンテナンス

  1. ゼブラフィッシュは、その連続してフィルタや健全な水環境のために必要な水質を維持するために、システムの水を曝気循環システムに保管されています。循環システムはまた、過剰な食品や魚の排泄物をフィルタリングするのに役立ちます。異なる会社は、ゼブラフィッシュシステムを提供するが、我々は我々の研究室で水生生息地、アメリカからシステムを使用しています。室温またはタンク温度は一般的に26から28.5の間に維持される℃、照明条件は、14時10分時(光:暗い)です。水生生息地からゼブラフィッシュシステム( 例えば 、ベンチトップ·システム)のコストを削減〜9,000ドル。 2つの棚でこのベンチトップシステムは、各棚の上に6個の10リットル、3リットル12、または20 1.5リットルのタンクを保持することができます。魚の複数行が( 例えば 、トランスジェニック、変異体、野生型)も同じシステムに収納することができる。
  2. フィルタのさまざまな種類のセットは、システムで使用されています。我々のシステムでは、すべてのタンクPAからの水タンクに戻して循環される前に120ミクロンのフィルターパッド、50ミクロンのキャニスターフィルター、生物ろ過、活性炭吸着フィルターとUV殺菌フィルターを通してsses。 De-chlorinated/aged水はゼブラフィッシュシステムで使用されています。水は、少なくとも48時間熟成させることにより脱塩素することができます。理想的な条件下では、水はそれを暖かく保つために水を循環させるポンプで貯水池内に保管され、脱塩素化を促進すべきである。
  3. システム水のpHは、毎日チェックして、6.8と7.5の間に維持されるべきである。必要な場合には、重炭酸ナトリウム、pHを増加させるために使用されるべきである。
  4. 水槽は定期的に清掃する必要があります。 、水槽をきれいにこのタンクへの水の流れを閉じて、後方に傾斜させることによりタンクを余分な水分を排出し、システムから慎重にタンクを削除する。汚れや藻の成長はタンクの底と側面に明らかになるであろう。
  5. クリーンタンクにバッフルを配置し、脱塩素水(別名システムワシントンで埋めるTER)。慎重に魚のネットでこのタンクに魚を移す。ふたを閉め、タンクの名札を転送します。慎重にシステムにクリーンタンクを置き、給水に切り替える。
  6. 70%エタノールで漁網、スプレーを除染するために、水ですすぎ、再度使用する前にそれを乾燥させます。汚れたタンクからバッフルを取り外して、70%エタノールで両方の部分をスプレーします。水道水で洗い流し、タンクを許可し、再使用する前に完全に乾燥させることをさえぎっている。
  7. 循環系フィルタは、それらの適切な機能を確保するため、定期的にチェックし、変更する必要があります。これらのフィルタは、すべての魚タンクに適切かつきれいな水の供給を確保するために定期的に変更する必要があります。
  8. 120ミクロンのフィルターパッドは通常、再配置または毎日交換され、新しいものと交換する前に、完全にそれを使用するように水流に向かって移動させます。
  9. キャニスターのフィルターは毎週変更する必要があります。キャニスターのフィルターを変更するには、antをねじることによって、フィルターユニットを取り外しレンチまたは手でiclockwise。水こぼれを防止したり、吸収するには、以下のプラスチックシートやタオルを置きます。必要に応じて新しいものとキャニスターのフィルターを交換して、システムにバックフィルターユニットに合わせて、慎重に手やレンチで締めます。
  10. カーボンフィルター(隔週)隔週に変更する必要があります。カーボンフィルターを変更するには、レンチで慎重にカーボンフィルターユニットを取り外します。使用される活性炭を捨てて、新しい活性炭と交換してください。カーボンホルダーを再セットして、フィルターユニットに戻してください。システムにフィルターユニットを元どおり取り付けます。システムの電源を入れ、水がフィルターに流れていることを確認してください。必要な場合は、システムにフィルターを取り付ける前に配管内の汚れをきれいにパイプを介していくつかの水をフラッシュします。
  11. 生物学的なフィルタは、半年ごとに清掃する必要があります。生物学的なフィルタは、一般に、循環系におけるキャニスターとカーボンフィルターの間に位置している。生物ろ過、レムを変更するにはシステムからのフィルタユニットをオベ。圧力解放ボタンを押して、フィルタからの圧力を解放します。レンチで緩めてフィルタを。一般的に2人は、このステップのために必要とされる。フィルターユニットの蓋を外します。水からsiporaxを分離するためのふるいにかけた容器の中にフィルタの内容を空にします。注:Siporaxは硝化と脱硝の両方を実行する能力を持って細孔バイオフィルターメディアです。
  12. siporax汚れがひどい場合は新たに交換してください。システムの水(脱塩素水)とフィルターユニットを入れ、蓋を閉じ、システムおよび給水のスイッチにフィルターユニットを返す。注:順応水槽では、siporaxは、いくつかの硝化細菌のホームになります。これらの微生物は、水槽内の窒素循環を維持するために不可欠であり、生物学的フィルタ(ダーティsiporax)のプライマリハウジングを取り外すと、n個の中に亜硝酸スパイク、続いて深刻アンモニアスパイクにつながる可能性EW生物ろ過(新しいsiporax付き)を再確立しています。窒素サイクルのこれらの中間の状態の両方の生物に対して毒性がある可能性があり、かつ適切に応答しなかった場合、ゼブラフィッシュを殺すかもしれない。したがって、それは新しいsiporaxに、これらの重要な微生物の迅速な再増殖を可能にするために他の場所でゼブラフィッシュハウジングシステム( 例えば 、水生生息地系における回収タンク内)の二次生物ろ過を行うことが重要です。
  13. UVフィルターは、システム生物学的汚染物質を(細菌など)を制御するために使用され、すべての九から十か月交換する必要があります。これは、UVフィルター殺菌線量率がランプの寿命の冒頭〜110 mJ / cm 2であり、線量率が故に、時間の経過とともに減少し、それがまだいるように見えても、世界中を交換する必要があることに留意すべきである機能。

2。給餌

  1. ゼブラフィッシュは、幼虫tの100ミクロンから乾燥食品(食品·サイズで供給することができますO 300 /成魚)やライブ食品(ブラインシュリンプ)の400ミクロン。ブラインシュリンプ( アルテミア属 )の卵は地元のペットショップから入手可能であり、後述の簡単な手順に従うことによって実験室で孵化することができます。
    1. 良好な溶解のためにマグネチックスターラー上で塩をビーカーを置くことによって、高齢者の水の中に赤い海の塩を溶かす。代わりに、塩は通気管とそれを通気することにより、水に溶解することができる。赤い海の塩が使用できない場合は即刻海塩は、孵化の溶液として使用することができます。ブラインシュリンプは、塩分濃度の広い範囲を容認することができますが、我々が30〜35 g / Lの赤海塩水に私たちのブラインシュリンプ(10.15 g)を孵化。注:ブラインシュリンプの卵は地元のペット店で容易に入手できない場合には、次にカプセル化されたブラインシュリンプもエビの孵化場に追加する前に、バッチ処理でそれらを "脱キャップ"の後に使用することができます。また、これはペットショップに頻繁に旅行を避けるかもしれない。
    2. SAとブラインシュリンプ·ハッチャーを埋めるltは、水と大さじ1.2 /リットルの濃度でシュリンプの卵を追加します。空気ポンプで激しくハッチャーを通気し、〜48時間孵化ブラインシュリンプの卵を残す。
      注:それは非濃縮ブラインシュリンプは毎時ポスト孵化栄養価を失うことに留意すべきである。したがって、24時間かけてどちらハッチに適切であるか、ブラインシュリンプから最大限の栄養価を得るために、48時間かけて豊かにすることができる。
    3. 孵化システムからの廃水は漂白剤で消毒し、後に処分される廃棄物の検疫に追加されます。
  2. ブラインシュリンプを収集するには、空気管を​​取り外して、文化は4-5分ではなく10分以上のために解決することができます。孵化したブラインシュリンプは、ハッチャーの底に集める。
    1. ハッチャーの下部にタップを使用してブラインシュリンプを収集します。未孵化ブラインシュリンプの卵で構成されています初期の流れを捨ててください。
    2. ブラインシュリンプの収集ネット(〜350ミクロンのナイロンメッシュ)を使用して、塩辛い水からブラインシュリンプを分離します。システムの水を使用して容器にネットからブラインシュリンプをすすぐ。
  3. 収集されたブラインシュリンプは、一般的にそれをむしろオレンジ色を与える容器の底に高濃度で存在している。
  4. ピペットまたはドロッパー/ squeezyボトルを使用してゼブラフィッシュにブラインシュリンプを養う。小出し餌の量は、個々のタンクの人口規模に応じて異なります。ゼブラフィッシュのために一般的に受け入れられている割合は、一日あたりの食品で体重の4%を受け取ることになっている。いくつかの魚は食べ過ぎが原因で死亡することもあるので、これは、おそらく彼らの繁殖、又は生存率に影響を与え、水の硝酸レベルを増加させることができるようにゼブラフィッシュはoverfedべきではありません。
    1. に食物を注入する際に水、空腹の魚はブラインシュリンプをキャッチするために泳ぐ。
  5. 乾燥餌は水生エコシステムの/水生生息地シンプルなSpringベースの魚の餌ディスペンサーを用いて行うことができる。代わりに、乾燥した給餌もシンプルスプーンを使用するか、またはそれを小さなスプーンのような見た目を与えるためにハサミで斜めにプラスチック製のスポイトを切断することによって行うことができます。

3。繁殖

  1. 光の発症時に繁殖を開始するゼブラフィッシュ。受精卵は、タンク内の飼育または繁殖ペアのいずれかを介して取得することができる。タンク内の繁殖がより労働効率的であり、我々の研究室で定期的な胚の収集のために実装されている間の遺伝子または変異が個々の魚から上映されるときに、繁殖ペアが好ましい。
  2. インタンク繁殖のため、タンク内のブリーダーを組み立てると光の発症後に水槽にゆっくりと落下。代わりに、タンク内の繁殖セットアップは水槽で一晩放置することができます。
  3. Lひさし約15分間タンク内のブリーダー魚がタンクからブリーダーを除去し、卵を収集する前に嵌合するようにします。
  4. ペアワイズ繁殖は通常、摂食した後に夕方に設定されています。
  5. 繁殖水槽を組み立て、高齢者、システム水でそれを埋める。
  6. 繁殖水槽の両側に一人の女性と男性の1を移す。雌は大きいため、その下腹部の男性と区別することができる。彼らは女性より色がもっとほっそりと暗くなりますので、男性も女性と区別することができる。また、男性は女性( 図1を参照)に比べて尻鰭でより黄色に着色されています。迷ったときは女性のゼブラフィッシュの産卵管を探します( 図4を参照)。
  7. まもなく光の発症後に翌朝分周器を取り外します。 20分間または胚十分な数のタンクの底部に敷設されるまでは邪魔されずに発生するように交配を許可します。
  8. 繁殖した後、彼らのタンクに魚を戻す。ストレーナーを使って卵を集める。
  9. システムの水で十分に胚を洗浄します。
  10. 胚培地でストレーナーを洗浄することによってシャーレに胚を移し、別名EM3塩(NaCl、13.7ミリメートル;のKCl、0.54ミリメートル;のMgSO 4、1.0mMの;のCaCl 2、1.3mMの;のNa 2 HPO 4、0.025ミリメートル; KH 2 PO 4、0.044ミリメートル; NaHCO 3を 、4.2 mm)です。
  11. 胚を顕微鏡下で観察することができます。受精卵は、その後、針とピペット( 図3を参照)を使用して未受精卵から分離される。

4。幼虫の引き上げ

  1. 幼虫が孵化するまで受精卵は72時間インキュベーター(〜28.5℃)に保管されています。
  2. 今すぐ幼虫は絨毛膜の外であり、彼らはメイン水槽に転送することができます自由に泳ぐ。幼虫は5日後に受精(DPF)から供給する必要があり、胚媒体に保管されている(に記載された組成物パート3、10)またはシステム水。幼虫はそこに毎日のように変更された水の約50%以上で丸皿に維持することができる。水換えは、死んでいるか病気の幼虫や他の破片を除去することを含むべきである。
  3. 小型バッフル(約300から400ミクロン)を含むタンクにそっと幼虫を転送します。死者と病気の幼虫は除去されるべきであり、水を数ミリリットルを毎日徐々に添加しなければならない。
  4. 14日後、幼虫タンクは、システムに棚上げにすることができ、循環水の小さな流れ(毎秒1〜2滴)を供給。幼虫が成長するにつれ、水の流れを増大させることができる。バッフルの異なるサイズは成魚に使用されるべき幼虫( 例えばバッフルサイズは300から400、500、700から750、そして1000ミクロン)と、通常のプラスチック·バッフルの大きさに応じて使用することができます。
  5. 胚は性的に成熟した大人へと成長することは通常3ヶ月かかります。

Representative Results

ゼブラフィッシュハウジングおよびメンテナンスは、伝統的なげっ歯類のモ​​デルよりも容易かつ安価である。数千ゼブラフィッシュは、小さな実験室に収容することができる。このプロトコルの結果として、研究者は、ゼブラフィッシュに健康的な条件を提供するゼブラフィッシュ施設を管理できるようになります。また、次の図は、識別受精卵、成人ゼブラフィッシュ、そして彼らの食糧を支援します。男性のゼブラフィッシュ( 図1A)とメスゼブラフィッシュ( 図1B及び1C)のイラストは、研究者は男性と目的を繁殖のためにメスのゼブラフィッシュを容易に区別できるように示されている図2の顕微鏡ビュー描い; 12X( でブラインシュリンプ2A)、90X(図2B)で単一ブラインシュリンプ、および90X( 図2C)における未受精卵ブラインシュリンプの卵。これは小道具のための未受精卵と受精卵ブラインシュリンプの違いを理解するのに役立つだろうER送り目的。受精卵と未受精卵を図3に示します。 図3Aは、受精卵と未受精卵の胚の顕微鏡図を示す。未受精胚は、一般的に不透明であり、および/ ​​または絨毛膜内部破裂したセル(複数可)(黒矢印)で受精した胚をしながら無傷(ゼブラフィッシュ胚の別の段階の詳細な読書は1を参照)は、次の細胞分裂状態に成長して表示されます。受精卵と未受精卵は、それぞれ図3Bおよび3Cに示されている。 図4の高倍率のビューには、研究者は、男性と女性のゼブラフィッシュを区別しやすくするために女性のゼブラフィッシュの産卵管を示しています。

ゼブラフィッシュの実験室で発生する可能性のあるいくつかの重要な問題は、個々の/すべての住宅制度におけるタンク、悪い水質、循環系の配管や貯水池内の漏れへの水供給の閉塞を含む。加えて、繁殖から胚を得ることに問題は別の問題になる可能性があります。これらの問題のトラブルシューティングについては後述する。

図1
図1:ゼブラフィッシュの雄(A)と雌のゼブラフィッシュ(A、B、C)のイラスト。

図2
図2 12X()、90X(B)の単一ブラインシュリンプ、および90X(C)での未受精卵ブラインシュリンプの卵でブラインシュリンプの顕微鏡写真。

図3
図3は2つだけ卵が無精卵アール受精卵と未受精卵の顕微鏡写真(16X)は、未受精卵は、黒い矢印()で示しています。高倍率受精卵のビュー(90X)(B)と未受精卵(C)である。

図4
図4:女性のゼブラフィッシュの産卵管(黒い矢印で示されている)イラスト。

パラメーター 最適範囲
アルカリ度 50から150 mg / LでのCaCO 3
pHは 6.8から7.5(6.0から8.5までは許容)
温度 26から28.5°C
硬さ 50から100 mg / LでのCaCO 3
非イオン化アンモニア <0.02 mg / Lで
硝酸イオン(NO 3 - ) <50 mg / Lで
亜硝酸塩(NO 2で- ) <0.1 ​​mg / Lで
溶存酸素 > 6.0 mg / Lで
塩分濃度 0.5〜1グラム/リットル
導電率 300 -1500μS

表2。水質パラメータ。水質パラメータ。ゼブラフィッシュ水槽11内の環境パラメータの最適範囲。

Discussion

ゼブラフィッシュは、インド北部のガンジス川に由来し、その成人とスペンスによって審査幼虫2、両方の研究で普及しつつある。3。ゼブラフィッシュは、高い繁殖力、メンテナンスのしやすさ、胚の光学クリアランス、急速な胚発生、低メンテナンスコストなどの他の動物モデルに比べていくつかの利点を有する。彼らは遺伝子操作6に従順で、4,5ハイスループット薬剤スクリーニングに適しています。彼らの受精は、発生生物学者による彼らの使用のために有利である外部にある。これらの有利な特性のために、ゼブラフィッシュは、遺伝学7、薬理8、行動研究9,10で人気を集めている。胚を取得するためにゼブラフィッシュ施設及びゼブラフィッシュの飼育を維持するために多くの課題があります。ここで、我々は、これらの課題とoに対処する私たちの経験と推奨事項について説明します繁殖と幼生の飼育、餌、システムメンテナンスのためのプロトコルをutline。

システム保守

健康な状態でのゼブラフィッシュを維持するためには、適切に機能して水槽システム内の清潔な環境でそれらを提供することが重要です。この重要な部分は、すべてのタンクは、適切な水の流れときれいな水を受けるように、定期的にシステムのフィルタを変更しています。それはブロックされ、システムのパイプに起因する各タンクに循環水供給の失敗を回避することが不可欠である。閉塞が発生した場合、パイプがより高く、通常の水の圧力と流量を用いて洗浄することができます。理想的には、システム上の水の約10%が良好な水質を維持するために毎日交換する必要があります。キャニスターやカーボンフィルターを変化させながら、あるいは、水を交換することができます。これは、これらのフィルタを接続する配管に堆積している汚れが除去されることを保証します。水の水質を定期的にチェックする必要があります。このようなアルカリ度などのパラメータは、pHは、temperatURE、硬度、アンモニア、溶存酸素、塩分濃度、導電率は、システムの水(詳細については表2を参照)の品質を表す重要な要素として考慮されるべきである。せめて硝酸塩、pH、および温度は、ハウジングゼブラフィッシュのための良好な水質を確保するために、定期的に監視する必要があります。理想的な硝酸塩(NO 3 - )濃度は<50 mg / Lで11アール、高い場合は、これらのレベルは、新鮮なシステム水と循環系中の水を交換することによって減らすことができます。時折、フィルタはうまく適合し、それがフィルタ変更時に漏れがないか確認することをお勧めしますので、漏れはありません。メイン貯水池からの水の流れは水ポンプを変更したり、フィルタを変更した後、いずれかのブロックされた場合、水流はパイプに生成されている任意の真空を解放するために数秒間フィルターを緩めたり取り外したりするのいずれかの方法で復元することができます。フィルタを変更するのに必要な時間は、そのような生物学的な総荷重Oなどの様々な要因によって異なる可能性がありますnシステム、他のフィルタの清潔さ、汚れがパイプ内に堆積。彼らは汚れて見える場合、またはすべてのタンクが正しい水の供給を受けていない場合は、したがって、フィルタはすぐに変更してください。また、漁網を70%エタノールで洗浄し、それを除染するために水で洗浄し、再利用される前に乾燥させることをお勧めします。乾燥は、特に魚に有毒であるエタノールの蒸発を確実にします。

ゼブラフィッシュシステムのほとんどは脱塩素水道水を使用していますが、一部のシステムでは、脱イオン水を使用しています。これが魚は体塩を維持するために必要なエネルギーを減少させるので、300〜1,500μSとの間のシステム水の導電率を維持することが重要である。塩が最適な導電率のレベルを維持するために追加されていない限り、したがって、ゼブラフィッシュを脱イオン水に保つことができない。カーボンフィルターは、銅が削除されないため、水道水を使用する場合は、システムの水の可能性が高い銅濃度の危険があります。従って、uSERSは、銅の濃度を確認し、可能であれば銅の配管を避けるべきである。

給餌

いくつかの魚は食べ過ぎが原因で死亡することもあるので、これは、おそらく彼らの繁殖11、または生存率に影響を与え、水の硝酸レベルを増加させることができるようにゼブラフィッシュはoverfedべきではありません。我々は魚のタンクが10分以内に完了することができますよりもいずれか授乳中なしより多くの食糧を提供することをお勧めします。それが過剰な塩分濃度は死を引き起こすとしてゼブラフィッシュにそれらを供給する前にブラインシュリンプから塩を除去することは非常に重要です。もっとゼブラフィッシュの卵が必要な場合には、魚は一日三回を供給することができます。毎日のブリーダー水槽を掃除しても産卵のレベルを向上させます。

水生生息地·システム上で供給する場合、我々は通常、魚は10分間の食品を食べることを許可するようにウォーターポンプと空気ポンプをオフにします。これは、フィルタに洗浄される食品の量を減少させる。ただし、ユーザーはREMに注意する必要がありますその後、再び、これらのポンプをオンにする燃えさし。

繁殖

ゼブラフィッシュは、〜3、生後18カ月の間の最適な飼育条件で通常です。ペアワイズ育種は2日間連続で11のために実行すべきではありません。タンクが2日連続で飼育されている魚の同じ組の可能性を減らすことができ、多くの魚を保持することができますしかし、タンク内の繁殖は、毎日行うことができます。繁殖は卵が必要とされない場合でも、一定の間隔を置いて行われるべきである。このプロセスでは、魚の繁殖サイクルが維持されるようになります。それは繁殖セットアップで男性よりも女性がいることをお勧めします。男性ゼブラフィッシュはさらに、この勧告をサポートして毎日12上の女性パートナーを変更してください。さらに、我々の研究室の中で、我々は最初にセットアップ問題を解決する助け繁殖に男性よりも女性を使用して、しかし、繁殖の問題を経験した。また、高タンパクコンテと供給NTダイエットやブラインシュリンプは、二から三倍の日、別のタンク(別の親)からの混合魚、繁殖の温度は27〜28℃の間のセットアップ、保守、および使用して、ブロックされた卵巣管で女性の腹を絞る穏やかなマッサージさらに改良産卵。私たちは、兄弟間での繁殖を避けるために、魚のライン/起源の記録を保管することをお勧め。これは、さらに胚の生産性が向上します。各タンクから魚によって築かれた胚の数の記録を保存することも推奨します。これは最高の繁殖水槽を追跡し、産卵しない魚で繁殖を改善するための措置をとることを支援します。

幼虫の引き上げ

幼虫の餌は5 DPF(日後に受精)から開始すべきである。若い幼虫は〜100サイズはミクロン( 例えば 、ZM100)、またはそのようなゾウリムシやワムシ(成長を刺激する)など、ライブ食品の乾燥食品を供給することができます。食品の大きさを徐々に増加させることができる200ミクロン( 例えば ZM200)または400分の300ミクロン( 例えば ZM300)へ。成魚の人口は水のリットル当たり6から7の魚の周りでなければなりません。このような行為は、タンクへのBOD(生物学的酸素要求量)のより良いメンテナンスのために推奨されます。

Disclosures

特別な利害関係は宣言されません。

Acknowledgments

著者らは、実験室の消耗品の管理に彼女の援助のためにタミーEsmailiに感謝したいと思います。 AAはアルツハイマー病研究とケア、医学、エディス·コーワン大学の学校のための優秀センターから博士課程の奨学金の受賞者です。 MCは、ロータリークラブ、パースから博士の資金支援を受けています。 AM、GV、KTとRNMはマッカスカーアルツハイマー病研究財団によって資金を供給されています。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Zebrafish circulating system Aquatic Habitats, USA AHAB stand-alone, bench-top systems
Sodium Bicarbonate Sigma Aldrich S6297
Fish food dispenser/Dry food feeder Aquatic Habitats, USA AH19
Microscope Olympus SZX12
Dry Food ZM Fish food, UK ZM100, ZM200, ZM300
Brine shrimp eggs Salt Creek, Inc., USA Premium Grade
In-tank breeders Aquatic Habitats, USA ITSTS-A
Activated carbon Penn-Plax Pro-crab, USA PBC3MF
Breeding tanks Aquatic Habitats, USA SBTANK (1L)
Breeder Tank-2 (2L)
Red sea salt Red sea salt, USA Local pet store/
www.redseafish.com
Filters (Canister, filter pads, and UV) Aquatic Habitats, USA aquatichabitats.com
Siporax Media Aquatic Habitats, USA BF 820
Brine shrimp net Aquatic Habitats, USA BSN 1
Brine shrimp hatcher Aquatic Habitats, USA BS252
Baffles Aquatic Habitats, USA aquatichabitats.com
Table 1. Table of specific reagents and equipment used in this protocol.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev. Dyn. 203, 253-310 (1995).
  2. Avdesh, A., et al. Evaluation of color preference in zebrafish for learning and memory. J. Alzheimers Dis. 28, 459-469 (2012).
  3. Spence, R., Gerlach, G., Lawrence, C., Smith, C. The behaviour and ecology of the zebrafish, Danio rerio. Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 83, 13-34 (2008).
  4. Best, J. D., et al. Non-associative learning in larval zebrafish. Neuropsychopharmacology. 33, 1206-1215 (2008).
  5. Wolman, M. A., Jain, R. A., Liss, L., Granato, M. Chemical modulation of memory formation in larval zebrafish. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 15468-15473 (2011).
  6. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of Zebrafish Embryos to Analyze Gene Function. J. Vis. Exp. (25), e1115 (2009).
  7. Gerlai, R. Zebra fish: an uncharted behavior genetic model. Behav. Genet. 33, 461-468 (2003).
  8. Eddins, D., Petro, A., Williams, P., Cerutti, D. T., Levin, E. D. Nicotine effects on learning in zebrafish: the role of dopaminergic systems. Psychopharmacology. (Berl). 202, 103-109 (2009).
  9. Colwill, R. M., Raymond, M. P., Ferreira, L., Escudero, H. Visual discrimination learning in zebrafish (Danio rerio. Behav. Processes. 70, 19-31 (2005).
  10. Blaser, R. E., Chadwick, L., McGinnis, G. C. Behavioral measures of anxiety in zebrafish (Danio rerio). Behav. Brain Res. 208, 56-62 (2010).
  11. Westerfield, M. A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). THE ZEBRAFISH BOOK. 5th, University of Oregon Press. Eugene. (2007).
  12. Delaney, M., et al. Social interaction and distribution of female zebrafish (Danio rerio) in a large aquarium. Biol. Bull. 203, 240-241 (2002).

Comments

7 Comments

  1. zebra fish laboratory play an important role in the world.Zebra fish laboratory help us from the various method like cleaning water etc.It is very nice and informative sharing.For more detail.visit water tank Sydney

    Reply
    Posted by: micheal c.
    March 14, 2013 - 1:55 AM
  2. I would like further information about your feeding protocols for larval rearing. I am currently using rotifers then brine shrimp but know there are lots of ways to do it. Thanks.

    Reply
    Posted by: Edward F.
    April 24, 2013 - 12:33 PM
  3. Dear Edward,
    Please accept my apologies for the late reply. Yes, you are right, there are several other ways to feed zebrafish larvae. You can feed them with dry food of

    Reply
    Posted by: Avdesh A.
    May 28, 2013 - 7:02 AM
  4. Aquatic Habitats seems to have discontinued production of the manual fish feeder, AH19. Has anyone found an alternative vendor for a product that is similar?

    Reply
    Posted by: Anne W.
    October 19, 2015 - 1:21 PM
  5. With normal tanks and aeration systems (without sophisticated filters, flow through water supply and so..), how to main maintain zebra fish. Any suggestions for a small scale set up? how to improve the egg quality? (some articles say that it is mandatory, to only breed fish once in a week. Even after following that, eggs tend to die after budding stage)

    Reply
    Posted by: Niranjana Kamala Priya S.
    February 12, 2016 - 6:13 AM
  6. Dear Niranjana, Please accept my apologies for the late reply. Are you still facing the same problem of eggs being dying after budding stage? If yes, can you please describe how they appears before they die? For example, is there any fungus growth in the petridish. How many eggs do you keep in a petridish?
    Thanks
    Kind Regards
    Avdesh

    Reply
    Posted by: Avdesh A.
    January 31, 2017 - 10:30 AM
  7. we regularly wash eggs, and maintain it in E3 medium (to prevent fungal contamination), though 80% of them die before hatching. Remaining 20 % survives for a month (till the yolk sac disappears).But, only 2 or 3 survives after that.

    Reply
    Posted by: Niranjana Kamala Priya S.
    February 2, 2017 - 12:49 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Usage Statistics