التصوير كله والحيوان وتدفق Cytometric تقنيات CD8 + T الردود خلية التحليل من Antigen محددة بعد الجسيمات النانوية التطعيم

Immunology and Infection

Your institution must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Ochyl, L. J., Moon, J. J. Whole-animal Imaging and Flow Cytometric Techniques for Analysis of Antigen-specific CD8+ T Cell Responses after Nanoparticle Vaccination. J. Vis. Exp. (98), e52771, doi:10.3791/52771 (2015).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

تطوير لقاح التقليدية وقد استخدمت أساسا للنهج العملي من التجربة والخطأ. ومع ذلك، مع التطورات الأخيرة في مجموعة واسعة من المواد الحيوية واكتشاف المحددات الجزيئية لتنشيط جهاز المناعة، أصبح من الممكن الآن لتصميم بعقلانية تركيبات اللقاح مع العظة الفيزيائية الحيوية والكيمياء الحيوية المستمدة من مسببات الأمراض 1،2. على وجه الخصوص، وقد تم فحص مختلف منصات توصيل الدواء الجسيمية الناقلين لقاح لأنها يمكن أن يشترك محملة مستضدات الوحيدات وكلاء مناعة وحماية مكونات لقاح من التدهور، وتعزيز تعاونهم التسليم لمستضد الخلايا تقديم (ناقلات الجنود المدرعة) المقيمين في الليمفاوية العقد (LNS)، وبالتالي تحقيق أقصى قدر من التحفيز المناعي وتفعيل 3-5. في هذا التقرير، وصفنا تركيب نظام جسيمات متناهية الصغر "محاكية الممرض"، ووصف-interbilayer crosslinked الحويصلات عديد الصفاحات (ICMVs)، والتي تم في السابق أثبتت بمثابة المنهاج لقاح فعالم للالاستنباط من قوة الخلايا اللمفاوية التائية السامة (CTL) والاستجابات المناعية الخلطية في كل النظامية والمخاطية المقصورات الأنسجة 6-9. على وجه الخصوص، والتطعيم مع ICMVs حققت عززت بشكل كبير من مستويات مفتش مصل ضد مستضد الملاريا، مقارنة مع التطعيم مع المواد المساعدة التقليدية (على سبيل المثال، الشب وMontanide) 7 وأيضا أثارت ردود CTL قوية ضد الخلايا السرطانية ونماذج التحدي الفيروسية في الفئران 9. هنا، وذلك باستخدام ICMVs كنظام جسيمات متناهية الصغر لقاح النموذج، وصفنا طرق لتوصيف من لقاح النانو الصيغ، بما في ذلك حجم الجسيمات والقياسات زيتا المحتملة وتتبع الاتجار الجسيمات إلى LNS استنزاف (dLNs) باستخدام التصوير متحد البؤر الأنسجة cryosectioned 7. بالإضافة إلى ذلك، فإننا نقدم وسيلة تستند التصوير كله والحيوان تحليل توسيع الردود CTL في الفئران بعد نقل بالتبني مستضد محددة CD8 + T الخلايا، معربا عن luciferase المراسل 9،10. وأخيرا، فإننا ديالكاتب تلطيخ tetramer الخلايا وحيدة النواة الدموية المحيطية (PBMCs) لتقدير الطولي للاستجابات الخلايا T المحلية في تحصين الفئران مع النانوية 6،9.

ICMVs هي صياغة جسيمات متناهية الصغر القائم على الدهون توليفها من قبل الانصهار رقابة من الجسيمات الشحمية بسيطة في الهياكل عديد الصفاحات، والتي يتم بعد ذلك ثابتة كيميائيا من قبل جماعات رئيس فوسفورية-functionalized maleimide عبر ربط داخل طبقات الدهون مع ثنائي الثيول crosslinkers 6. مرة واحدة وقد تم تجميع ICMVs، وهو جزء صغير من الجسيمات النانوية يمكن أن تستخدم لتحديد حجم الجسيمات وزيتا المحتملة (أي تهمة سطح جزيئات) مع (DLS) نظام تشتت الضوء الحيوي ومحلل المحتملة زيتا. DLS يقيس التغيرات في تشتت الضوء في تعليق الجسيمات، مما يتيح تحديد معامل الانتشار وحجم الهيدروديناميكية الجسيمات 11. تحقيق ثابت حجم الجسيمات من دفعة لدفعة التوليف أمر بالغ الأهميةمنذ حجم الجسيمات هي واحدة من العوامل الرئيسية التي تؤثر تصريف الليمفاوي من جزيئات اللقاح لdLNs وامتصاص الخلوية لاحق من ناقلات الجنود المدرعة 12،13. بالإضافة إلى ذلك، يمكن الحصول على إمكانات زيتا من خلال قياس سرعة الجسيمات عند تطبيق تيار كهربائي، والذي يسمح بتحديد التنقل الكهربي من الجسيمات والجسيمات سطح تهمة 11. ضمان القيم المحتملة زيتا ثابت من الجزيئات المهم منذ تهمة سطح جزيئات يحدد الاستقرار الغروية، التي لديها تأثير مباشر على تشتت الجسيمات أثناء التخزين وبعد المجراة الإدارة 14،15. من أجل تتبع توطين الجسيمات لdLNs، ICMVs يمكن المسمى مع fluorophores المطلوب بما في ذلك الأصباغ محبة للدهون ومولدات المضادات الموسومة تساهميا. بعد التطعيم، والفئران يمكن أن يتم التخلص عند نقاط زمنية مختلفة، dLNs مقطوعة، cryosectioned، وتحليلها مع المجهر متحد البؤر. هذا الأسلوب يسمح التصور من دري اللمفاوينينغ كل من ناقلات اللقاح جسيمات متناهية الصغر والمستضد إلى dLNs. بالإضافة إلى ذلك يمكن أن تكون ملطخة أقسام الأنسجة مع fluorescently المسمى الأجسام المضادة واستخدامها للحصول على مزيد من المعلومات، مثل أنواع من الخلايا المرتبطة مستضد وتشكيل مراكز جرثومي كما بينا سابقا 7.

مرة واحدة هو الأمثل لتجميع الجسيمات وأكد الاتجار إلى dLNs، فمن المهم للتحقق من صحة الاستنباط من التوسع في الجسم الحي CTL. من أجل تحليل الاستنباط من CD8 + T الخلايا مستضد معين ردا على التطعيم جسيمات متناهية الصغر، ونحن قد تستخدم مستضد نموذج، ألبومين البيض (OVA)، مع OVA 257-264 الببتيد (SIINFEKL) سائد مناعيا CD8 + T الخلايا حاتمة، والذي يسمح التحاليل المناعية مفصلة من استجابات الخلايا T مستضد معين الاولي 16،17 تطوير لقاح. على وجه الخصوص، لاستجواب ديناميات التوسع والهجرة من CD8 + T الخلايا مستضد معين، ونحن قد ولدتالمزدوج المعدلة وراثيا نموذج الفأر من خلال عبور يراعة luciferase المراسل، معربا عن الفئران المعدلة وراثيا (لوك) مع OT-I الفئران المعدلة وراثيا التي تمتلك خلايا CD8 + T مع T-مستقبلات الخلايا (TCR) محدد لSIINFEKL (بالتعاون مع H-2K ب). من هذه الفئران OT-I / لوك، معربا عن luciferase المراسل، خلايا OT-I CD8 + T يمكن أن تكون معزولة وعلى استعداد لنقل بالتبني في ساذجة C57BL / 6 الفئران. مرة واحدة المصنف، والتحصين الناجح مع النانوية التي تحتوي على OVA يؤدي إلى توسيع الخلايا T نقل، والتي يمكن تتبعها من خلال رصد إشارة تلألؤ بيولوجي مع كامل 9،10 نظام التصوير الحيوانية. وقد استخدمت هذه التقنية التصوير كامل الجسم غير الغازية مع غيرها من المضادات الفيروسية أو ورم في الماضي 18-20، العمليات التي ينطوي عليها توسيع الخلايا التائية في الأنسجة اللمفاوية وتوزيعها على الأنسجة الطرفية بطريقة طولية يكشف.

مكملة لتحليل adoptively CD8 + T الخلايا مستضد معين نقلها، endogenoاستجابات الخلايا لنا T وظيفة يمكن أن يتم فحص التطعيم مع مجمع الببتيد رئيسي التوافق النسيجي (MHC) tetramer فحص 21، الذي مجمع tetramer الببتيد MHC، التي تتألف من أربعة الموسومة fluorophore MHC من الدرجة I جزيئات محملة الحواتم الببتيد، يعمل لربط TCR والتسمية CD8 + T الخلايا بطريقة مستضد معين. وtetramer مقايسة الببتيد MHC لا يمكن أن يؤديها إما في الدراسات التشريح النهائية لتحديد CD8 + T الخلايا مستضد معين في اللمفاوية والأنسجة الطرفية أو في الدراسات الطولية مع الخلايا وحيدة النواة الدموية المحيطية (PBMCs) تم الحصول عليها من توجه الدم التسلسلي. بعد تلطيخ الخلايا الليمفاوية مع الببتيد MHC tetramer، تحليل التدفق الخلوي يتم تنفيذ للتحليلات مفصلة عن النمط الظاهري من CTLs أو الكمي من وتيرتها بين خلايا CD8 + T.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

تمت الموافقة على جميع التجارب الموصوفة في هذا البروتوكول من قبل لجنة الجامعة على استخدام ورعاية الحيوانات (UCUCA) في جامعة ميشيغان وتنفيذ وفقا للسياسات والمبادئ التوجيهية الموضوعة.

1. تحضير وتوصيف ICMVs شركة محملة بروتين مستضد ويؤجل الجزيئات

  1. خلط نسبة 1: 1 المولي من 1،2-dioleoyl- SN -glycero-3-phosphocholine (DOPC) و1،2-dioleoyl- SN -glycero-3-phosphoethanolamine- N - [4- -maleimidophenyl) butyramide] (MPB) في الكلوروفورم، والحفاظ على المبلغ الإجمالي للدهون في 1.26 ميكرومول لكل دفعة (أي 500 ميكروغرام من DOPC و 630 ميكروغرام من MPB) في قنينة زجاجية 20 مل (القطر = 28 ملم والارتفاع = 61 مم).
  2. إضافة المخدرات محبة للدهون، مثل monophosphoryl الدهون A (MPLA) أو الأصباغ محبة للدهون (على سبيل المثال، لم)، إلى حل الدهون في التركيز المطلوب. تماما إزالة المذيبات العضوية من خلال تطهير مع nitroge الجاف اضافيةن الغاز ووضع العينات تحت فراغ O / N.
  3. هيدرات الفيلم الدهون عن طريق إضافة 200 ميكرولتر من 10 ملي مكرر تريس البروبان (BTP، ودرجة الحموضة 7.0) تحتوي على عقاقير للذوبان في الماء (على سبيل المثال، مستضدات البروتين). دوامة لمدة 10 ثانية كل 10 دقيقة لمدة 1 ساعة على RT.
  4. نقل المحتويات من زجاج القارورة في أنبوب microcentrifuge 1.5 مل، وعينات من مكان في حمام الماء المثلج، ويصوتن بشكل مستمر لمدة 5 دقائق باستخدام كثافة 40٪ وضع على 125 W / 20 كيلو هرتز التحقيق طرف sonicator.
  5. إضافة 4 ميكرولتر من 150 ملي dithiothreitol (DTT) على كل دفعة (العمل تركيز 2.4 ملم)، الدوامة، وأجهزة الطرد المركزي لفترة وجيزة باستخدام microcentrifuge لالطاولة.
  6. إضافة 40 ميكرولتر من 200 ملي CaCl 2 وتخلط مع ماصة (العمل تركيز 33 ملم). احتضان العينات عند 37 درجة مئوية لمدة 1 ساعة للسماح لليشابك من MPB التي تحتوي على طبقات الدهون مع DTT.
  7. عينات الطرد المركزي في 20000 x ج لمدة 15 دقيقة، وإزالة طاف، و resuspend في 200 ميكرولتر من ddiH 2 O.
  8. كرر الخطوة 1.7 وأجهزة الطرد المركزي مرة أخرى بعد الثاني ddiH 2 O تغسل لإزالة CaCl غير المتفاعل DTT، والمواد البضائع unencapsulated من طاف.
  9. إعداد 10 ملغ / مل من 2 كيلو دالتون البولي ايثيلين جلايكول-ثيول (PEG-SH) في ddiH 2 O. resuspend كل عينة ICMV في 100 ميكرولتر من حل PEG-SH واحتضان عند 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
  10. إجراء عمليتين ddiH 2 O يغسل (الخطوة 1.7) و resuspend بيليه ICMV النهائي في برنامج تلفزيوني وتخزينها في 4 ° C. قبل الاستخدام، وخلط تعليق ICMV، أو جسيمات قد تترسب في القاع بعد التخزين لفترات طويلة.
  11. لتوصيف جزيئات، إزالة قسامة صغيرة (~ 10٪) من ICMVs من كل دفعة وتمييع بشكل فردي في إجمالي حجم 1 مل من ddiH 2 O. ضع عينة واحدة في Zetasizer حجم الخلية وقياس الجسيمات، مؤشر التشتت المتعدد، وإمكانات زيتا من العينات باستخدام DLS ونظام قياس المحتملة زيتا (وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة).

2. فحص العقدة الليمفاوية تجفيف ICMVs الإسفار الموسومة مع متحد البؤر المجهر

  1. إعداد ICMVs محملة-fluorophore الموسومة مستضد وصبغة الفلورسنت محبة للدهون
    1. إعداد الموسومة fluorophore البروتين، مثل ردة فعل ألبومين البيض مع فلور اليكسا 555 succinimidyl استر، وفقا لتعليمات الشركة الصانعة.
    2. لإعداد ICMVs الموسومة ب fluorophore في وعاء الدهون، إضافة للدهون صبغة الفلورسنت، (على سبيل المثال، 1،1'-Dioctadecyl-3،3،3 "، 3'-Tetramethylindodicarbocyanine، (لم)) أثناء إعداد الفيلم الدهون (الخطوة 1.2) في 0.05٪ كمية الدهون المولي. لدهن ترطيب فيلم (الخطوة 1.3)، واستخدام العازلة التي تحتوي على fluorophore الموسومة مستضد، والتوليف ICMV الكامل على النحو المبين في الخطوات 1،4-1،11.
  2. الادارة تحت الجلد من الجسيمات النانوية في قاعدة الذيل
    1. تخدير الماوس باستخدام المرذاذ تدفق تسيطر مجهزة غرفة الاستقراء شtilizing 3٪ الأيزوفلورين و 1.5 لتر / دقيقة من تدفق الأكسجين وفقا لIACUC المعتمدة بروتوكول الحيوان. وبمجرد أن الفأر هو فاقد الوعي، قم بالخطوات التالية بسرعة قبل التخدير الخفوت للسماح بالوصول الأمثل لموقع الحقن وقدر من الراحة للحيوان. بدلا من ذلك، استخدم مخروط الأنف السليم المناسب للحفاظ على التخدير. إذا تم تخدير الفئران لفترة أطول من 5 دقائق، وتطبيق التشحيم العين ضروري لتقليل تهيج بعد العملية.
    2. رش قاعدة الذيل مع 70٪ من الإيثانول لتطهير وترطيب الجزء الفراء الشعر الرطب لفضح قطعة صغيرة من الجلد واضحة، والتي يمكن استخدامها لتصور إبرة تحت الجلد.
    3. إعداد الجسيمات حقن تعليق يحتوي على المبلغ المطلوب من مستضد ومساعد لكل 100 ميكرولتر من جرعة التطعيم في برنامج تلفزيوني (على سبيل المثال، تم استخدام 10 ميكروغرام OVA و 0.3 ميكروغرام MPLA لكل 100 ميكرولتر من جرعة الحقن في الماضي 6،9).
    4. لفت الباحث الجسيمات تعليقالزراعة العضوية المحاقن مع إبرة G 27-29 وادخال الإبرة في قاعدة الذيل (~ 5 ملم من منبت الشعر) مع شطبة تواجه صعودا وحقن 50 ميكرولتر من تعليق الجسيمات 22.
    5. انتظر بضع ثوان للضغط لتحقيق التعادل لمنع الإفراط في عودة تدفق وسحب الإبرة. تكرار الحقن على الجانب الآخر من قاعدة الذيل لاستهداف كل من استنزاف LNS الأربية.
  3. إعداد الليمفاوية cryosections عقدة والفحص المجهري مع متحد البؤر.
    1. الموت ببطء الفأر مع CO 2 الاختناق، تليها استرواح الصدر التي يسببها وفقا لوافق على IACUC بروتوكول الحيوان. استخراج LNS الأربية وفقا لبروتوكول موضح في بيدويا 23 وتغسل الدم عن طريق وضع الأنسجة في 1 مل من 4 ° C PBS.
    2. استيعاب PBS من الأنسجة مع الأنسجة ووضع الأنسجة في cryomolds الأنسجة (10 × 10 × 5 مم 3) معبأة سلفا إلى الأعلى مع أكتوبر تجميد المتوسطة 24. المفاجئة تجميد تيسرفع دعوى قضائية ضد كتلة في النيتروجين السائل لمدة 30 ثانية. بدلا من ذلك، وضع كتلة الأنسجة على الجليد الجاف لمدة 30 دقيقة. تخزين الأنسجة المجمدة في الفريزر -80 درجة مئوية.
    3. قطع أقسام الأنسجة 5-10 ميكرون سميكة في ناظم البرد وضعت في -20 ° C 24.
    4. إذا لزم الأمر، نفذ الوسم المناعي، وفحص الأنسجة مع المجهر متحد البؤر كما هو موضح سابقا 24.

3. رصد توسيع مستضد معين، luciferase المراسل في التعبير عن CD8 + T الخلايا بعد الجسيمات النانوية التطعيم مع الجامعة التصوير الحيوانية

  1. عزل OVA 257-264 -specific، CD8 + T الخلايا، معربا عن luciferase المراسل من OT-I / لوك الفئران المعدلة وراثيا
    1. الموت ببطء الماوس المعدلة وراثيا OT-I / لوك مع CO 2 الخنق وإحداث استرواح الصدر وفقا لIACUC الموافقة على بروتوكول الحيوان. حصاد الطحال بطريقة معقمة عن طريق الوصول إلى التجويف البريتوني وفصل أنسجة من البنكرياس 23 بعناية، ومكان في 5 مل من 4 ° C PBS + 2٪ FBS لنقلها إلى غطاء نسيج الثقافة.
    2. وضع الطحال على 70 ميكرومتر النايلون مصفاة أكثر من 50 مل المخروطية أنبوب الطرد المركزي (تصل إلى 3 الطحال في كل مرة). باستخدام المكبس من حقنة 3 مل، طحن الخلايا من خلال مصفاة.
    3. غسل الغطاس ومصفاة مع PBS + 2٪ FBS وتجاهل. جلب الحجم الإجمالي إلى 10 مل / الطحال في أنبوب 50 مل، أخذ عينة صغيرة من تعليق خلية العد مع عدادة الكريات، وأجهزة الطرد المركزي لمدة 10 دقيقة في 300 ز س.
    4. باستخدام المغناطيسية مجموعة مختارة السلبية المتاحة تجاريا، عزل السكان خلية CD8 + T باتباع إرشادات الشركة المصنعة.
    5. بعد غسل الخلايا مع PBS، عد عدد الخلايا CD8 + T معزولة. لتقييم نقاء من الخلايا CD8 + T معزولة، واحتضان ~ 20،000-30،000 الخلايا في 20 ميكرولتر من الماوس CD16 / 32 الأضداد (0.025 ملغ / مل) لمدة 10 دقيقة، ثم إضافة 20 ميكرولتر من αCD8-APC الأجسام المضادة (0.005 ملغ / مل) واحتضان لمدة 30 دقيقة. المؤسسة العامةrform جميع حضانات في 4 درجات مئوية في برنامج تلفزيوني + 1٪ ث / ت BSA. أداء تدفق تحليل cytometric 25.
  2. نقل بالتبني من خلايا CD8 + T معزولة والتصور التطعيم آخر توسعها
    1. أداء نقل بالتبني من خلايا معزولة OT-I / لوك CD8 + T إلى السذاجة C57BL / 6 الفئران عن طريق إدارة 10/01 × 10 5 الخلايا في حجم 200 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني عبر الذيل الوريد الوريد حقن 22 (يوم -1). وبالنظر إلى أن الفراء والجلد الأسود بقع في C57BL / 6 الفئران قد تتداخل مع إشارة للإضاءة الحيوية، البيضاء حلق C57BL / 6 الفئران هي مثالية لهذه الدراسات.
    2. بعد يوم واحد (يوم 0)، إدارة اللقاح كما هو موضح سابقا (القسم 2.2).
    3. إدارة 150 ملغ من وسيفيرين لكل كيلوغرام من وزن جسم الفأر البريتونى في حجم 300 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني. بعد 10 دقيقة، تخدير الفئران مع isoflurane (كما في الخطوة 2.2.1) وتصور الخلايا OT-I / لوك CD8 + T من خلال الحصول على إشارة تلألؤ بيولوجي لمدة 5-10 دقيقة ثإيث نظام تصوير كل الحيوانات (IVIS، تشير إلى ويلسون 26 للتعليمات مفصلة). كرر حسب الضرورة للدراسات طولية.

4. خلايا الببتيد-MHC تلطيخ tetramer من PBMCs لتحليل مستضد محددة CD8 + T

ملاحظة: يمكن تنفيذ هذا الإجراء بروتوكول التالية باستخدام إما C57BL / 6 الفئران نقل adoptively مع الخلايا OT-I / لوك CD8 + T أو C57BL / 6 الفئران دون نقل بالتبني.

  1. في نقطة الوقت المطلوب بعد التطعيم، وجمع ما يقرب من 100 ميكرولتر من الدم (4-6 قطرات) من الفئران عبر تقنية نزيف تحت الفك السفلي 27 في أنبوب المغلفة مع K 2 EDTA وعكس عدة مرات لمنع التخثر.
  2. نقل 100 ميكرولتر من الدم إلى أنبوب microcentrifuge، إضافة 1 مل من تحلل العازلة، واحتضان لمدة 2-3 دقيقة من أجل إزالة خلايا الدم الحمراء (كرات الدم الحمراء). عينات الطرد المركزي لمدة 5 دقائق في 1500 x ج وإزالة طاف. إذا كان بيليه يزالppears الحمراء (تشير إزالة غير كاملة من كرات الدم الحمراء)، كرر الخطوة تحلل مع حضانة قصيرة (<1 دقيقة) من تحلل العازلة.
  3. غسل PBMCs المتبقية مع 1 مل من العازلة FACS (PBS + 1٪ ث / ت BSA) وأجهزة الطرد المركزي في 1500 x ج لمدة 5 دقائق.
  4. نضح طاف و resuspend العينة في 20 ميكرولتر من الماوس CD16 / 32 الأضداد (0.025 ملغ / مل) لمنع الأجسام المضادة غير محددة وFCR بوساطة ملزمة. احتضان لمدة 10 دقيقة في RT.
  5. نقل الخلايا من أنابيب microcentrifuge في 4 مل أنابيب FACS أسفل الجولة. إضافة 20 ميكرولتر من H-2K ب حل OVA Tetramer-SIINFEKL-PE وفقا لمواصفات الشركة الصانعة لكل عينة واحتضان لمدة 30 دقيقة على الجليد.
  6. تحضير الكوكتيل الأضداد (على سبيل المثال، αCD8-APC، αCD44-FITC، وαCD62L-PECy7 الأجسام المضادة (0.005، 0.005، و 0.002 ملغ / مل تركيز على التوالي)). إضافة 20 ميكرولتر من كل عينة تجريبية، واحتضان لمدة 20 دقيقة على الجليد. إعداد الضوابط fluorophore واحدة بواسطة labeling الخلايا مع بعضها tetramer الموسومة fluorophore أو الأجسام المضادة في تركيز المشار إليها أعلاه.
  7. غسل 2 مرات مع العازلة FACS و resuspend بيليه النهائي في FACS العازلة التي تحتوي على 2 ميكروغرام / مل من دابي. الخلايا هي الآن جاهزة للتحليل التدفق الخلوي (التفاصيل والأمثلة يمكن العثور عليها في Scheffold 25).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

ويوضح الخطوات المتبعة في تركيب ICMVs في الشكل 1 6. باختصار، هو رطب فيلم الدهون التي تحتوي على أية عقاقير محبة للدهون أو الأصباغ الفلورية في وجود المخدرات ماء. الكاتيونات ثنائي التكافؤ، مثل الكالسيوم 2+، تضاف لدفع مزيج من الجسيمات الشحمية أنيوني إلى الحويصلات عديد الصفاحات. تطفأ ثنائي الثيول crosslinker، مثل DTT، يضاف إلى "الأساسية" الدهون-functionalized maleimide على apposing طبقات الدهون، وأخيرا مجموعة maleimide الخارجية المتبقية في تفاعل مع thiolated-PEG الأنصاف. هناك جزء صغير من كل دفعة يمكن أن تخضع بسهولة لقياسات مراقبة الجودة من خلال تحديد حجم الجسيمات، ومؤشر التشتت المتعدد، وزيتا المحتملة مع دائرة الأراضي والمساحة وزيتا نظام تحليل المحتملين. الجسيمات الناتجة متجانسة نسبيا حيث يبلغ متوسط ​​حجم 130 ± 20 نانومتر، ومؤشر التشتت المتعدد 0.22 ± 0.02، وإمكانات زيتا من -54 ± 3 بالسيارات مقابل التغليف OVA صالمقالات (1B الشكل و1C). العائد نموذجي من الجسيمات، وتقاس في الوزن الجاف للجزيئات، هو ~ 50٪ 6.

باستخدام بروتوكول المذكورة أعلاه، ICMVs يمكن أن يشترك تحميلها مع fluorophore الموسومة بروتين المستضد وصبغ محبة للدهون الفلورسنت، والسماح التصور للمستضد وجسيمات متناهية الصغر تسليم في الجسم الحي. كانت تدار لمقارنة أنماط التسليم مستضد في شكل قابل للذوبان في مقابل ICMVs، C57BL / 6 الفئران الشوري في قاعدة الذيل مع ورفعه 100 ميكروغرام من AlexaFluor555 الموسومة OVA إما في LNS الأربية القابلة للذوبان أو لم المسمى تركيبات ICMV، واستنزاف في مختلف نقاط زمنية لإعداد DLN الأنسجة البرد أقسام. وأشار التصور مع المجهر متحد البؤر هذا المستضد للذوبان وصلت بسرعة dLNs ضمن 4 ساعة، ولكن تم إبعاد أيضا بسرعة كبيرة مع 24 ساعة (الشكل 2) 7. في المقابل، تم الكشف عن ICMVs محملة OVA على هامش dLNs 24 ساعة، مع استمرار تراكمكما درست في يوم 4، إيداع مبلغ كبير من OVA-ICMVs في dLNs (الشكل 2). كما أظهرت الميكروسكوب متحد البؤر شارك التعريب من AlexaFluor555 الموسومة OVA وICMVs داخل dLNs لم المسمى، مما يوحي بأن ICMVs تسمح مستقر شارك في تسليم مستضدات البروتين وكلاء مناعة أخرى مغلفة ضمن ICMVs 7.

عزل الخلايا CD8 + T من OT-I / لوك الماوس المعدلة وراثيا يمكن أن يؤديها بسهولة مع المغناطيسية مجموعة مختارة السلبية المتاحة تجاريا، مما أسفر ~ 8-12 × 10 6 خلايا في الطحال الماوس. ويبين الشكل 3 C57BL / 6 الفئران نقل adoptively مع 5 × 10 5 OT-I / لوك CD8 + T الخلايا في يوم -1، وتحصين يوم 0 مع الإدارة الشوري من 10 ميكروغرام من OVA و 0.3 ميكروغرام من MPLA إما في صيغ قابلة للذوبان أو ICMV. التصوير تلألؤ بيولوجي مع IVIS تنفيذ يوم 0 قبل نتائج التطعيم ضد الحد الأدنى من إشارة OT-I / لوك. ومع ذلك، بعد يوم 4 آخر التطعيم، تحصين الفئرانمع OVA كان / MPLA-ICMVs قوية إشارة تلألؤ بيولوجي داخل LNS الأربية، والتي هي LNS استنزاف المنطقة قاعدة الذيل 28. في المقابل، أظهرت تحصين الفئران مع شكل قابل للذوبان من اللقاح خفض التوسع الكثير من الخلايا OT-I / لوك CD8 + T داخل dLNs الاربية.

باستخدام OVA كما مستضد نموذج يسمح رصد التوسع في خلايا CD8 + T الذاتية الخاصة سائد مناعيا OVA 257-264 الببتيد (SIINFEKL). على سبيل المثال، تم تحصين C57BL / 6 الفئران في أيام 0، 21، و 35 مع إدارة الشوري من 10 ميكروغرام OVA و 0.3 ميكروغرام MPLA في أي ICMVs أو شكل قابل للذوبان، والترددات الخلايا SIINFEKL محددة CD8 + T بين خلايا CD8 + T في PBMCs تم تحديدها من قبل تدفق تحليل cytometric من PBMCs ملطخة SIINFEKL-H-2K ب tetramer-PE. 4A الشكل يظهر تدفق تمثيلي الخلوي المؤامرات مبعثر من SIINFEKL-H-2K ب tetramer + خلايا بين الخلايا CD8 + T في PBMCs يوم 41 6. شملت رقممعارض البريد 4B المؤامرات مبعثر تمثيلية من CD62L + CD44 + الخلايا مع النمط الظاهري الذاكرة المركزي بين SIINFEKL-tetramer + خلايا CD8 + T. وأشار الرصد الأسبوعي لPBMCs هو مبين في الشكل 4C أن اللقاح OVA للذوبان أثار التوسع الحد الأدنى من CD8 + T الخلايا مستضد معين، في حين أن التطعيم ICMV أثارت كثيرا استجابات الخلايا CD8 + T أقوى، وتحقيق ذروة 28٪ SIINFEKL-tetramer + خلايا T في CD8 + T السكان الخلية بعد يوم 41 6. باستخدام بروتوكول تلطيخ tetramer المعروضة هنا، لاحظنا تردد خلفية 0.11٪ ± 0.04٪ خلايا T OVA محددة (N = 15) في الحيوانات غير المعالجة أو المعالجة PBS، ونحن يمكن الكشف عن زيادة ذات دلالة إحصائية في مستضد معين CD8 + T الخلية ترددات منخفضة تصل إلى 0.46٪ ± 0.05٪ (ع القيمة <0.005، لا تظهر البيانات).

الشكل 1
(A) ICMVs في الخطوات التالية (4)؛ (ط) أنيوني، يتم إعداد الجسيمات الشحمية-functionalized maleimide من الأفلام الدهون المجففة. (ب) تضاف الكاتيونات ثنائي التكافؤ للحث على مزيج من الجسيمات الشحمية وتشكيل الحويصلات عديد الصفاحات. (ج) يتم إضافة dithiols-نفاذية الغشاء، الذي تشعبي الدهون-maleimide على طبقات ثنائية الدهون الرئيسي يعارضها في جدران الحويصلات. و (رابعا) وPEGylated جزيئات الدهن الناتج مع منتهية ثيول PEG. ويرد (B) توزيع الجسيمات الممثل حسب تحليل DLS. (C) متوسط ​​حجم الهيدروديناميكية، مؤشر التشتت المتعدد، وإمكانات زيتا من ICMVs شارك محملة ترد OVA وMPLA. تم تعديل وحة (A) من القمر وآخرون. 6. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.

الرقم 2
الشكل 2. تحليل للمستضد استنزاف إلى الغدد الليمفاوية مع المجهر متحد البؤر. تم تحصين C57BL / 6 الفئران مع 100 ميكروغرام-fluorophore مترافق OVA (كما هو موضح باللون الأحمر) و 5 ميكروغرام MPLA إما في حل أو ICMVs (كما هو موضح باللون الأزرق). تم رفعه تصريف الغدد الليمفاوية الأربية عند نقاط الزمنية المشار إليها، cryosectioned، وتصوير مع المجهر متحد البؤر. وترد الميكروسكوب متحد البؤر التمثيلية. إشارات الوردي تشير شارك التعريب من OVA وICMVs. تم تعديل هذا الرقم من القمر وآخرون. 7. يرجى النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل (3)
الشكل 3. الرصز T توسع الخلية بعد التطعيم. C57BL / 6 الفئران البيضاء وتم نقل adoptively الرابع مع ​​5 × 10 5 خلايا لوك + OT-I CD8 + T في يوم -1. في اليوم 0، كانت تدار الحيوانات مع 10 ميكروغرام من OVA و 0.1 ميكروغرام من MPLA إما تركيبات قابلة للذوبان أو ICMV. تم تخدير الحيوانات مع isoflurane والتي تدار بالتعاون مع وسيفيرين (150 مغ / كغ، و 300 ميكرولتر الملكية الفكرية حقن)، وإشارة تلألؤ بيولوجي من الخلايا لوك + OT-1 CD8 + T تم الحصول عليها مع IVIS. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.

الرقم 4
الرقم 4. التوسع في CD8 + T الخلايا OVA محددة الذاتية بعد التطعيم ICMV. تم تحصين C57BL / 6 الفئران مع 10 ميكروغرام من OVA و 0.1 ميكروغرام من MPLA إما طن حل أو ICMVs في أيام 0، 21، و 35 (السهام). تم تقييم تردد من الخلايا T OVA محددة بين الخلايا وحيدة النواة في الدم المحيطي مع مرور الوقت من خلال تحليل تدفق cytometric من SIINFEKL-MHC-I tetramer + خلايا CD8 + T. (A) تدفق الممثل الخلوي المؤامرات مبعثر من الفئران الفردية في يوم 41 مشاهدة SIINFEKL-MHC-I tetramer + CD8 + T الخلايا و(B) خلايا CD62L + CD44 +، علامة من الخلايا التائية الذاكرة المركزية. (C) ويظهر حركية العامة للT توسيع الخلايا والانكماش. تم تعديل هذا الرقم من القمر وآخرون. 6. يرجى النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

يصف بروتوكول المنصوص عليها في هذه المادة توليف وتوصيف نظام جديد جسيمات متناهية الصغر القائم على دهون، ووصف ICMVs، ويوفر عملية التحقق من صحة فعالية تركيبات لقاح القائم على جسيمات متناهية الصغر للحث على CD8 + T استجابات الخلايا مستضد معين. اكتمال ICMV التوليف في كل حالة المائية، وهي ميزة كبيرة مقارنة مع النظم الأخرى المستخدمة عادة البوليمرية جسيمات متناهية الصغر (على سبيل المثال، بولي (lactide-CO-glycolide) جزيئات الحمض)، والتي تتطلب عادة المذيبات العضوية لإعداد، مما أدى إلى فقدان كثير من الأحيان استضداد في البروتين المستضدات 29،30. وبالإضافة إلى ذلك، والمنفعة ICMVs من الاستقرار والقدرة على نطاق واسع لتغليف جزيئات كلا مسعور وماء مما يسمح شارك في تقديم المستضدات والمواد المساعدة التي تستهدف نفس المكان داخل الخلايا داخل ناقلات الجنود المدرعة 31،32. باستخدام ICMVs باعتبارها جسيمات متناهية الصغر لقاح نموذج، ونحن هنا قمنا بتحديد الإجراءاتل(1) التوليف جسيمات متناهية الصغر والتوصيف، (2) التحقق من جسيمات متناهية الصغر الصرف لdLNs، وفحص الاستنباط من CD8 + T استجابات الخلايا مستضد معين باستخدام (3) غير الغازية تقنية التصوير تلألؤ بيولوجي و (4) الببتيد-MHC تلطيخ tetramer فحص على PBMCs.

فمن الأهمية بمكان لضمان الاتساق في تخليق جسيمات متناهية الصغر من دفعة لدفعة، وخاصة لحجم الجسيمات وتهمة السطحية لأنها يمكن أن تؤثر بشكل كبير تصريف الليمفاوي وامتصاص ناقلات الجنود المدرعة عليها في الجسم الحي الإدارة. DLS وتحليل المحتملة زيتا توفر طرق سريعة لفحص الجودة على حجم الجسيمات ورسوم السطح. للتحاليل أكثر تفصيلا على التشكل من الجزيئات الفردية، ويمكن استكمال هذه التقنيات مع ارتفاع القرار المجهر الإلكتروني، مثل البرد الإلكترون المجهري (البرد EM) الذي يحافظ على التشكل من الجسيمات "الناعمة" في الطبقة المائية المزجج 6،33،34 . كفاءة التغليف من المستضدات وadjuvكما يجب تحديد النمل وأبقى موحدة بين توليفات. المواد المساعدة، مثل MPLA، يمكن الموسومة مع fluorophore 6 في حين مستضدات البروتين يمكن قياسها كميا باستخدام مجموعات البروتين الكمي absorbance- والقائم على مضان، أو تحليلها باستخدام SDS-PAGE 35 و Coomassie أو الفضة تلطيخ 36، وكميا على أساس كثافة الفرقة . تناقضات في إعداد الجسيمات قد تنجم عن الكواشف منتهية الصلاحية أو تخزينها بشكل سيئ، كما تفاعل الأمثل ضروري لتخليق كاملة. تحقيقا لهذه الغاية، maleimide- ويجب أن تبقى thiol- الكواشف functionalized في قسامات صغيرة في -80 ° C دون المتكررة تجميد أذاب دورات.

الجسيمات ويعتقد أقل من 100 نانومتر عموما للدخول بشكل فعال في الأوعية اللمفاوية وحركة المرور إلى dLNs 13، في حين أن الجزيئات الكبيرة (500-2،000 نانومتر) تتطلب النقل النشط من قبل الأنسجة المقيمة البلدان النامية 12،37. في أيدينا، ICMVs مع حجم الهيدروديناميكية تتراوح 150-250 نانومتر المحلية بكفاءة واستمر في DLN، مما أدى إلى CTL واسعة وردود الخلطية 6،7. خلال 24 ساعة من الإدارة، وارتبطت ICMVs مع الضامة تحت المحفظة الجيوب الأنفية في dLNs، وتدفق cytometric التحليلات التي أجريت على أيام 1 و 4 أشارت إلى أن معظم ICMVs داخل dLNs تم تناولها من قبل ناقلات الجنود المدرعة LN المقيمة مع سوى جزء صغير من الجزيئات المرتبطة انجرهانز والبلدان النامية عن طريق الجلد 7. وأشارت هذه النتائج إلى أن النقل السلبي هو الوسيلة الرئيسية للاتجار ICMV إلى dLNs. وقد استخدمت هذه الدراسات النانوية الموسومة fluorophore ومولدات المضادات البروتين لتحديد توطين وتوزيع أنماطها في dLNs. المجهر متحد البؤر من dLNs cryosectioned يسمح الكيمياء النسيجية المناعي إضافي لتحديد الهياكل LN (على سبيل المثال، GL-7 التعبير في مراكز جرثومي) والخلايا تتفاعل مع مكونات صياغة (على سبيل المثال، البلدان النامية - CD11c و، الضامة - F4 / 80، CD169، وB- خلايا & #8211؛ B220) 7،9. هذه التقنية يمكن ان يقوم بالتوازي مع التدفق الخلوي التحليلات الخلايا التي تحصد من dLNs لتحديد مجموعات فرعية من ناقلات الجنود المدرعة المسؤولة عن امتصاص الجسيمات 7،9 أو مع التصوير كامل الحيوانية ل quantitate إعطاء اللقاحات من موقع الحقن لdLNs 38،39، شريطة أن تكون إشارات الفلورسنت قوية ولا تتدخل تألق ذاتي الأنسجة مع الإشارات.

التحصين الفعال يتطلب تفعيل قوي وتوسيع الخلايا السامة للخلايا T مستضد معين، والتي يمكن تتبعها كامل الجسم التصوير تلألؤ بيولوجي بعد نقل بالتبني من إضاءة الحيوية، وخلايا T المعدلة وراثيا مستضد معين، تليها التلقيح. فائدة إضافية لهذه الطريقة هي إمكانية التصور المتكررة الاتجار CTL في نفس الحيوانات لفترة طويلة، مما يقلل من عدد الحيوانات اللازمة لتحليل المناعية وتجنب استخدام شاقة العزلة خلية الاجراءوفاق. باستخدام هذه التقنية التصوير، ولقد أثبتنا مؤخرا أن إدارة الرئوية من ICMVs شارك محملة مستضد البروتين وكيلا مناعة أدى إلى الاستنباط قوية من CD8 + T الخلايا مستضد معين في الرئة وLNS الرئتين ونشرها لاحقا CTLs إلى الأنسجة المخاطية البعيدة ، بما في ذلك بقع باير، الأعور، والقناة المهبلية 9. أظهرت تحاليل تدفق cytometric أن هذه الخلايا CD8 + T الموسعة حديثا ومطبوع مع "المخاطية-صاروخ موجه" النمط الظاهري تتميز α β 7 + 4 إنتغرين التعبير وبوساطة الاستجابات المناعية وقائية ضد المخاطية التحدي الفيروسي 9. كما تم استخدام التصوير كله والحيوان خلايا CD8 + T للإضاءة الحيوية مؤخرا Hailemicheal وآخرون، الذين تظاهروا هذا المستضد الورم الببتيد وضعت في مساعد ناقصة فرويند (IFA، مستحلب النفط في المياه) أدى إلى عزل خلايا T في الموقع من الحقنبلقاح "مستودع" بعيدا عن الجماهير الورم، مما يؤدي إلى T ضعف الخلية وحذف 40.

وقد استخدم تلطيخ tetramer على نطاق واسع في الماضي لتحديد مستوى الاستجابة CTL الذاتية الناجمة عن مختلف الصيغ لقاح 21. هذه التقنية هي أيضا ذات الصلة واستخدامها عادة في وقت مبكر المناعي سرطان التجارب السريرية البشرية لتأكيد الردود CTL لمستضدات المرتبطة ورم محددة 41،42. PBMCs يمكن جمعها بسهولة من الفئران واستعدت لالتدفق الخلوي. ومع ذلك، فإنه قد لا تكشف عن المدى الكامل للتوسع T-الخلية نتيجة لتوطين الخلية لقاحات مستودع تشكيل كما ذكر من قبل أو داخل الأورام في نماذج السرطان، مما يتطلب تحليل أكثر شمولا. توافق هذا الأسلوب مع التدفق الخلوي يسمح بتحديد خلايا T مستضد معين مع علامات الذاكرة (CD44، CD62L، CD127، بي سي إل 2، وKLRG-1) للتمييز المستجيب والذاكرة المركزية، وذاكرة المستجيب مLLS بين tetramer + T الخلايا 43 أو CTLs طويلة الأمد المقيمين الأنسجة 44،45 (على النحو الموجز في أحدث التعليقات 46،47). ومع ذلك، يوفر الفحص تلطيخ tetramer فقط التقييم الأولي للاستجابات CTL منذ خلايا T مستضد معين موسعة للغاية قد تظهر علامات الإنهاك المناعة 48،49. تقييم وظيفي الردود CTL لا يمكن أن يؤديها من خلال دراسة الافراج خلوى مع انزيم مرتبط immunospot (ELISPOT) 50 أو داخل الخلايا تلطيخ خلوى 51 بعد المجراة سابقا تحفيز الخلايا الليمفاوية مع الحد الأدنى من الحواتم وكذلك من خلال قياس مستويات الخلايا من perforin وباء granzyme 52 و خارج الخلية التعبير عن CD107a وCD107b على تحبب 53. بالإضافة إلى ذلك، يمكن تقييم وظيفة لحل الخلايا من CTLs مباشرة مع المقايسات CTL السمية الخلوية التي أجريت في المختبر أو في الجسم الحي 54-56.

تحريض الاستجابة المناعية الخلطيةبعد التطعيم جسيمات متناهية الصغر يمكن دراستها بشكل متواز مع الخلية CD8 + T التحليلات المقدمة هنا. ويمكن تحليل التتر الضد من الطريقة التقليدية في انزيم مرتبط المناعي فحص (ELISA)، في حين تقارب الأجسام المضادة واتساع الاعتراف حاتمة يمكن تقييمها عن طريق تعديل بروتوكول ELISA مع استخدام وكيل chaotropic (على سبيل المثال، اليوريا) خلال الأجسام المضادة ملزمة لل الركيزة، واستخدام النطاقات الفرعية داخل مستضدات بمثابة ركائز، على التوالي 7. الاستنباط من الاستجابات الخلطية قوية يتطلب توسيع المساعد الجريبي CD4 + T خلايا (T FH) 57. للتحقيق في توسيع خلايا T FH ردا على التطعيم الجسيمات، وبروتوكول المعروضة هنا يمكن تكييفه بسهولة لعزل مستضد معين CD4 + T الخلايا من OT-II الفئران المعدلة وراثيا، تليها نقل خلية بالتبني في الفئران المتلقي ساذجة. بعد التطعيم، الأنسجة اللمفاوية يمكن حصاده وتحليلها مع تدفق cytometric تحليلات لردعالتوسع الألغام من خلايا T FH مستضد معين (التي حددها لهم CD4 + CXCR5 + PD-1 + النمط الظاهري) 7.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

قدمت بيركن إلمر تكلفة الإنتاج المتكبدة خلال نشر هذا المقال.

Acknowledgments

وأيد هذه الدراسة من قبل المعهد الوطني للصحة منح 1K22AI097291-01 والمركز الوطني للنهوض بالحركة العلوم من المعاهد الوطنية للصحة في إطار جائزة عدد UL1TR000433. علينا أيضا أن نعترف الأستاذ داريل ايرفين في معهد ماساتشوستس للتكنولوجيا والبروفيسور ماتياس ستيفان في مركز فريد هاتشينسون للسرطان لمساهمتهم في الأعمال الأولية على لقاح النانوية وOT-I / لوك الفئران المعدلة وراثيا.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1. Synthesis and characterization of ICMVs co-loaded with protein antigen and adjuvant molecules
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[4-(p-maleimidophenyl)butyramide] (sodium salt) (MPB) Avanti Polar Lipids, INC. 870012
1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DOPC) Avanti Polar Lipids, INC. 850375
Monophosphoryl Lipid A (Synthetic) (PHAD™) (MPLA) Avanti Polar Lipids, INC. 699800
20 ml glass vials Wheaton 0334125D
Symphny Vacuum Oven VWR 414004-580
Ovalbumin (OVA) Worthington 3054
Bis-Tris Propane (BTP) Fisher BP2943
Q125 Sonicator (125 W/20 kHz) Qsonica Q125-110
Dithiothreitol (DTT) Fisher BP172
2 kDa Thiolated Polyethylene Glycol (PEG-SH) Laysan Bio MPEG-SH-2000-1g
Malvern ZetaSizer Nano ZSP  Malvern
ZetaSizer Cuvettes Malvern DTS1070
2. Examination of lymph node draining of fluorescence-tagged ICMVs with confocal microscopy
1,1'-Dioctadecyl-3,3,3',3'-Tetramethylindodicarbocyanine, 4-Chlorobenzenesulfonate Salt (DID) Life Technologies D-7757
Alexa Fluor 555-succinimidyl ester (AF555-NHS) Life Technologies A37571
Tissue-Tek OCT freezing medium  VWR 25608-930
Tissue Cryomolds VWR 25608-922
3. Monitoring expansion of antigen-specific, luciferase-expressing CD8+ T cells after nanoparticle vaccination with whole animal imaging
C57BL/6 mice Jackson 000664
Albino C57BL/6 mice Jackson 000058
OT-1 C57BL/6 mice Jackson 003831
70 μm nylon strainer BD 352350
EasySep™ Mouse CD8+ T Cell Isolation Kit StemCell 19853
IVIS® whole animal imaging system Perkin Elmer
4. Peptide-MHC tetramer staining of peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) for flow cytometric analysis of antigen-specific CD8+ T cells
K2EDTA tubes BD 365974
ACK lysis buffer Life Technologies A10492-01 
Anti-CD16/32 Fc Block Ebioscience 14-0161-86
H-2Kb OVA Tetramer MBL TS-5001-1C
Anti-CD8-APC BD 553031
Anti-CD44-FITC BD 553133
Anti-CD62L-PECy7 Ebioscience 25-0621-82
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride (DAPI) SIGMA D8417-10MG
CyAn Flow Cytometer Beckman Coulter
FlowJo Software FlowJo

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Irvine, D. J., Swartz, M. A., Szeto, G. L. Engineering synthetic vaccines using cues from natural immunity. Nature materials. 12, 978-990 (2013).
  2. Moon, J. J., Huang, B., Irvine, D. J. Engineering nano- and microparticles to tune immunity. Advanced materials. 24, 3724-3746 (2012).
  3. Sahdev, P., Ochyl, L. J., Moon, J. J. Biomaterials for nanoparticle vaccine delivery systems. Pharmaceutical Research. (2014).
  4. Zhao, L., et al. Nanoparticle vaccines. Vaccine. 32, 327-337 (2014).
  5. Riet, E., Ainai, A., Suzuki, T., Kersten, G., Hasegawa, H. Combatting infectious diseases; nanotechnology as a platform for rational vaccine design. Advanced drug delivery reviews. 74C, 28-34 (2014).
  6. Moon, J. J., et al. Interbilayer-crosslinked multilamellar vesicles as synthetic vaccines for potent humoral and cellular immune responses. Nature Materials. 10, 243-251 (2011).
  7. Moon, J. J., et al. Enhancing humoral responses to a malaria antigen with nanoparticle vaccines that expand Tfh cells and promote germinal center induction. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109, 1080-1085 (2012).
  8. DeMuth, P. C., Moon, J. J., Suh, H., Hammond, P. T., Irvine, D. J. Releasable layer-by-layer assembly of stabilized lipid nanocapsules on microneedles for enhanced transcutaneous vaccine delivery. ACS Nano. 6, 8041-8051 (2012).
  9. Li, A. V., et al. Generation of Effector Memory T Cell-Based Mucosal and Systemic Immunity with Pulmonary Nanoparticle Vaccination. Science Translational Medicine. 5, 204ra130 (2013).
  10. Stephan, M. T., Moon, J. J., Um, S. H., Bershteyn, A., Irvine, D. J. Therapeutic cell engineering with surface-conjugated synthetic nanoparticles. Nature Medicine. 16, 1035-1041 (2010).
  11. Murdock, R. C., Braydich-Stolle, L., Schrand, A. M., Schlager, J. J., Hussain, S. M. Characterization of nanomaterial dispersion in solution prior to In vitro exposure using dynamic light scattering technique. Toxicological Sciences. 101, 239-253 (2008).
  12. Manolova, V., et al. Nanoparticles target distinct dendritic cell populations according to their size. European Journal of Immunology. 38, 1404-1413 (2008).
  13. Reddy, S. T., et al. Exploiting lymphatic transport and complement activation in nanoparticle vaccines. Nature Biotechnology. 25, 1159-1164 (2007).
  14. Kaur, R., Bramwell, V. W., Kirby, D. J., Perrie, Y. Manipulation of the surface pegylation in combination with reduced vesicle size of cationic liposomal adjuvants modifies their clearance kinetics from the injection site, and the rate and type of T cell response. Journal of Controlled Release. 164, 331-337 (2012).
  15. Zhuang, Y., et al. PEGylated cationic liposomes robustly augment vaccine-induced immune responses: Role of lymphatic trafficking and biodistribution. Journal of Controlled Release. 159, 135-142 (2012).
  16. Hogquist, K. A., et al. T cell receptor antagonist peptides induce positive selection. Cell. 76, 17-27 (1994).
  17. Clarke, S. R. M., et al. Characterization of the ovalbumin-specific TCR transgenic line OT-I: MHC elements for positive and negative selection. Immunology and Cell Biology. 78, 110-117 (2000).
  18. Azadniv, M., Dugger, K., Bowers, W. J., Weaver, C., Crispe, I. N. Imaging CD8(+) T cell dynamics in vivo using a transgenic luciferase reporter. International Immunology. 19, 1165-1173 (2007).
  19. Kim, D., Hung, C. F., Wu, T. C. Monitoring the trafficking of adoptively transferred antigen- specific CD8-positive T cells in vivo, using noninvasive luminescence imaging. Human gene therapy. 18, 575-588 (2007).
  20. Rabinovich, B. A., et al. Visualizing fewer than 10 mouse T cells with an enhanced firefly luciferase in immunocompetent mouse models of cancer. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 14342-14346 (2008).
  21. Altman, J. D., et al. Phenotypic analysis of antigen-specific T lymphocytes. Science. 274, 94-96 (1996).
  22. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats. Journal of Visualized Experiments. e2771 (2012).
  23. Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin Iii, J. Isolation and Th17 Differentiation of Naive CD4 T Lymphocytes. Journal of Visualized Experiments. e50765 (2013).
  24. Chen, Y., et al. Visualization of the interstitial cells of cajal (ICC) network in mice. Journal of Visualized Experiments. (2011).
  25. Scheffold, A., Busch, D. H., Kern, F. In Cellular Diagnostics Basics, Methods and Clinical Applications of Flow Cytometry. Karger. Sack, U., Tárnok, D. H., Rothe, G. 476-502 (2009).
  26. Wilson, K., Yu, J., Lee, A., Wu, J. C. In vitro and in vivo Bioluminescence Reporter Gene Imaging of Human Embryonic Stem Cells. Journal of Visualized Experiments. e740 (2008).
  27. Golde, W. T., Gollobin, P., Rodriguez, L. L. A rapid, simple, and humane method for submandibular bleeding of mice using a lancet. Lab Animal. 34, 39-43 (2005).
  28. Tilney, N. L. Patterns of lymphatic drainage in the adult laboratory rat. Journal of Anatomy. 109, 369-383 (1971).
  29. Stivaktakis, N., et al. PLA and PLGA microspheres of beta-galactosidase: Effect of formulation factors on protein antigenicity and immunogenicity. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 70A, 139-148 (2004).
  30. Bilati, U., Allemann, E., Doelker, E. Nanoprecipitation versus emulsion-based techniques for the encapsulation of proteins into biodegradable nanoparticles and process-related stability issues. AAPS PharmSciTech. 6, E594-E604 (2005).
  31. Blander, J. M., Medzhitov, R. Toll-dependent selection of microbial antigens for presentation by dendritic cells. Nature. 440, 808-812 (2006).
  32. Iwasaki, A., Medzhitov, R. Regulation of adaptive immunity by the innate immune system. Science. 327, 291-295 (2010).
  33. Dubochet, J., et al. Cryo-electron microscopy of vitrified specimens. Quarterly reviews of biophysics. 21, 129-228 (1988).
  34. Vinson, P. K., Talmon, Y., Walter, A. Vesicle-micelle transition of phosphatidylcholine and octyl glucoside elucidated by cryo-transmission electron microscopy. Biophysical Journal. 56, 669-681 (1989).
  35. Schagger, H. Tricine-SDS-PAGE. Nature Protocols. 1, 16-22 (2006).
  36. Chevallet, M., Luche, S., Rabilloud, T. Silver staining of proteins in polyacrylamide gels. Nat Protoc. 1, 1852-1858 (2006).
  37. Randolph, G. J., Angeli, V., Swartz, M. A. Dendritic-cell trafficking to lymph nodes through lymphatic vessels. Nature Reviews Immunology. 5, 617-628 (2005).
  38. Liu, H., et al. Structure-based programming of lymph-node targeting in molecular vaccines. Nature. 507, 519-522 (2014).
  39. Xu, Z., et al. Multifunctional nanoparticles co-delivering Trp2 peptide and CpG adjuvant induce potent cytotoxic T-lymphocyte response against melanoma and its lung metastasis. Journal of Controlled Release. 172, 259-265 (2013).
  40. Hailemichael, Y., et al. Persistent antigen at vaccination sites induces tumor-specific CD8(+) T cell sequestration, dysfunction and deletion. Nature Medicine. 19, 465 (2013).
  41. Slingluff, C. L., et al. Phase I trial of a melanoma vaccine with gp100(280-288) peptide and tetanus helper peptide in adjuvant: Immunologic and clinical outcomes. Clinical Cancer Research. 7, 3012-3024 (2001).
  42. Speiser, D. E., et al. Rapid and strong human CD8(+) T cell responses to vaccination with peptide, IFA, and CpG oligodeoxynucleotide 7909. Journal of Clinical Investigation. 115, 739-746 (2005).
  43. Araki, K., et al. mTOR regulates memory CD8 T-cell differentiation. Nature. 460, 108-112 (2009).
  44. Masopust, D., Vezys, V., Marzo, A. L., Lefrancois, L. Preferential localization of effector memory cells in nonlymphoid tissue. Science. 291, 2413-2417 (2001).
  45. Cuburu, N., et al. Intravaginal immunization with HPV vectors induces tissue-resident CD8+ T cell responses. Journal of Clinical Investigation. 122, 4606-4620 (2012).
  46. Ahlers, J. D., Belyakov, I. M. Memories that last forever: strategies for optimizing vaccine T-cell memory. Blood. 115, 1678-1689 (2010).
  47. Seder, R. A., Darrah, P. A., Roederer, M. T-cell quality in memory and protection: implications for vaccine design. Nature Reviews Immunology. 8, 247-258 (2008).
  48. Barber, D. L., et al. Restoring function in exhausted CD8 T cells during chronic viral infection. Nature. 439, 682-687 (2006).
  49. Wherry, E. J., et al. Molecular signature of CD8+ T cell exhaustion during chronic viral infection. Immunity. 27, 670-684 (2007).
  50. Czerkinsky, C. C., Nilsson, L. A., Nygren, H., Ouchterlony, O., Tarkowski, A. A solid-phase enzyme-linked immunospot (ELISPOT) assay for enumeration of specific antibody-secreting cells. Journal of Immunological Methods. 65, 109-121 (1983).
  51. Foster, B., Prussin, C., Liu, F., Whitmire, J. K., Whitton, J. L. Detection of intracellular cytokines by flow cytometry. Current Protocols in Immunology. Chapter 6, (Unit 6 24), (2007).
  52. Wonderlich, J., Shearer, G., Livingstone, A., Brooks, A. Induction and measurement of cytotoxic T lymphocyte activity. Current protocols in immunology. Chapter 3, (Unit 6 24), (2006).
  53. Betts, M. R., et al. Sensitive and viable identification of antigen-specific CD8+T cells by a flow cytometric assay for degranulation. Journal of Immunological Methods. 281, 65-78 (2003).
  54. Brunner, K. T., Mauel, J., Cerottini, J. C., Chapuis, B. Quantitative assay of the lytic action of immune lymphoid cells on 51-Cr-labelled allogeneic target cells in vitro; inhibition by isoantibody and by drugs. Immunology. 14, 181-196 (1968).
  55. Noto, A., Ngauv, P., Trautmann, L. Cell-based flow cytometry assay to measure cytotoxic activity. Journal of Visualized Experiments. e51105 (2013).
  56. Quah, B. J., Wijesundara, D. K., Ranasinghe, C., Parish, C. R. The use of fluorescent target arrays for assessment of T cell responses in vivo. Journal of visualized experiments. e51627 (2014).
  57. Crotty, S. Follicular helper CD4 T cells (TFH). Annual review of immunology. 29, 621-663 (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics