RNA Sıralama Deneyi Gen İfade ve Genomik değişiklikleri tanımlamak için hedeflenen

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Martin, D. P., Miya, J., Reeser, J. W., Roychowdhury, S. Targeted RNA Sequencing Assay to Characterize Gene Expression and Genomic Alterations. J. Vis. Exp. (114), e54090, doi:10.3791/54090 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

RNA dizi (RNAseq) gen ekspresyonunu, mutasyon, gen füzyonlarının ve kodlayıcı olmayan RNA'lar algılamak ve karakterize etmek için kullanılabilir çok yönlü bir yöntemdir. 100,000,000 dizi okuma ve mRNA ve kodlayıcı olmayan RNA'lar gibi birden fazla RNA ürünlerini içerebilir - Standart RNAseq 30 gerektirir. Biz hedefli RNAseq (yakalama) bir masaüstü sequencer kullanarak seçilen RNA ürünlerde odaklanmış bir çalışma izin nasıl gösterilmektedir. RNAseq yakalama aksi geleneksel RNAseq yöntemleri kullanılarak atlanabilir, Açıklama içermeyen düşük, ya da geçici olarak ifade transkript karakterize edilebilir. Burada hücre hatları, ribozomal RNA tükenmesi, cDNA sentezi, barkodlu kütüphane, bir masaüstü sequencer üzerinde melezleme ve hedeflenen transkript yakalanması ve multipleks sıralama hazırlanması RNA çıkarma açıklar. Biz de kalite kontrol değerlendirme, hizalama, füzyon algılama, gen ifadesi miktarının ve tek MBK tanımlanmasını içeren hesaplama analiz boru hattı, anahatleotide varyantları. Bu deney, gen ekspresyonunu, gen füzyonlarının ve mutasyonları tanımlamak için hedeflenmiş transkript dizilemesi için izin verir.

Protocol

Not: Bu protokol eşzamanlı işleme ve dört numunelerin analizini açıklar. Bu yöntem, hücrelerden izole edilmiş RNA, taze dondurulmuş doku ve formalin ile fikse parafine gömülü doku (FFPE) ile uyumludur. Her numune için bir RNA girişi başlayan 1000 ng (250 önerilir ng) - Bu protokol 50 ile başlar.

1. rRNA tükenmesi ve RNA Usul Parçalanma

  1. rRNA tükenmesi
    1. Oda sıcaklığında, -20 ° C ve çözülme ile ilgili elüte, asal, parça karışımı, rRNA çıkarma karışımı, rRNA bağlayıcı tampon ve yeniden süspansiye etme tamponu çıkarın. 4 ° C ile elüsyon tamponu, rRNA çıkarma boncuk ve RNA / cDNA, belirli para-manyetik boncuklar alınır ve oda sıcaklığına getirin.
    2. PCR tüpü RNA 0.25 ug ekleyin. 10 ul bir toplam son hacmine nükleaz içermeyen ultra saf su ile toplam RNA seyreltilir. Her tüpe rRNA bağlayıcı tampon 5 ul ekleyin yavaşça pipett 5 rRNA kaldırma karışımı ul ekleyine yukarı ve aşağı karıştırın. kapaklı termal döngüleyici içinde yer tüpler RNA denatüre etmek için 5 dakika boyunca 68 ° C'ye kadar, 100 ° C ve program termal döngü önceden ısıtıldı.
    3. RNA bozunmasından sonra, termal döngü tüpleri çıkarın ve 1 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Vortex rRNA kaldırma boncuk tüp şiddetle boncuk tekrar süspansiyon. Yeni tüplere rRNA kaldırma boncuk 35 ul ekleyin ve rRNA kaldırma boncuklar içeren tüplere RNA denatürasyon reaksiyonu (20 ul) aktarın.
    4. hızlı bir şekilde 45 ul ve pipet pipet ayarlayın ve 20x aşağı karıştırın. 1 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Daha sonra, 1 dakika, oda sıcaklığında manyetik stand tüpleri. Yeni etiketli PCR tüplerine süpernatant aktarın ve 1 dakika boyunca, oda sıcaklığında manyetik stand Yine bu tüpleri. Bu, boncuklar aktarılmasını sağlar. Yeni etiketli PCR tüplerine süpernatant aktarın.
    5. Vortex RNA / cDNA özel paramanyetik boncuk ve her tüpe boncuk 99 ul ekleyin. Yavaşça pipet tümhacim yukarı ve aşağı 10x karıştırın. bozulmuş RNA ile başlanarak, her bir tüpe iyi karıştırılmış RNA / cDNA, belirli para-manyetik boncuk 193 ul ekle. 15 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Daha sonra 5 dakika boyunca, oda sıcaklığında, manyetik ayağa tüpleri. Çıkarın ve süpernatantlar atın.
    6. taze hazırlanmış% 70 etanol (EtOH) 200 ul ekle. Manyetik stand tüpleri tutmak ve boncuk rahatsız değil dikkat edin. sonra çıkarın ve supernatant atmak 30 saniye boyunca oda sıcaklığında inkübe. 10 dk kurumasını - 5 için tüpler oda sıcaklığında bekletin.
    7. Santrifüj 5 saniye boyunca 600 x g'de oda sıcaklığında elüsyon tamponu çözülmüş. Her tüpe elüsyon tamponu 11 ul ekleyin ve hafifçe yukarı pipet ve 10x aşağı karıştırın. 2 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında, manyetik ayağa tüpler yerleştirin. Yeni etiketli PCR tüplerine süpernatant 8.5 ul aktarın.
  2. RRNA Tükenmiş RNA Parçalanma
    1. 8.5 ul el ekleute 8.5 ul ana ve her tüpe 8.5 ul fragmanı karışımı. Yavaşça yukarı pipet ve 10x aşağı karıştırın. 8 dakika, daha sonra 4 ° C'de tutun, 100 ° C, 94 ° C'ye kadar önceden ısıtılmış kapak: program aşağıdaki termal döngüleyici içinde yer borular.
      Not: Bu adım 155 bp büyüklüğünde bir ortalama insert büyüklüğü üretmek üzere tasarlanmıştır. RNA örnek ortalama fragman büyüklüğü daha düşük 200 bp ise, bu adımı atlayın ve First Strand cDNA Sentezi geçin.

2. cDNA Sentezi

  1. İlk cDNA sentez
    1. -20 ° C ile birinci iplik sentez karışımı alınır ve oda sıcaklığında erimeye.
    2. Ön programı aşağıdaki ayarlarla termal döngü cihazı: Ön ısıtma kapağı seçeneği ve 15 dakika, 15 dakika boyunca 100 ° C, 10 dakika boyunca, sonra 25 ° C, 42 ° C, 70 ° C olarak ayarlanır ve 4 ° C'de tutun . Bu programı kaydet "Sentez 1. Strand."
    3. 600 & # santrifüj çözülmüş ilk iplik sentez karışımı tüp215; 5 saniye boyunca örn. 1 ul birinci iplik sentez karışımı 9 ul ters transkriptaz karıştırın.
    4. İlk kol sentezi 8 ul ekleyin ve her tüp transkriptaz karışımı ters yavaşça yukarı pipet ve aşağı karıştırmak 6x. 6.0 xg'de sabit hız mini masaüstü santrifüj kullanılarak 4 saniye boyunca santrifüj tüpleri altına sıvı getirmek. Termal döngü tüpleri yerleştirin ve Sentez 1. Strand seçin. termal döngü cihazı 4 ° C ulaştığında, tüpleri kaldırmak ve ikinci kol cDNA'yı sentezlemek için hemen devam.
  2. İkinci kol cDNA sentez
    1. Kapağın 16 ° C'ye kadar ön ısıtma termal döngü, 30 ° C'ye kadar ön-ısıtılır. Çözülme ikinci sarmal ana karışımı ve buz üzerinde yeniden süspansiyon tamponu. Öncesinde, 4 ° C ila paramanyetik boncuk şişe kaldırmak ve oda sıcaklığına getirmek için en az 30 dakika bekletin.
    2. Her bir PCR tüpü yeniden süspansiyon tamponu 5 ul ekle. 600 Santrifüj ikinci iplik master miks5 saniye g × ve her bir PCR tüpü 20 ul ekle. 1 saat boyunca 16 ° C'de önceden ısıtılmış termal döngüleyici içinde yer borular. İnkübasyon tamamlandıktan sonra, termal döngü kaldırmak ve tüpler oda sıcaklığına gelmesi için izin verir.
    3. Vortex paramanyetik boncuklar onlar iyi dağılmış kadar. Her tüpe iyi karıştırılmış paramanyetik taneler 90 ul ekle. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x karıştırın. 15 dakika oda sıcaklığında inkübe edin. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında, manyetik ayağa Tüpler.
    4. Çıkarın ve süpernatant 135 ul atmak ardından EtOH yıkama gerçekleştirmek için manyetik stand tüpler bırakın. boncuk bozmadan 200 ul taze her tüpe,% 80 EtOH hazırlanabilir ekleme, daha sonra, 30 saniye boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Çıkarın ve her bir alınan süpernatan her atın. İki% 80 EtOH yıkar toplam tekrarlayın.
    5. 10 dk manyetik stand üzerinde kurumasına - 5 için tüpler oda sıcaklığında bekletin. çözülmüş oda sıcaklık santrifüj5 saniye boyunca 600 × g e tabanda tampon. Manyetik stand PCR tüpleri çıkarın. Her PCR tüp 17.5 ul tabanda tampon ekleyin ve hafifçe iyice karıştırın için yukarı ve aşağı 10x tüm birimi pipetle. Oda sıcaklığında 2 dakika süreyle inkübe edin.
    6. 5 dakika boyunca oda sıcaklığında, manyetik stand Tüpler daha sonra, 0.2 ml PCR şerit tüplerine 15 ul süpernatant (çift sarmal cDNA'ya) aktarın.
      NOT: Bu cDNA, 7 güne kadar -20 ° C'de muhafaza edilebilir güvenli durdurma noktasıdır.

3. kütüphane hazırlanması

  1. Adenilat 3 'Sona Erdi
    1. Oda sıcaklığında, -20 ° C ve çözülme A-tailing karışımı çıkarın. Ön programı aşağıdaki ayarlarla termal döngü cihazı: Ön ısıtma kapağı seçeneğini ve 100 ° C olarak ayarlanır, daha sonra 5 dakika boyunca, 30 dakika boyunca 37 ° C, 70 ° C 'ye ayarlanmış ve 4 ° C'de tutun. Bu programı kaydet "ATAIL70."
    2. tabanda 2,5 ul ekleyinHer tüpe tampon. Sonra çözülmüş A-atık karışımı 12.5 ul ekleyin. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x iyice karıştırın. termal döngü tüpleri yerleştirin ve ATAIL70 seçin. termal döngü cihazı sıcaklığı 4 ° C'de olduğunda, termal döngü PCR tüpleri kaldırmak ve adaptörleri Arter hemen geçin.
  2. Arter Adaptörler
    1. Uygun RNA adaptörü tüpleri çıkarın -20 ° C ile ligasyon tampon ve yeniden süspansiyon haline getirme tamponu durdurmak ve oda sıcaklığında erimeye. protokolde böyle bir talimat kadar -20 ° C den Bağlama karışımı tüpünü çıkarmayın. 4 ° C ila paramanyetik boncuk şişe çıkarın ve en az 30 dakika oda sıcaklığına getirmek için bekletin.
    2. 30 ° C termal döngü önceden ısıtınız ve ön ısıtma kapak seçeneği ve 100 ° C'ye ayarlanmış seçin. Santrifüj 5 saniye boyunca 600 x g'de çözülmüş RNA adaptör tüpleri. Kullanımdan hemen önce, -20 ° C den Bağlama karışımı tüp kaldırmakdepolama.
    3. Her bir numune, bir tüpe yeniden süspansiyon tamponu 2.5 ul ekle. Ligasyon karışımı 2.5 ul ekle. Bağlama karışımı tüp kullanımdan hemen sonra -20 ° C depolama dönün. Her örnek tüpüne çözülmüş RNA adaptör endeksi 2.5 ul ekleyin. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x iyice karıştırın.
    4. 6.0 x g sabit hız mini masaüstü santrifüj kullanılarak 4 saniye boyunca santrifüj tüplerine. Önceden ısıtılmış termal döngüleyici içinde yer borular. Kapağı kapatın ve 10 dakika boyunca 30 ° C'de inkübe edin.
    5. termal döngü tüpleri çıkarın ve ligasyon inaktive etmek her tüpe durdurma ligasyon tamponu 5 ul ekle. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x iyice karıştırın.
    6. Karışık paramanyetik boncuk 42 ul kullanarak ve 79.5 ul süpernatant atarak, 2.2.4 - 2.2.3 de açıklandığı gibi yıkayın tekrarlayın. 10 dakika - manyetik stand tüpler, 5 oda sıcaklığında numuneler hava kurumaya bırakın.
    7. PCR şerit tüpleri çıkarınManyetik standı ve her tüpe 52.5 ul tabanda tampon ekleyin. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x iyice karıştırın. 2 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. 5 dakika boyunca ya da sıvı açıktır kadar oda sıcaklığında manyetik stand tüpler yerleştirin. Aktarım, yeni 0,2 mi PCR şerit tüplerine Her tüpten 50 ul. boncuk rahatsız etmemek için özen gösterin.
    8. Karışık paramanyetik boncuk 50 ul kullanılarak ve 95 ul süpernatant atarak, 2.2.4 - 2.2.3 de açıklandığı gibi yıkayın tekrarlayın. 10 dakika - manyetik stand tüpler, 5 için oda sıcaklığında numuneler hava kurumaya bırakın.
    9. manyetik stand PCR şerit tüpleri çıkarın ve her tüpe 22.5 ul tabanda tampon ekleyin. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x iyice karıştırın.
    10. 2 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. 5 dakika boyunca ya da sıvı açıktır kadar oda sıcaklığında manyetik stand tüpler yerleştirin. Bir her tüpten ul transfer 20Yeni 0.2 ml PCR şerit tüp. boncuk rahatsız etmemek için özen gösterin. Bu güvenli bir durdurma noktasıdır ve cDNA 7 güne kadar -20 ° C'de muhafaza edilebilir.

4. Kütüphane Büyütme

  1. DNA fragmanları ettirecek
    1. Oda sıcaklığında -20 ° C depolama ve çözülme PCR ana karışımı, PCR primer kokteyl ve tabanda tamponu çıkarın. 4 ° C depolama paramanyetik boncuk şişe çıkarın ve en az 30 dakika oda sıcaklığına getirmek için bekletin.
    2. Ön programı aşağıdaki ayarlarla termal döngü cihazı: Ön ısıtma kapağı seçeneğini ve 100 ° C olarak ayarlanır, daha sonra 10 saniye, tavlama için 98 ° C 'de, 30 saniye boyunca 98 ° C' de denatürasyon, 15 çevrim ilk denatürasyon ayarlamak 30 saniye, 5 dakika boyunca 72 ° C'de bir son uzatma döngüsü ve 72 ° C 'de 30 saniye, ve uzatma, 60 ° C' de 4 ° C 'de sabit. Bu programı Kaydet "PCR."
    3. çözülmüş PCR Master santrifüj5 saniye boyunca 600 x g'de tüpler karıştırın ve PCR primerleri. Her bir numune, bir tüpe çözülmüş PCR primerleri 5 ul ekle. Her bir numune, bir tüpe çözülmüş PCR Master Mix 25 ul ekle. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x iyice karıştırın.
    4. Önceden programlanmış termal döngü şapkalı PCR şerit tüpleri yerleştirin. Kapağı kapatın ve PCR programı çalıştırın. PCR tamamlandığında, termal döngü tüpleri çıkarın ve buz üzerinde tutmak.
    5. Karışık paramanyetik boncuk 50 ul kullanılarak ve 95 ul süpernatant atarak, 2.2.4 - 2.2.3 de açıklandığı gibi yıkayın tekrarlayın. 10 dakika - manyetik stand tüpler, 5 oda sıcaklığında numuneler hava kurumaya bırakın.
    6. manyetik stand tüpleri çıkarın ve her bir örnek tüpüne 32.5 ul tabanda tampon ekleyin. Yavaşça tüm hacim yukarı pipet ve aşağı 10x iyice karıştırın. 2 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. 5 dakika boyunca ya da sıvı açıktır kadar oda sıcaklığında, manyetik ayağa PCR tüpleri yerleştirin. Daha sonra 30 ul su aktarmakTaze 0.2 ml PCR tüplerine pernatant.
    7. Bir flüorometre 7'yi kullanarak cDNA miktarının gerçekleştirin ve kapiler elektroforez sistemi 8 kullanarak cDNA kalitesini belirler.
      Not: Bu güvenli durdurma noktasıdır ve cDNA 7 güne kadar -20 ° C'de muhafaza edilebilir. Not: Bu kütüphane RNAseq kütüphanesi olarak kabul edilir.
      Daha sonraki adımlar Yakalama kütüphanesine yol açar.

5. Melezleme, Yakalama ve Sıralama

  1. çoklanmış Melezleme
    1. -20 ° C ile özel hidratlı probları, yatak-1 DNA, genel bloke oligos ve adaptöre özgü blokaj oligos kaldırma ve buz üzerinde eritin.
    2. Düşük bağlaması 1.5 ml tüp, 500 ng DNA birleştirmek (numune başına 125 ng zaman çoğullama 4 örnek), 5 ul Cot-1 DNA (1 mcg / ml), 1ul evrensel engelleme oligos, 0.5 ul p7 (6 nükleotid) özel adaptör oligos engelleme (bu tutar multipleks conditi bağlı olarak ayarlanabilir gerekebilirons) ve 0.5 ul P7 (8 nükleotid) adaptöre özgü blokaj oligos (bu miktar) çoklu koşullara bağlı olarak ayarlanması gerekebilir.
    3. Dönme ters yöne bakacak kapak açıkken bir vakum konsantratör örnek tüp yerleştirin. 20 dakika boyunca 45 ° C'de veya sıvı buharlaşana kadar kuru içeriği.
    4. 8.5 ul 2x hibritleme tamponu, 3.4 ul hibridizasyon bileşen A ve 1.1 ul nükleaz içermeyen su ile kurutuldu içeriği yeniden süspanse edin. tabanda ve vorteks her 2.5 dakika için 10 dakika bekleyin. 0.2 mi PCR tüpü yeniden süspansiyon haline malzemesini transferi ve bir termal döngü, 10 dakika boyunca 95 ° C'de inkübe edin.
    5. termal döngü hibridizasyon örnek tüp çıkarın ve 1.5 pmol / ul konsantrasyonda yeniden süspansiyon haline getirildi, özel prob 2 ul ekle. Seçenek olarak ise, 0.75 pmol / ul konsantrasyonda yeniden süspansiyon haline getirildi, özel prob 4 ul ekle. 65 ° C sıcaklıkta - (24 saat 16), gece boyunca hibridizasyon reaksiyonu inkübe edin.
      NOT: ProbeÇeşitli Bayiler satın ler kullanılabilir ve üreticinin talimatlarına uyulmalıdır. hibridizasyon adımın süresi de değişebilir.
  2. Boncuk Hazırlama ve Yakalama
    1. 4 ° C ile streptavidin ile eşleştirilen paramanyetik tanelerin şişe çıkarın ve 30 dakika için oda sıcaklığında dengeye. 1x çalışma çözümleri oluşturmak için 10x Yıkama Tamponlar (I, II, III ve sıkı) ve 2.5x Boncuk Yıkama Tamponu seyreltiniz.
    2. Kısım I yeni bir 1.5 ml tüp içine 1x yıkama tamponu 140 ul. En az 2 saat süreyle bir ısı bloğu ısı, tüm 1x katı tampon miktarı ve 65 ° C'de 1x yıkama tamponu I kısım.
    3. Alikotu 1.5 ml tüp içine yakalama başına streptavidin ile eşleştirilen paramanyetik taneler 100 ul. mıknatıs üzerine yerleştirin ve supernatant atın. 10 saniye boyunca 200 ul boncuk yıkama 100 ul boncuk başına tampon ve vorteks ekleyin. 5 dakika ya da süpernatant netleşene kadar - 2 için mıknatıs üzerine yerleştirin. süpernatant temizlendikten sonra, atın ve yenidenİki yıkama toplam bir kez daha turba.
    4. Boncuk yıkama tamponu çıkarılmasından sonra, ilk başlangıç ​​hacmi olarak eşit hacimde kordon yıkama tamponu ilave (örneğin, tek bir yakalama 100 ul). Süspanse ve 0.2 ml PCR tüp transfer. 5 dakika ya da süpernatant netleşene kadar - 2 manyetik rafa tüp yerleştirin. Süpernatantı atın.
    5. 65 ° C 'de termal döngüleyici içinde hibridizasyon numunesi ve boncuk hem ile, boncuk tüp ve pipet hibridizasyon karışımı aktarın aşağı 10x karıştırın. 45 dakika, vorteks için 65 ° C'de inkübe ve sabit bir hızda (6.0 xg) masa üstü Mini santrifüj kullanılarak 4 saniye örnek aşağı doğru döndürün.
  3. Boncuk Yıkama
    1. termal döngü yakalama tüpünü çıkarın ve ben karıştırmak için 10 saniye boyunca tüp ve vorteks 100 ul önceden ısıtılmış 1x Yıkama Tamponu ekleyin. taze düşük bağlaması 1.5 ml tüp karışımı aktarın. Bir manyetik ayırma rafa tüp yerleştirin ve 2 izin - ayrılması için ya da süpernatant netleşene kadar 5 dk. Discard yüzer.
    2. 200 ul ısıtılmış 1x sıkı yıkama tamponu ekleyin ve karıştırın aşağı 10 kez yukarı pipet ve. 5 dakika boyunca 65 ° C sıcaklıkta inkübe edilir. Manyetik ayırma rafa tüp yerleştirin ve 2 izin - ayrılması için ya da süpernatant netleşene kadar 3 dk. Süpernatantı atın. İki yıkama toplam kez daha sıkı yıkama tekrarlayın.
    3. 200 ul oda sıcaklığında 1 x I ve vorteks 2 dakika karıştırmak için yıkama tamponu ilave edin. Manyetik ayırma rafa tüp yerleştirin ve 2 izin - süpernatant ayrılması için kadar veya 5 dk açıktır. Süpernatantı atın.
    4. 200 ul oda sıcaklığında 1 x karıştırmak için 1 dakika için tampon II ve vorteks yıkama ekleyin. Manyetik ayırma rafa tüp yerleştirin ve 2 izin - süpernatant ayrılması için kadar veya 5 dk açıktır. Süpernatantı atın.
    5. Ekle 200 ul oda sıcaklığında 1 x karıştırmak için 30 saniye için tampon III ve vorteks yıkayın. ayrılması için ya da süpernatant kadar 5 dakika - 2 izin manyetik ayırma rafa tüp yeritemiz. Süpernatantı atın.
    6. Manyetik ayırma raf tüpü çıkarın ve boncuklar tekrar süspansiyon 20 ul nükleaz içermeyen su ekleyin. yukarı pipetleme ve 10 kez aşağı iyice karıştırın.
  4. Mesaj Yakalama PCR Amplifikasyon
    1. 4 ° C paramanyetik taneler çıkarın ve 30 dakika için oda sıcaklığında dengeye.
    2. Oda sıcaklığında, -20 ° C ve çözülme sıcak PCR Hazır (2x) ve PCR primer karışımı çıkarın ve daha sonra buz üzerine yerleştirin. (Bu miktarlar 1 melezleme kütüphanesinde artı% 10 aşan içindir) PCR Primer 1 2.75 ul ve PCR primer 2 2.75 ul 2x sıcak başlangıç ​​PCR Hazır Mix 27.5 ul birleştirerek kütüphane amplifikasyon Master Mix hazırlayın.
    3. Ayar 20 boncuk ul artı 50 ul toplam hacim için kütüphane amplifikasyon ana karışımı 30 ul çekilen DNA ekleyerek PCR tüpü içinde reaksiyonu. Cap tüp düzgün ve vorteks karıştırın. Sabit hız mini sekmesini kullanarak 4 saniye boyunca santrifüj tüplerine6.0 x g le-üstü santrifüj.
      1. Aşağıdaki PCR programı kurun: - 65 ° C'de 15 saniye, tavlama için 98 ° C 'de denatürasyon için 12 döngü ön ısıtma kapağı seçeneğini ve 100 ° C olarak ayarlanır, daha sonra 45 saniye, 10, 98 ° C'de başlangıç ​​denatürasyon ayarlamak 60 saniye için 72 ° C 'de 30 saniye ve uzatma, bir son uzatma 60 saniye boyunca 72 ° C'de döngü ve 4 ° C de sabit ° C için.
    4. PCR numuneyi çıkarın ve 75 ul paramanyetik boncuk ekleyin. İyice karıştırın ve 15 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edilir.
    5. 2 oda sıcaklığında mıknatıs tüpler yerleştirin - 3 dakika sonra süpernatant kaldırmak. 30 saniye daha sonra süpernatant çıkarılması için inkübe, 200 ul% 80 etanol eklenerek mıknatıs boncuklar yıkayın. İki% 80 yıkar toplam tekrarlayın.
    6. 10 dakika boncuklar kuruması için 5 - oda sıcaklığında inkübe edin. bitmedi kuru çatlama yapmak. Süspanse boncuklar Tris-EDTA pH 8.0 (1X TE çözeltisi) 22 ul ve elüsyon için 3 dakika bekleyin. 5 dk th - 3 mıknatıs üzerinde örnek yerleştirintransferi herhangi bir boncuk sağlayan yeni bir düşük bağlama 1.5 ml tüp yıkanan ürün 20 ul, en fazla gerçekleştirilmektedir.
    7. Flüorometre 7 kullanılarak çekilen cDNA miktarının gerçekleştirin ve kapiler elektroforez sistemi 8 kullanılarak çekilen cDNA kalitesini belirler.
  5. Masaüstü Sequencer Yükleme İşlemi 9
    1. Buz üzerinde,% 0.1 Tween 20 çözülme 10 N NaOH ve hibridizasyon tamponu 10 mM Tris-CI pH 8.5 kullanılarak 4 nM'lik nihai bir konsantrasyona kadar ele cDNA kütüphanesi ile seyreltilir. RT suda masaüstü sequencer v2 reaktif kiti kutu 1 çözülme kullanımdan önce yaklaşık 30 dakika. MAX DOLUM HATTI 10 üzerinde doldurmayın. Bu bir sıralama platform belirli bir işlemdir ve üreticinin talimatlarına göre değişebilir unutmayın.
    2. mikrosantrifüj tüpüne (her zaman taze hazırlandı) 980 ul nükleaz içermeyen su ile 20 ul 10 N NaOH birleştirerek 0.2 N NaOH 1ml hazırlayın. 4 nM tarafından phix kitaplığı (kütüphane kontrol) seyreltin% 0.1 Tween 20, 3 ul 10 mM Tris-CI, pH 8.5, 10 nM kütüphanesi kontrol 2 ul birleştirilmesi.
    3. karıştırmak için kısa bir süre için 5 0.2 N NaOH ul ve vorteks ile 4nM kütüphanesinin 5 ul birleştirilerek nihai kütüphanesini ve kütüphane kontrol denatüre. 6.0 x g sabit hız mini masa üstü santrifüj kullanılarak 4 saniye boyunca santrifüj tüplerine. 5 dakika kitaplıkları denatüre etmek için, oda sıcaklığında inkübe edilir.
    4. Denatüre kütüphaneler 10 ul ihtiva eden tüplere önceden soğutulmuş hibridizasyon tamponu 990 ul ekle. Bu 20 pM kütüphane ile sonuçlanır. Mark tarih ile denatüre 20 pM kütüphane ve -20 ° C'de 3 haftaya kadar saklanabilir.
    5. Bir 12:05 kütüphane kontrol sonuçlanması önceden soğutulmuş hibridizasyon tamponu ve seyreltilmiş kütüphane kontrolü 225 ul 20 pM kütüphane kontrol 375 ul karıştırın. çözüm karıştırmak için birkaç kez ters çevirin.
    6. 12:05 denatüre kütüphane kontrol ve karıştırmak için girdap 6 ul denatüre nihai kütüphane 594 ul birleştirin. Kombine samp ayarlale kütüphane ve bir kenara buz üzerinde kütüphane kontrol numuneleri masaüstü sequencer reaktif kartuşu içine yüklemek için hazır olana kadar.

6. Veri Analizi

  1. Sıra Kalite Değerlendirmesi
    1. Dizi kalite değerlendirme 11 kullanılarak ham dizi verilerine (fastq dosyaları) kalitesini hesaplayın.
      Not: Bu adım, daha aşağıda analizine tabi önce verilerin değerlendirilmesi için yardımcı olur. Yazılım dahili parametreleri ile çalışır ve her fastq dosyası için metrik bir dizi üretir.
  2. hiza
    1. Hizala dizisi GTF dosyası olarak bilinen transkript sağlarken referans İnsan genom hg19 ve transcriptome Tophat2 12 kullanarak (fastq dosyaları) (sürüm 2.0.10) okur. çıkış BAM dosyası olarak adlandırılan bir ikili hizalama biçiminin biçimindedir.
    2. Sıralama ve Samtools 13 (sürüm 0.1.19 kullanarak endeksleme dahil post işleme adımları uygulayın) BAM dosyası. , SAM yeniden sıralama, işaretleme yinelenen gerçekleştirmek boyut hesaplama ve Picard araçları 14 (sürüm 1.84) kullanarak ekleme veya değiştirme okuma grupları yerleştirin.
  3. RNAseq Kalite Değerlendirmesi
    1. RNAseq kalite değerlendirme kullanarak RNAseq veriler için kalite kontrol metrik bir dizi hesaplayınız. Bu yazılıma giriş Tophat2 uyum bir BAM dosya 15'dir. Çıkış diğerleri arasında, vb yüzdesi ve rRNA yüzdesi, okumak haritalanmıştır toplam okuma sayısı, çiftleri, listeleyen bir HTML dosyasıdır.
  4. varyant Arama
    1. Hizalama YILDIZ (sürüm 2.4.0) 16 kullanın ve daha sonra tek nükleotid çağrı varyantları bayrak GATK en (Sürüm 3,3-0) HaplotypeCaller 17 .Follow GATK BAM post-processing adımları ve filtreleme kriterlerini kullanarak ve çıkışı yanlış pozitif kaldırın.
  5. Gen ifadesi
    1. gen ekspresyon USI hesaplayınSmokin paketi 18 den ng Kol Düğmeleri yazılım (sürüm 2.1.1).
      NOT: Giriş Tophat2 hizalama aracı bir BAM dosyasıdır. çıkış sentezleme (okur eşlenen milyon başına kilobaz başına fragmanları) FPKM olarak hesaplanır izoformu geni ve transkript seviyesinde, üretilir.
  6. Füzyon Arama
    1. ChimeraScan 19 (sürüm 0.4.5), Tophat Fusion 20 özel ve Trup 21 kullanılarak her numuneden füzyonları arayın. Oncofuse 22 (sürüm 1.0.9b2) kullanarak alanlar için füzyonları açıklama.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

RNAseq Yakalama şematik bir vurgulama temel adım, Şekil 1 'de gösterilmektedir. Bilinen mutasyonlar ile dört kanseri hücre RNAseq yakalama tekniği etkinliğini göstermek için kullanılmıştır (K562 ABL1 füzyon RET füzyon LC2 ile EOL1 PDGFRalpha füzyon ve oranda RT- ile 4 FGFR3 füzyon). Dört numune bir araya toplanmış ve 100 bp fastq dosyaları oluşturan bir masaüstü sıralayıcı, okur 2x ile sekanslandı. İnsan transcriptome 1) kalite kontrol değerlendirme, 2) hizalama, 3) gen ekspresyonu miktar, 4) füzyon arama, ve 5) varyantı arama: fastq dosyaları beş ana bileşenleri içeren bir RNAseq analizi boru hattı aracılığıyla çalıştırılmıştır. Hizalama dosyası (BAM) tek nükleotid varyantları çağrı ve gen ekspresyonu hesaplamak için kullanılır. Füzyonlar (kendi uyum performans) bu tür TopHat Fusion gibi füzyon arayanlar kullanılarak denir ve çıkış usin açıklamalıg füzyon algılama yazılımı.

Gen RNAseq ekspresyon ve yakalama karşılaştırması 10 hedeflediği transkript zenginleştirme gösterir yakalama yöntemi (Şekil 2A) ile 1000 kat. RNAseq göre yakalama kullanarak hedeflenen transkript bölgelere haritalama okur Ayrıca, Şekil 2B yüzde bir artış göstermektedir. Kalite kontrol önlemleri değerlendirilmesi Şekil 3'te temsil edilir. Yakalama ve RNAseq transcriptome (3A,% 94 vs% 93) ile uyum açısından eşit performans ve insert boyutu (3B, 174 bp vs 162 bp) anlamına gelir. Yakalama yöntemi kullanılarak, egzonik bölgelerde daha yüksek bir yüzdesi dizilir (3C,% 77 genel% 60), ve bunun tersine intronik bölgeler daha düşük bir yüzdede dizilir (3D, 4 ve% 20%). Numune başına toplam okuma sayıları 3E tasvir edilmektedir (3F,% 4% 15) ile karşılaştırıldığında yakalama yöntemi kullanılarak daha düşüktü.

Tablo 1 'de gösterilen füzyon algılama çıkış normalize füzyon okur destekleyen oluşturulur. RNAseq dört hücre hatları için füzyonları tespit edebilmiştir çeker. Yakalama ve RNAseq bölgelerinde üst üste olarak adlandırılan tek nükleotid varyantları karşılaştırılması Şekil 4'te görüntülenir. Bu hedef bölgede yakalama ve RNAseq arasındaki varyantları yüksek uyumu göstermektedir.

Şekil 1
Şekil 1. Şematik RNAseq Yakalama Adımlar. Bu deneysel gösteri, RNA ilk DEPLE olduğunuTers transkriptaz kullanılarak kimyasal parçalanma ve tamamlayıcı DNA (cDNA) sentezi, ardından ribozomal RNA ted. Daha sonra, cDNA, poliadenile ve kütüphane oluşturmak için platforma özel bağdaştırıcılar için her iki ucunda bağlandı. Uygun adaptörler ile sadece cDNA kütüphaneleri sonra PCR ile amplifiye edilir. Kütüphaneler sonra özel oligonükleotid problar melezleşmiştir ve manyetik boncuklar kullanılarak yakalanır. Yakalanan Kütüphanenin bu küçük bir miktar yeni nesil dizilemesi için yeterli için bir kez büyütülmüş gerekir. Çoklu diziler daha sonra paralel dizilenebilmektedir. Ardışık verileri, gen füzyonları, ifade ya da mutasyonlar gibi ilgi RNA olaylar için analiz edilir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

şekil 2
Şekil 2. CRNAseq. A, ile ölçülen dört kanser hücre hatları K562, LC2, EOL1 ve RT-4 yakalama ve RNAseq arasındaki gen ifadesi karşılaştırma karşı Capture Hedeflenen Genlerin omparison eşlenen milyon okur (FPKM) (ölçek Log) başına kilobaz başına okur. Ilgi Hedeflenen genler hedefli olmayan genler (gri). B, hedeflenen bölgeye haritalama dört kanser hücre hatlarında RNAseq kütüphanelerinde karşı Capture artar okuma yüzdesi karşılaştırıldığında (mavi) zenginleştirilmiştir. Tıklayınız daha büyük bir versiyonunu görmek için bu figür.

Şekil 3,
Dört Temsilcisi Kanseri Hücre Hatlarında RNAseq karşı Capture. A, Yüzdesi transcriptome haritalama okur Sıralama Metrik Şekil 3., C, yüzdesi egzonik bölgelerinde okur. D yüzdesi intronik bölgelerinde okur. E, toplam sıralama. F, ribozomal RNA haritalama okur yüzdesi okur. Bir görmek için buraya tıklayınız Bu rakamın daha büyük bir versiyonu.

Hücre çizgisi Füzyon Kütüphane Türü Toplam okur Hedef okur üzerinde Destekleyici Normalize Fusion okur (NFSR)
TophatFusion ChimeraScan TRUP
K562 BCR-ABL RNAseq 150.300.482 279.438 0 438 0
Ele geçirmek 9.341.148 7.566.087 598 343 0
LC2 CCDC6-Ret RNAseq 128.861.790 307.566 0 97 0
Ele geçirmek 12.320.692 10.314.284 71 44 6
EOL1 FIP1L1-PDGFRA RNAseq 135.321.406 225.222 0 0 170
Ele geçirmek 9.317.418 7.680.818 143 0 7
RT4 FGFR3 -TACC3 RNAseq 161.350.024 208.741 0 131 469
Ele geçirmek 8.305.950 6.563.574 358 88 34

K562, LC2, EOL1 ve RT-4 RNAseq karşı Capture Tablo 1. Fusion Algılama. Bu tablo, bu gösteride kullanılan dört kanser hücre hatları ve üç farklı füzyon algılama algoritmaları, TopHat2, ChimeraScan ve Trup görüntüler. Bu tablo fazla 60 milyon RNAseq için kullanılan okuma karşılaştırıldığında okur az 10 milyon toplam kullanarak Yakalama füzyonları tespit kabiliyetini gösterir. kinaz okur tarafından Fusion destekleyen füzyon bölünmesiyle hesaplandı okur destekleyen bir milyon ile çarpılır, okur.

</ Html"Şekil 4" src = "/ files / ftp_upload / 54090 / 54090fig4.jpg" />
RNAseq karşı Yakalama çağrısında Şekil 4. SNV. Bunlar Venn diyagramları dört hücre hatlarının her biri için yakalama ve RNAseq tarafından tespit edildi Tek Nükleotid Varyantı (SNVs) sayısını gösterir (K562, LC2, EOL1 ve RT-4). Bu yüksek hedefli bölgedeki yakalama ve RNAseq arasında SNVs uyumlarını göstermektedir. K562 (% 81.3), LC2 (% 78.3), EOL1 (% 89.5) ve RT-4 (% 73.9) daha büyük bir versiyonunu görmek için buraya tıklayınız bu figür.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

RNAseq Yakalama RNAseq ve mikroarray arasında bir ara stratejisi transcriptome bir bölümüne değerlendirmek için yaklaşımlarının. Yakalama avantajları genomik değişikliklerin bir masaüstü sequencer, yüksek verimlilik ve algılama maliyeti, hızlı gerçekleştirme süresi azaltılmış sayılabilir. Yöntem olup, kodlayıcı olmayan RNA'lar 23 karakterize tek bir nükleotidi tespit etmek için adapte edilebilir RNA bağlama incelemek ve genin füzyon ya da yapısal yeniden 24 tanımlamak için, 4-6 varyantları. Dahası, bu yaklaşım parafin bloklar 24,25 formalin ile tespit uğramıştır ve gömülü klinik veya işlenmiş numunelerin uygulanabilir.

mikroarray ile karşılaştırıldığında RNAseq yakalama birkaç önemli avantajı vardır, gerçek zamanlı kantitatif PCR, Sanger sekanslama ve DNA dizi analizi. Mikrodizi nedeniyle çapraz hibridizasyonu ve probların spesifik olmayan yüksek bir arka plan ile sınırlıdır. l genlerin miktarının belirlenmesiyüksek ifade gen ölçümleri sinyal doygunluk 1 etkilenen ise akım ifadesi, arka plan gürültü nedeniyle sınırlıdır. RNAseq yakalama ile karşılaştırıldığında, gerçek zamanlı PCR ile yeniden oluşturma zor olmaktadır. Buna ek olarak, RNAseq yeni transkript tespiti sağlar, daha az başlangıç ​​giriş malzeme gerektirmekte ve Sanger sekanslama alternatif birleştirme 26 .in kontrast algılayabilir, RNAseq daha yüksek verim ve düşük ifade miRNA'nın analizi sağlar. Sanger dizileme ancak yeni füzyonlar tanımlanması önsel aday kesme gereklerine tarafından engellenmektedir bilinen ekson-ekson kavşaklar ve somatik DNA mutasyonlarının ile füzyonlar doğrulanması için değerli bir araç olduğunu kanıtlamıştır. maliyet etkin olmayan DNA dizi analizi, veri daha büyük depolama alanı gerektirir ve transkripsiyon sonrası modifikasyonlar algılama yeteneğinde değildir.

RNAseq Capture yer alan birçok kritik adımlar vardır. İlk olarak, kütüphane ürünlerinin verimini iyileştirmek içinyıkama sırasında RNA / cDNA özel paramanyetik boncuk ve paramanyetik boncuklar, üzerinde verim kaybına yol açacaktır boncuk, kuru değil dikkatli olun. Ayrıca, do not altında kurumaya cDNA verimi azaltabilir etanol gibi, tüm etanol numune tüpleri kaldırılır emin olun, boncuk. İkinci olarak, tamamlayıcı probların cDNA kütüphanelerinin hibridizasyon Biz önceden en az iki saat boyunca 65 ° C'ye kadar ısınmaya Yıkama Tampon I ve sıkı Tamponu tavsiye tutarlı sıcaklığına bağlıdır. Bundan başka, hibridizasyon sonra bağlama ve yıkama adımları sırasında 65 ° C'ye korumak için esastır. Burada kullanılan problar kinazlar, örneğin transkripsiyon faktörleri ve ev tutarak genler gibi sık yeniden düzenlemeleri ilgili genler de dahil olmak üzere, ilaç geliştirme için ilgili genlerin ekson için dizayn edilmiştir. Ayrıca, gen içeriği özelleştirilebilir ve yakalama panel boyutları değişebilir. genomik bölgelere yeni bilgiler ortaya gibi başka, ek sondalar tasarlandı ve t eklenebilirO yakalama panelini mevcut.

hizalama metrik değerlendirilmesi, özellikle üzerinde hedefe oranı, hedeflenen bölge zenginleştirilmiş ne kadar iyi bilgi sağlar. Düşük üzerinde hedefe oranı istenen hedef bölge yakalanır ve zenginleştirilmiş değildi sayede başarısız melezleme ve yakalama, bağlı olabilir. Bu durumda, bir kütüphane kümesinin bir yeniden hibridizasyon ve yakalama gerçekleştirilmelidir. Düşük üzerinde hedefe oranı nedeniyle de örneklerde rRNA yüzdesi hesaplanarak teyit edilebilir rRNA tüketmek yetmezliği, olabilir. numune içinde yüksek rRNA yüzdesi rRNA tükenmesi ile başlayan numunenin yeniden hazırlanmasını gerektirir. Kütüphane konsantrasyon hibridizasyon ve yakalama gereksinimleri altına düşerse Ayrıca, örnek türüne ve kalitesine (: 50-1,000 ng aralığı) için başlangıç ​​girdi miktarını optimize etmek yerinde olacaktır.

Hedeflenen RNAseq uygulamaları için çeşitli avantajları olmakla birlikte, aynı zamanda sınırlamalar vardırdüşünmek. fakir RNA RIN dayalı kalite veya parçalanma derecesi ile numuneler sıralama için kaliteli kütüphaneleri verim olmayabilir. Çeşitli gruplar formalin sabit parafine gömülü örnekleri ile başarı göstermiştir, ancak sıralama 24,25,27 için geçmek olmaz örnekleri bulunmaktadır. RNAseq Yakalama bilinen transkript üzerinde duruluyor beri Dahası, bu roman veya Açıklama içermeyen transkript için tarafsız RNAseq faydalarını kaybeder. Buna ek olarak, SNP tespiti için, RNAseq yöntemler sadece eksprese olan transkriptlere mutasyonlar tespit edebilir.

RNAseq Yakalama gelecekteki fırsatlar araştırma ve klinik uygulamaları içerir. Uzun kodlamayan RNA binlerce ve biyoloji rolleri son keşif odaklı karakterizasyonu gerektirir. kanser, enfeksiyon hastalıkları ve non-invazif test olarak insan hastalığı karakterize etmek klinikte, RNAseq Yakalama araştırma testleri ötesine geçebilir ve klinik deneyleri çevirmek. Genomik dizi arayışlara ile birlikteches, RNAseq Yakalama çalışma ve ifade genom karakterize etmek için entegre edilebilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Thermomixer R Eppendorf 21516-166
Centrifuge 5417R Eppendorf 5417R
miRNeasy Mini Kit Qiagen 217004
Molecular Biology Grade Ethanol Sigma Aldrich E7023-6X500ML
Thermoblock 24 x 1.5 ml Eppendorf 21516-166
MiSeq Reagent Kit v2 (300-cycles) Illumina MS-102-2002
MiSeq Desktop Sequencer Illumina
PhiX Control v3 Illumina FC-110-3001
TruSeq Stranded Total RNA Kit with RiboZero Gold SetA Illumina RS-122-2301
25 rxn xGen® Universal Blocking Oligo - TS-p5 IDT 127040822
25 rxn xGen® Universal Blocking Oligo - TS-p7(6nt) IDT 127040823
25 rxn xGen® Universal Blocking Oligo - TS-p7(8nt) IDT 127040824
Agencourt® AMPure® XP - PCR Purification beads  Beckman-Coulter A63880
Dynabeads® M-270 Streptavidin Life Technologies 65305
COT Human DNA, Fluorometric Grade, 1 mg Roche Applied Science 05480647001
Qubit® Assay Tubes  Life Technologies Q32856
Qubit® dsDNA HS Assay Kit Life Technologies Q32851
SeqCap® EZ Hybridization and Wash Kits  (24 or 96 reactions) Roche NimbleGen  05634261001 or 05634253001 
Qubit® 2.0 Fluorometer  Life Technologies Q32866
10 x 2 ml IDTE pH 8.0 (1x TE Solution) IDT
Tween20 BioXtra Sigma P7949-500ML
Nuclease Free Water Life Technologies AM9937
C1000 Touch™ Thermal Cycler with 96–Well Fast Rection Module Biorad 185-1196
SeqCap EZ Hybridization and Wash Kits Roche Applied Science 05634253001
SuperScript II Reverse Transcription 200 U/μl Life Technologies 18064-014
D1000 ScreenTape Agilent Technol. Inc. 5067-5582
Agencourt RNAClean XP - 40 ml Beckman Coulter Inc A63987
RNA ScreenTape Agilent Technol. Inc. 5067-5576
RNA ScreenTape Ladder Agilent Technol. Inc. 5067-5578
RNA ScreenTape Sample Buffer Agilent Technol. Inc. 5067-5577
Sodium Hydroxide Sigma 72068-100ML
DynaBeads MyOne Streptavidin T1 Life Technologies 65602
DYNAMAG -96 SIDE EACH Life Technologies 12331D
Chloroform Sigma C2432-1L
KAPA HotStart ReadyMix KAPA Biosystems KK2602
NanoDrop 2000 Spectrophotometer Thermo Scientific
My Block Mini Dry Bath Benchmark BSH200
D1000 Reagents Agilent Technol. Inc. 5067- 5583
Vacufuge Plus Eppendorf 022829861 

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nat Rev Genet. 10, 57-63 (2009).
  2. Mercer, T. R., et al. Targeted sequencing for gene discovery and quantification using RNA CaptureSeq. Nat Protoc. 9, 989-1009 (2014).
  3. Maher, C. A., et al. Chimeric transcript discovery by paired-end transcriptome sequencing. Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 12353-12358 (2009).
  4. Piskol, R., Ramaswami, G., Li, J. B. Reliable identification of genomic variants from RNA-seq data. Am J Hum Genet. 93, 641-651 (2013).
  5. Quinn, E. M., et al. Development of strategies for SNP detection in RNA-seq data: application to lymphoblastoid cell lines and evaluation using 1000 Genomes data. PLoS One. 8, e58815 (2013).
  6. Tang, X., et al. The eSNV-detect: a computational system to identify expressed single nucleotide variants from transcriptome sequencing data. Nucleic Acids Res. 42, e172 (2014).
  7. Invitrogen. Qubit dsDNA HS Assay Kit Manual. Available from: http://www.science.smith.edu/cmbs/documents/QubitdsDNAHSAssay.pdf (2010).
  8. Agilent. Agilent D1000 ScreenTape System Quick Guide. Available from: http://www.agilent.com/cs/library/usermanuals/Public/G2964-90032_ScreenTape_D1000_QG.pdf (2013).
  9. Illumina. Preparing Libraries for Sequencing on the MiSeq®. Available from: https://support.illumina.com/content/dam/illumina-support/documents/documentation/system_documentation/miseq/preparing-libraries-for-sequencing-on-miseq-15039740-d.pdf (2013).
  10. Illumina. MiSeq® Reagent Kit v2 Reagen Preparation Guide. Available from: https://support.illumina.com/downloads/miseq_reagent_kit_reagent_preparation_guide.html (2012).
  11. Andrews, S. FastQC. Available from: http://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc/ (2015).
  12. Kim, D., et al. TopHat2: accurate alignment of transcriptomes in the presence of insertions, deletions and gene fusions. Genome Biol. 14, R36 (2013).
  13. Li, H., et al. The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics. 25, 2078-2079 (2009).
  14. Broad Institute. Picard. Available from: http://picard.sourceforge.net/ (2014).
  15. DeLuca, D. S., et al. RNA-SeQC: RNA-seq metrics for quality control and process optimization. Bioinformatics. 28, 1530-1532 (2012).
  16. Dobin, A., et al. STAR: ultrafast universal RNA-seq aligner. Bioinformatics. 29, 15-21 (2013).
  17. Van der Auwera, G. A., et al. From FastQ data to high confidence variant calls: the Genome Analysis Toolkit best practices pipeline. Curr Protoc Bioinformatics. 11, 11.10.1-11.10.33 (2013).
  18. Trapnell, C., et al. Transcript assembly and quantification by RNA-Seq reveals unannotated transcripts and isoform switching during cell differentiation. Nat Biotechnol. 28, 511-515 (2010).
  19. Iyer, M. K., Chinnaiyan, A. M., Maher, C. A. ChimeraScan: a tool for identifying chimeric transcription in sequencing data. Bioinformatics. 27, 2903-2904 (2011).
  20. Kim, D., Salzberg, S. L. TopHat-Fusion: an algorithm for discovery of novel fusion transcripts. Genome Biol. 12, R72 (2011).
  21. Fernandez-Cuesta, L., et al. Identification of novel fusion genes in lung cancer using breakpoint assembly of transcriptome sequencing data. Genome Biol. 16, 7 (2015).
  22. Shugay, M., Ortiz de Mendibil,, Vizmanos, I., L, J., Novo, F. J. Oncofuse: a computational framework for the prediction of the oncogenic potential of gene fusions. Bioinformatics. 29, 2539-2546 (2013).
  23. Clark, M. B., et al. Quantitative gene profiling of long noncoding RNAs with targeted RNA sequencing. Nat Methods. 12, 339-342 (2015).
  24. Cieslik, M., et al. The use of exome capture RNA-seq for highly degraded RNA with application to clinical cancer sequencing. Genome Res. (2015).
  25. Cabanski, C. R., et al. cDNA hybrid capture improves transcriptome analysis on low-input and archived samples. J Mol Diagn. 16, 440-451 (2014).
  26. Costa, C., Gimenez-Capitan, A., Karachaliou, N., Rosell, R. Comprehensive molecular screening: from the RT-PCR to the RNA-seq. Transl Lung Cancer Res. 2, 87-91 (2013).
  27. Zhao, W., et al. Comparison of RNA-Seq by poly (A) capture, ribosomal RNA depletion, and DNA microarray for expression profiling. BMC Genomics. 15, 419 (2014).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics