Rat ve Rabbit anevrizma modellerinde anevrizma perfüzyon ve ebeveyn arter patensinin değerlendirilmesi için floresan anjiyografi

Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Foscein bazlı floresan video anjiyografi (FVA) kullanılarak, sıçan ve tavşanlarda yan duvar anevrizmasının anevrizma perfüzyon ve damar patinliğini verimli bir şekilde değerlendirmek için bir protokol sunuyoruz. % 92,6 pozitif tahmini değeri ile, özel bir ekipman gerektirmez basit ama çok etkili ve ekonomik bir yöntemdir.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Strange, F., Sivanrupan, S., Gruter, B. E., Rey, J., Taeschler, D., Fandino, J., Marbacher, S. Fluorescence Angiography for Evaluation of Aneurysm Perfusion and Parent Artery Patency in Rat and Rabbit Aneurysm Models. J. Vis. Exp. (149), e59782, doi:10.3791/59782 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Beyin anevrizması tedavisi tam tıkanıklık elde odaklanarak, yanı sıra ana arter kan akışını korumak. Floresan sodyum ve indokyanin yeşil sırasıyla kan akımı ve damar perfüzyon durumunun gözlem sağlamak için kullanılır. Bu çalışmanın amacı, tavşan ve fareler içinde yan duvar anevrizmalarının indüksiyonu sonrasında gerçek zamanlı kan akışını, damar perfüzyon durumunu ve anevrizmaların tıkanmasını doğrulamak ve bu türlerin prosedürünü doğrulamak için FVA uygulanmadır.

20 yan duvar anevrizması, bir donör tavşanın karotis arter üzerinde deselülarize arter damar torbası sütür tarafından 10 tavşan oluşturuldu. Ayrıca 48 fareler içinde 48 mikrocerrahi yan duvar anevrizması oluşturuldu. Yaratılışın ardından bir ay içinde takip sırasında, üst arter/anevrizma kompleksi disseke ve FVA bir intravenöz floresan kullanılarak yapılmıştır (10%, 1 ml) tavşanlar bir kulak ven kateterizasyon ile enjeksiyon ve fareler femoral ven kateterizasyon Laboratuan. Anevrizmalar daha sonra hasat edildi, ve patkans makroskopik olarak değerlendirildi.

Makroskopik olarak, 14 ' ü tavşanlar içinde 16 anevrizma tamamen okcluded luminae ile hiçbir kalıntı ebeveyn arter perfüzyon gösterdi, ancak 11 (79%) FVA tarafından tespit edildi. Teknik sorunlar nedeniyle dört anevrizma dışlandı. Sıçanlarda, 48 olguda 25 ' in altında kalan anevrizma perfüzyon makroskopik olarak görülür. 23 ' ün makroskopik perfüzyon kanıtı olmadan, FVA 22 anevrizmanın (% 96) insidansı doğruladı. FVA ile ilişkili hiçbir olumsuz olay yoktu. Fluorcein kolayca uygulanabilir ve özel bir ekipman gerekmez. Tavşan ve fareler ile deneysel bir ortamda ebeveyn arter bütünlüğü ve anevrizma patens/kalıntı perfüzyon değerlendirmek için güvenli ve son derece etkili bir yöntemdir. Bir kontrast maddesi olarak floresan kullanılarak FVA, anevrizmaların ve altta yatan geminin patilliğini kontrol etmek için etkili görünüyor ve hatta atıcılık ameliyatına adapte edilebilir.

Introduction

Anevrizma cerrahisinde tam anevrizma obliterasyon ve ebeveyn arter bütünlüğünü kanıtlar son derece önemlidir. Doppler sonografi, konvansiyonel serebral anjiyografi (DSA), bilgisayarlı tomografi anjiyografi (CTA) veya manyetik rezonans anjiyografi (MRA)1 gibi üst arter patensinin ve anevrizma oklüzyonu onaylamak için çeşitli seçenekler vardır. 2. ancak, bu genellikle bir laboratuar ayarı mevcut değildir pahalı ve zaman alıcı yöntemlerdir. Ayrıca, onlar radyasyon pozlama veya hareket artefact önlemek için deneysel hayvanların ek sedasyon için ihtiyaç gibi ilgili yan etkileri olabilir.

Artan sayıda yeni endovasküler cihaz ortaya çıktığı için, bu tür cihazların preklinik testleri için ardışık bir ihtiyaç vardır. Ancak, bu çalışmalar genellikle otopsi sonrası analizine (örn. makro patoloji ve histoloji) ve dinamik perfüzyon hakkında bilgi eksikliğine güveniyor. Ayrıca, araştırmacı için deneysel bir cerrahi prosedür sırasında acil ve güvenilir bilgiler elde etmek için çok önemli olabilir. Floresan anjiyografi uygun maliyetli ve kolay görselleştirme tekniği1,3,4.

Bu nedenle, İndosiyanin Yeşil (ICG) video anjiyografi genellikle klinik Nöroşirürji prosedürlerinde kullanılır ve yaygın olarak5,6incelenmiştir. Floresan video anjiyografi (FVA) alternatif bir tekniktir, insan vizyonu dalga boyu aralığında bir floresan sinyal oluşturma ek avantajı ile, ve böylece uzun spektrum kızılötesi kamera olmadan çıplak gözle görülebilir 7. florürin video anjiyografi daha az sıklıkta klinik serebrovasküler cerrahide kullanılır ve deneysel ayarlarda FVA raporlarında düşük1,4.

Bu raporun amacı, sıçan ve tavşan preklinik serebrovasküler araştırmalarda FVA uygulamalarının fizibilitesini ve kapsamını göstermektir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Kemirgenler bir hayvan bakım tesisinde yer aldı ve deneyler inceledi ve Bern, Isviçre Üniversitesi 'nde hayvan refahı Komitesi tarafından onaylanmış (BE 108/16) ve (BE65/16). Tüm hayvanlar, gıda ve suya ücretsiz erişim ile standart bir laboratuar diyetinde tutulur. Tüm hayvan deneyleri 3Rs (yedek, azaltma ve arıtma) dikkatli dikkate alınarak yapılmıştır. On kadın Yeni Zelanda beyaz tavşan ve 48 erkek Wistar fareler dahil edildi. ULAŞMAK kuralları kesinlikle8izledi.

Not: yirmi yan duvar anevrizması, bir donör tavşanın karotis arter üzerinde deselülarize arteriyel damar torbası sütür tarafından 10 tavşan oluşturuldu. Buna ek olarak, 48 mikrocerrahi yan duvar anevrizmaları4,9önce açıklandığı gibi 48 sıçan oluşturuldu. Anevrizma yaratılmasından 4 hafta sonra görüntüleme prosedürü ve makroskopik analiz yapıldı.

1. floresan video anjiyografi için gerekli malzemenin hazırlanması

  1. Mavi bant geçiren filtresinin üzerine bantlayarak el feneri değiştirin ( malzeme tablosunabakın), bir uyarma filtresi olarak işlev göreceksiniz. Meşale daha sonra sadece mavi ışık yaymalıdır. Filtrelenmemiş ışık sızıntısını önlemek için siyah bandı kullanın.
  2. Kamera (örneğin, mikroskop bağlı) yeşil bant geçiren filtresi ile donatın ( malzeme tablosunabakın), bir emisyon ışık filtresi olarak işlev göreceksiniz. Sadece yeşil ışık şimdi geçmesi mümkün olmalıdır.

2. İşyeri ve malzemelerin hazırlanması

  1. Dezenfektan çözeltisi ile çalışma alanını dezenfekte edin.
  2. Kontaminasyonu önlemek için masayı steril drapeler ile koruyun.
  3. Cerrahi için steril aletler kullanın.

3. ameliyat için hayvanların hazırlanması

  1. Hayvanları tartın.
  2. Anestezisi teşvik etmek ve dozu ağırlığa göre ayarlayın.
    1. Tavşaniçin, dengeli anestezi başlayın. Onların korku reaksiyonu azaltmak için enjeksiyon sırasında bir elle gözlerini Shield. Hayvanları sakinleştirici yardımcı olmak için bir levha ile kafes kapak.
    2. Enjeksiyon öncesinde% 4 isofluran ve% 96 oksijen içeren bir gaz odasındaki fareler anestezi.
  3. Anestezinin derinliğini izleyin. Hayvanların uyurken emin olmak için ayak parmakları arasında çimdik.
    1. Tavşanları sırtlarına yeniden konumlandırın. Tepki vermemelidir.
    2. Fareleriçin, kuyruklarını çimdik ve hiçbir reaksiyon gözlendiğinden emin olun.
  4. Kuruluğu önlemek için kemirgenler gözleri üzerinde merhem uygulayın. Yutulması olasılığını önlemek için rats ' dilleri dışarı çekin.
  5. Anestezinin korunması ile başlayın.
    1. Tavşan, kateterize (enjeksiyon portu Ile 22 G korumalı IV kateter, malzeme tablosunabakın) kulak ven için. Dengeli anestezinin bakımını yapın. Birden fazla eşzamanlı enjeksiyonları etkinleştirmek için üç yönlü stopkoku kullanın.
    2. Fareleriçin, enjekte 50 mg/kg ketamin hidroklorür ve 0,5 mg/kg agonistler hidroklorür intraperitoneally. Cerrahi sırasında zehirli bir ayak tutam ile anestezinin izlenmesi. Reaksiyon durumunda, ek anestezik yönetin.
  6. Hayvanları bir supin pozisyonunda tahta üzerine bantla ve kesi yerini yakından tıraş edin. Betaseptic ile bölgeyi dezenfekte edin.
    1. Tavşaniçin, özellikle steradidomastoid kas etrafında, boyun dezenfekte.
    2. Fareleriçin, mesane transvers kolon için alan dezenfekte.
  7. Cerrahi boyunca bir maske ile oksijen yönetmek ve bir Isıtma Pad ile vücut sıcaklığını korumak.

4. arter hazırlanması

  1. En iyi sonuçlar için, seçilen gemisi çevreleyen dokudan iyice incelemek9,10.
    1. Fareleriçin, tail ven (daha az invaziv, tercihen hayatta kalan hayvanlar için kullanılan) tanımlamak veya floresan enjeksiyon için bir femoral ven incelemek4,11.
      Not: tavşanlariçin, kulak ven anestezi için zaten kullanıldığı için, floresan enjeksiyon için damarların başka bir diseksiyonu gereklidir.
  2. Çevreleyen doku ile kontrastı artırmak için seçilen gemi altında beyaz bir Pad konumlandırın.
  3. Kamera, disseke arter üzerinde mikroskop monte odaklama.

5. floresan video anjiyografi

  1. Floresan sodyum (100 mg/mL, malzeme tablosunabakın) ile dolu 5 ml şırınga kapak ışık pozlama korumak için alüminyum folyo ile. Işıkları kapatın (mümkün olduğunca) ve foscein sodyum intravenöz enjekte. Fotoobleaching önlemek için karanlığa enjekte.
    1. Tavşaniçin, üç-yönlü-stopcock kateterize kulak ven içine ml/kg floresan sodyum 0,3 enjekte.
    2. Fareleriçin, bir kateter veya 25 G iğne ile femoral ven Içine 0,4 ml/kg florcein sodyum enjekte.
  2. Tüm boya enjekte edilmesini sağlamak için iğne veya kateter 0,5 mL tuz çözeltisi ile yıkayın.
  3. Modifiye edilmiş el feneri ile cerrahi alanı aydınlatın.
  4. Modifiye kamera ile filme başlayın. Enjeksiyonu yaptıktan birkaç saniye sonra kan akışı görülebilir (Şekil 1).
    Not: burada, biz kare hızı kullanılan = 50 kare/s, odak uzaklığı = 70 mm, ve F 3.4.

6. makroskopik analiz

  1. Anevrizma ve ebeveyn arter kompleksi RESECT ve makroskopik mikro-makas ile ana arter açarak ve üst arter ve anerysm 's orifis lümeni değerlendirmek tarafından makro kapsamları değerlendirmek (bkz. Şekil 1, 2)9. Anevrizmaların boyutlarını ölçün. Anevrizma-ebeveyn-arter-kompleksi daha sonra analiz için saklanabilir (örneğin, Histoloji).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Cerrahi sırasında kalp atışı ve kan basıncı izleniyor. Ortalama kalp hızı tavşanlara 193/dk, fareler içinde 196/dak idi. Tavşanların vücut ağırlığı 3,05-4.18 kg olarak değişmektedir ve fareler 335-690 g tarttı.

Biz on tavşandan sekiz dışarı FVA gerçekleştirmek başardık (Şekil 1). İki tavşandan dört anevrizma sınavı teknik zorluklar nedeniyle kamera ile kaydedilmedi. Sıçanlarda FVA ile ilgili teknik zorluklar bildirilmiştir. Ancak, FVA femoral ven delik zorlukları nedeniyle bir sıçan gerçekleştirilemedi.

Sekiz tavşan içinde 16 anevrizma, iki anevrizma üst arter kalıcı perfüzyon gösterdi (makroskopik olarak teyit) ( Tablo 1) FVA kalıntı perfüzyon ile beş olgu tespit ederken. 14 tavşan anevrizması makroskopik olarak hiçbir kalıntı perfüzyon gösterdi, ancak 11 (% 79) daha sonra FVA kullanılarak tespit edildi. 48 sıçan (Tablo 1) ' de makroskopik olarak kalan perfüzyon gözlenen ve diğer 23 sıçan, hiçbir makro kalıntı perfüzyon belirtisi göstermemiştir (Şekil 2). Bu 23 anevrizmaların 22 ' si FVA (% 96) kullanılarak onaylandı. Toplamda, 27 olgu 25% 92,6 pozitif tahmin değeri,% 100 duyarlılık oranı ve% 94,1 özgüllüğü ile sonuçlanan teyit edilebilir. (Tablo 2).

Özetle, 25 anevrizma kalıntı perfüzyon gösterdi, 53 ana arterlerin patent ve 11 makroskopik olarak teyit ve video anjiyografi olarak okcluded edildi. Sadece tavşanlar FVA ile ilişkili küçük komplikasyonlar vardı; kateterizasyon sırasında marjinal kulak ven perforasyonu gibi. Başka hiçbir olumsuz olay yaşanmıştır. Hiçbir mortalite ve FVA nedeniyle hiçbir morbidite bildirilmiştir.

Figure 1
Şekil 1 : Bir tavşan içinde açıklık görselleştirilmesi. (A) üst arter açıklığı floresan görüntü üzerinde açıkça görülebilir (floresan yeşil emisyon görülür). (B) Bu arter okcluded (floresans görüntü). Her iki arterlerin makroskopik (C-D) denetlenmiştir. Panel (C) A panelinden arter gösterir; Lumen açıktır. Panel (D), oklüzyonun makroskopik olarak görüleceği B panelinden arter gösterir. Turuncu noktalı çizgiler üst arter sınırlarını işaret. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.

Figure 2
Şekil 2 : Bir sıçan içinde perfüzyon görselleştirilmesi. (A) Bu panel, daha mükemmelleşmiş bir anevrizma (kırmızı noktalı çizgi, kalıntı perfüzyon işaretleri) gösterir. (B) perfüzyon algılanamaz. Panel (C) makroskopik İnceleme sırasında panelden arter gösterir; anevrizma orifis açıktır. (D) neointima 'nın okcluded anevrizma üzerinde makroskopik görünümü. Turuncu noktalı çizgiler üst arter ve anevrizma ' kubbe işareti. Paneller (A) ve (B) floresans sadece görüntüler ve yeşil renk floresan emisyonu gösterir. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.

Patency/kalıntı perfüzyon
Makroskopik + Macroscopical- Florcein + Floresein
Tavşan 2 14 5 11
Sıçan 23 25 22 21
Toplam 25 39 27 32

Tablo 1: Patency testi. Üst arter patency sadece tavşan test edildi ve burada gösterilmiştir. Florcein, makroskopik değerlendirmede daha fazla üst arterlerin daha fazla olduğunu algıladı. (Bu ortamda tüm fareler açık bir üst arter vardı, anevrizma abdominal aort üzerinde sübe edildi gibi.) Anevrizmaların açıklığı sadece farelerde test edildi. Yirmi iki, makroskopik olarak algılanan patlıklar FVA kullanılarak doğrulandı. 25 ' inden yirmi biri FVA 'da hiçbir patens göstermedi.

Makroskopik pozitif Makroskopik negatif Toplam
Floresan pozitif 25 2 27
Floresan negatif 0 32 32
Toplam 25 34

Tablo 2: FVA 'nın özgüllüğü ve hassasiyetini hesaplamak için kullanılan Iki-iki tablo.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

FVA kemirgenler gemiler incelemek için umut verici ve karmaşık olmayan bir yöntemdir ve ticari cihazlar ve off-the-raf ekipmanları ile gerçekleştirilebilir. FVA, damarların doğru diseksiyona ihtiyacı olduğu için damar bütünlüğünü intraoperatif değerlendirmede gerekli olan herhangi bir cerrahi sırasında uygulanabilir.

Yazarlar, enfeksiyon, iskemi ve bölme sendromu gibi yanlışlıkla yaşanan olayların düşük riski nedeniyle arter enjeksiyonu için venöz enjeksiyon tercih12. İntravenöz enjeksiyon güvenilir, yüzeysel olarak sınırlı, son derece konsantre boyama sağlar ve küçük boya dozlarda gerektirir13,14. Ayrıca, venöz enjeksiyon fluorcein hızlı bir boşluk sağlar14,15. Alternatif bir yöntem, doğrudan seçilen arter kontrast aracı enjekte etmektir. Bu yöntem, araştırmacılar cerrahi alanı kan ve florürle kirletmesini önlemek istediği için bu deneylerde kullanılmadı. Bu riski azaltmak için periferik venöz kontrast maddesi enjeksiyon13önerilir.

FVA 'nın avantajları yüksek kontrast (insan gözü ile kolayca algılanabilir), yukarıda gösterildiği gibi yüksek hassasiyet (Tablo 2), düşük maliyetli ve kolay kullanım16. Florcein sodyum perfüzyon incelemek için seçilen kontrast ajan oldu. Tek başına görülebilir ışık, tipik yeşil ışığın boya ve emisyonunun uyarılması için kullanılabilir. Bununla birlikte, bu kontrast aracı en iyi mavi ışık ile çalışır (yaklaşık 480 Nm) ve güçlü bir yeşil ışık yayar (dalga boyu yaklaşık 530 nm)15. Yoshioka ve Al göre., floresan renkler arter son derece hızlı14. Ayrıca, florcein zenginleştirilmiş kanın akışı gerçek zamanlı olarak görülebilir15,17. FVA için gereken kısa süre başka bir avantaj sunar; Bu seride bir FVA yürütmek için Ortalama 2 dk (± 1dk) aldı.

Bir kontrast aracı olarak floresan kullanmanın dezavantajı çok dikkatli diseksiyon talep sadece ince arter duvarları ile iyi çalışır olmasıdır. Ichikawa ve ark. kalsifikasyon veya undissected arterlerin tarafından kalın duvarlar aracılığıyla ışığın kesilmemiş emisyonu nedeniyle boya tükenmesi gösterdi15. Enjeksiyondan sonra, floresan, karaciğerde floresan florürin glukuronide metabolize edilir. Enjeksiyondan sonra 30 dakika içinde, florürin glukuronidin konsantrasyonu fluorcein konsantrasyonu aşıyor18. Florcein uzun bir boşluk süresi gerektirir. Arter ve anevrizma zaten ilk enjeksiyon17flüoresan olduğu gibi floresan İntravenöz enjeksiyon sonra hemen bir REENJEKSİYON tavsiye edilmez.

Floresan molekül ağırlığı sadece 376, boya kaçağı sağlayan kDa 'dir. Vasküler duvar aynı zamanda sahte pozitif akış değerlendirmelerini (uygulamadan sonra zaman artan) yol açabilir floresan olur. Yaklaşık 5 dakika sonra floresan enjeksiyon14, damar duvarının bir yamalı renklendirmesi gözlemlenmiştir. Ancak, leke renklendirmesi, sadece büyük arterlerde gözlenmiştir. Küçük ve orta arterlerde bu boyama yapısı17göstermiyor. Kalıntı doldurma tespit etmek için hemen anevrizma değerlendirmek için tavsiye edilir.

Çok düşük bir toksisite riski olmasına rağmen, kalp ve solunum reaksiyonlarına yol açan bazı floresan durumlarda14tanımlanmıştır. Bu çalışmada ciddi bir olumsuz olay meydana gelmedi; tek komplikasyonlar kulak ven perforasyonu 2 olgu idi. Lane ve ark. ' a göre, sodyum florcein insanlar17' de kullanıldığında bile zararlı değildir. Öte yandan, florcein oldukça kararsız ve beyaz ışığa maruz kalmamalıdır16 -kırmızı ışık kaynağı yerine kullanılabilir.

Tavşan için floresan konsantrasyonu seçmek için, müfettişlerin fareler en düşük bilinen çalışma dozu ile başladı (0,2 mL 100 mg/mL florcein sodyum) ve kademeli olarak artmıştır 1 mL. Bu dozda güçlü bir floresan sinyali kaydedildi. Floresan artar-hangi durumda değildi test etmek için doz kademeli olarak arttı. Yazarlar 1 mL ile devam etmeye karar verdi 100 mg/mL florcein sodyum13.

İntraoperatif damarları incelemek için kullanılabilen başka bir boya da ıCG 'dir. Boyutu 775 kDa ve böyle zar zor çevreleyen dokular14nüfuz eder. Daha uzun emisyon dalga boyu nedeniyle, doku daha kolay nüfuz edilir, çünkü dokular 800 Nm19 ve daha derin yapılarda daha saydam olarak görülebilir14,16. 750-800 Nm içinde uyarma dalga boyu gerekli olan16,20 ve kontrast Ajan emisyon dalga boyu yaklaşık 800 Nm16, hem de insan gözü görünmez hale. Kan plazmasındaki kısa yarı ömrü nedeniyle boya enjekte edilebilir ve tekrar tekrar16. Bu boya kullanarak sınırlamalar kalın duvarlı arterlerin20 ve görünür spektrum dışında ışık gereksinimi olan sorunları içerir13. Sonuç olarak, ıCG pahalı ekipmanlara bağlıdır ve her laboratuvarda kolayca uygulanabilir değildir.

Sonuç olarak, FVA, kemirgen anevrizma modellerinde anevrizmaların ve ebeveyn arterlerinin ekrana yüksek hassasiyetle hızlı, ucuz ve güvenilir bir yöntemdir. Neredeyse hiçbir morbidite ve mortalite ile ilişkilidir. Cerrahi ve takip sırasında gerçek zamanlı kan akışının izlenmesi sağlar. Etkinliğini artırmak için, enjeksiyon karanlıkta yapılmalıdır ve en iyi titizlikle disseke damarlarda gerçekleştirilir. Bu yöntem, bir serebrovasküler laboratuvarda kolayca ve güvenli bir şekilde uygulanabilir ve deneme maliyetlerini en aza indirebilirsiniz.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Tüm yazarlar herhangi bir ilgi çakışması teyit.

Acknowledgments

Bu çalışma, kısmen Isviçre Kantonsspital Aarau 'dan yapılan bir araştırma hibe tarafından desteklenmektedir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
For rabbits
Aluminium foil
Animal shaver
Black tape
Blue filter Thorlabs MF475-35
Body warm plate
Camera Sony NEX-5R
Catheter 22G Vasofix Safety
Disinfictant
Fluorescein sodium Fluorescein Faure 10%
Glas plate
Green filter Thorlabs MF539-43
Incontinence pad
Infusion pump Perfusor Secura
Ketamine hydrochloride any generic products
Needle 25G
Oxygen
Ringer's Solution
Sterile sheets
Surgical instruments micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor
Surgical microscope OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany
Syringe 2ml, 5ml, 50ml
Tape
Three-way-stopcock
Torch light
Xylazin any generic products
For rats
Aluminium foil
Animal shaver
Black tape
Blue filter Thorlabs MF475-35
Body warm plate
Camera Sony NEX-5R
Disinfictant
Fluorescein sodium Fluorescein Faure 10%
Green filter Thorlabs MF539-43
Incontinence pad
Isoflurane
Ketamine hydrochloride any generic products
Medetomidine hydrochloride any generic products
Needle 25G
Oxygen
Plate
Ringer's Solution
Sterile sheets
Surgical instruments micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor
Surgical microscope OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany
Syringe 2ml, 5ml
Tape
Torch light

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kakucs, C., Florian, I. A., Ungureanu, G., Florian, I. S. Fluorescein Angiography in Intracranial Aneurysm Surgery: A Helpful Method to Evaluate the Security of Clipping and Observe Blood Flow. World Neurosurgery. 105, 406-411 (2017).
  2. Ajiboye, N., Chalouhi, N., Starke, R. M., Zanaty, M., Bell, R. Unruptured Cerebral Aneurysms: Evaluation and Management. ScientificWorldJournal. 2015, 954954 (2015).
  3. Suzuki, K., et al. Confirmation of blood flow in perforating arteries using fluorescein cerebral angiography during aneurysm surgery. Journal of Neurosurgery. 107, (1), 68-73 (2007).
  4. Gruter, B. E., et al. Fluorescence Video Angiography for Evaluation of Dynamic Perfusion Status in an Aneurysm Preclinical Experimental Setting. Operative Neurosurgery. Hagerstown. (2019).
  5. Raabe, A., et al. Prospective evaluation of surgical microscope-integrated intraoperative near-infrared indocyanine green videoangiography during aneurysm surgery. Journal of Neurosurgery. 103, (6), 982-989 (2005).
  6. Riva, M., Amin-Hanjani, S., Giussani, C., De Witte, O., Bruneau, M. Indocyanine Green Videoangiography in Aneurysm Surgery: Systematic Review and Meta-Analysis. Neurosurgery. (2017).
  7. Kuroda, K., et al. Intra-arterial injection fluorescein videoangiography in aneurysm surgery. Neurosurgery. 72, 2 Suppl Operative 141-150 (2013).
  8. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving Bioscience Research Reporting: The ARRIVE Guidelines for Reporting Animal Research. PLOS Biology. 8, (6), 1000412 (2010).
  9. Marbacher, S., et al. The Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model. Journal of Visualized Experiments. (92), e51071 (2014).
  10. Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. American Journal of Neuroradiology. 32, (4), 772-777 (2011).
  11. Shurey, S., et al. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Archives of Plastic Surgery. 41, (3), 201-208 (2014).
  12. Foster, S. D., Lyons, M. S., Runyan, C. M., Otten, E. J. A mimic of soft tissue infection: intra-arterial injection drug use producing hand swelling and digital ischemia. World Journal of Emergency Medicine. 6, (3), 233-236 (2015).
  13. Flower, R. W. Injection technique for indocyanine green and sodium fluorescein dye angiography of the eye. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 12, (12), 881-895 (1973).
  14. Yoshioka, H., et al. Advantage of microscope integrated for both indocyanine green and fluorescein videoangiography on aneurysmal surgery: case report. Neurologia medico-chirurgica (Tokyo). 54, (3), 192-195 (2014).
  15. Ichikawa, T., et al. Development of and Clinical Experience with a Simple Device for Performing Intraoperative Fluorescein Fluorescence Cerebral Angiography: Technical Notes. Neurologia medico-chirurgica. 56, (3), 141-149 (2016).
  16. Alander, J. T., et al. A review of indocyanine green fluorescent imaging in surgery. International Journal of Biomedical Imaging. 2012, 940585 (2012).
  17. Lane, B., Bohnstedt, B. N., Cohen-Gadol, A. A. A prospective comparative study of microscope-integrated intraoperative fluorescein and indocyanine videoangiography for clip ligation of complex cerebral aneurysms. Journal of Neurosurgery. 122, (3), 618-626 (2015).
  18. Blair, N. P., Evans, M. A., Lesar, T. S., Zeimer, R. C. Fluorescein and fluorescein glucuronide pharmacokinetics after intravenous injection. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 27, (7), 1107-1114 (1986).
  19. Hillmann, D., et al. In vivo optical imaging of physiological responses to photostimulation in human photoreceptors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113, (46), 13138-13143 (2016).
  20. Golby, A. J. Image-Guided Neurosurgery. Elsevier Science. (2015).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics