دراسة ديناميات التصاق الخلوي وانتشار الخلايا الظهاريه علي الفيبرونكتين اثناء الاكسده

Biochemistry

Your institution must subscribe to JoVE's Biochemistry section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

هذا الأسلوب مفيد لتحديد الديناميكيات المبكرة للتصاق الخلوية وانتشار الخلايا التي تعتمد علي المرسي علي الفيبرونكتين. وعلاوة علي ذلك ، يمكن استخدام هذا الفحص للتحقيق في اثار تغيير الاكسده والاختزال علي الخلية المنتشرة و/أو الخلايا المرتبطة بالتصاق الخلية مسارات الإشارات داخل الخلايا.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Tolbert, C. E., Palmquist, L., Dixon, H. L., Srougi, M. C. Examining the Dynamics of Cellular Adhesion and Spreading of Epithelial Cells on Fibronectin During Oxidative Stress. J. Vis. Exp. (152), e59989, doi:10.3791/59989 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

التصاق وانتشار الخلايا علي مصفوفة خارج الخلية (ECM) هي العمليات الخلوية الاساسيه خلال التنمية الاسطحه والتوازن للانسجه الكبار. ومن المثير للاهتمام, الاكسده يمكن ان يغير هذه العمليات, التالي المساهمة في الفيزيولوجيا المرضية للامراض مثل السرطان المنتشر. ولذلك ، فهم اليه (ق) من كيفيه إرفاق الخلايا وانتشارها علي ECM خلال الاضطرابات في حاله الاكسده والاختزال يمكن ان توفر نظره ثاقبه في الدول العادية والامراض. وصفها أدناه هو بروتوكول خطوه الحكيمة التي تستخدم الفحص القائم علي المناعي لتحديد كميه التصاق الخلية ونشر الخلايا الليفية خلدت علي الفيبرونكتين (FN) في المختبر. لفتره وجيزة ، يتم عقد الخلايا التي تعتمد علي المرسي في التعليق وتتعرض لمثبطات الصراف الألى كيناز Ku55933 للحث علي الاكسده. ثم يتم طلاء الخلايا علي سطح مطلي بالFN ويسمح لها بالإرفاق لفترات زمنيه محدده مسبقا. والخلايا التي تبقي مرفقه ثابته وموسومة بعلامات الأجسام المضادة المستندة إلى الفلورية للتصاق (مثلا ، باكيلين) والانتشار (مثلا ، F-actin). ويجري الحصول علي البيانات وتحليلها باستخدام معدات مختبريه متاحه عاده ، بما في ذلك المجهر الكتابي وبرمجيات فيجي المتاحة بحريه. هذا الاجراء هو تنوعا للغاية ويمكن تعديلها لمجموعه متنوعة من خطوط الخلايا, البروتينات ECM, أو مثبطات من أجل دراسة مجموعه واسعه من المسائل البيولوجية.

Introduction

التصاقات مصفوفة الخلية (اي التصاقات البؤرية) هي مركبات البروتين الجزيئية الكبيرة والديناميكية التي تتوسط التصاق الخلايا وتنتشر. هذه العمليات هي حاسمه لتطوير الانسجه ، والصيانة ، والوظائف الفسيولوجية. وتتالف التصاقات البؤرية من مستقبلات مرتبطة بالغشاء ، مثل التكاملات ، فضلا عن البروتينات السقالات التي تربط الخلايا الدهنية الخلوية بالمصفوفة الخارجة عن الخلية (ECM)1. هذه المجمعات قادره علي الاستجابة للإشارات الفيزيائية الموجودة في البيئة خارج الخلية من خلال تفعيل مختلف الإشارات محولات المسارات. علي هذا النحو ، التصاقات البؤرية بمثابه مراكز الإشارات لنشر العظة الميكانيكية خارج الخلية في عدد من العمليات الخلوية بما في ذلك الهجرة الموجهة ، وتنظيم دوره الخلية ، والتمايز ، والبقاء علي قيد الحياة1،2. مجموعه واحده من الجزيئات الإشارات التي تنظم وتتفاعل مع التصاقات البؤرية تشمل أعضاء عائله رو من GTPases الصغيرة. رو GTPases هي البروتينات الرئيسية التي تنظم هجره الخلايا وديناميات التصاق من خلال التنشيط المكاني المحدد3. ليس من المستغرب ، وقد تورط تقلبات وظيفة البروتين رو في عدد من الامراض البشرية مثل الانبثاث ، وتولد الاوعيه ، وغيرها. من المهم بشكل خاص ، حاله الاكسده الخلوية يلعب دورا مهيمنا في تشكيل هجره الخلايا والتصاق. التعديلات في التوازن الاكسده ، مثل الزيادات في أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) ، وقد ثبت لتنظيم النشاط رو البروتين ، فضلا عن التصاق ، في عدد من أنواع الخلايا والامراض البشرية4،5،6 و7و8. علي سبيل المثال ، الافراد الذين يعانون من الاضطراب العصبي ترنح-توسع الشعيرات (ا-T) ، والذي يسببه طفرة في إصلاح الضرر الحمض النووي سيرين/threonine كيناز A-T-تحور (ATM) ، لديها زيادة خطر الاصابه بالسرطان المنتشر9، 10-الآن فقدان النشاط الصراف الألى كيناز في هذه المرضي وخطوط الخلايا ، اما من خلال الطفرة الجينية أو تثبيط الكيميائية ، والنتائج في مستويات عاليه من الاكسده بسبب الخلل في المسار الفوسفات البنتوز7،11، 12-الآن وعلاوة علي ذلك ، سلطت الدراسات الاخيره من المختبر الضوء علي دور الفيزيولوجيا المرضية لروس في a-T عن طريق تغيير ديناميات خلوي (اي التصاق والانتشار) كنتيجة مباشره لتفعيل جي تي اس الاسره في المختبر5. في نهايةالمطاف ، هذه التعديلات في ديناميات خلوي الناجمة عن تنشيط الاسره رو قد يؤدي إلى زيادة خطر الاصابه بالسرطان المنتشر لاحظت في المرضي-T5،13. لذلك ، فهم التفاعل بين التفاعلات مصفوفة الخلية اثناء الاكسده يمكن ان توفر رؤى في تنظيم التصاق والانتشار. ويمكن لهذه الدراسات أيضا ان تمهد السبيل لمزيد من التحقيقات في دور محتمل لل GTPases الاسره رو في هذه العمليات الإشارات.

وصف هنا هو بروتوكول لدراسة ديناميات الخلوية في وقت مبكر من تجميع التصاق والانتشار اثناء الاكسده الناجمة عن تثبيط نشاط الصراف الألى كيناز. ويستند هذا الفحص علي اليه المميزة للتصاق الخلايا المعتمدة علي المرسي بالبروتين الفيبرونكتين (FN). عندما يتم طلاء الخلايا المحتفظ بها في نظام التعليق علي FN ، عده رو gtpases تنسيق السيطرة علي سيتوسيكيلتال أعاده عرض3،14. وتلاحظ التغييرات المورفولوجية كما تحول الخلايا من الجولة والتعميم في المظهر إلى الأرض وتوسيعها. بالتزامن مع هذه الملاحظات هو تطوير العديد من التصاقات مصفوفة مع ECM. نسبت هذا تغيرات إلى ال [بيهاسيك] تنشيط من [روا] مع Rac1 اثناء الساعة اولي بما ان خلايا يلتصق وينشر 15,16.

وقد استخدمت مجموعه متنوعة من الطرق لفحص الشكل والديناميكيات التصاق وكذلك انتشار الخلايا. ومع ذلك ، تعتمد هذه الطرق علي متطورة طويلة الأجل ، والتصوير الحي الكلي الانعكاس الداخلي الفلوري (TIRF) أو نظم المجهر البؤري. التالي ، يجب ان يحصل المستخدمون علي معدات وبرامج متخصصة. وعلاوة علي ذلك ، فان وقت الاعداد الذي تتطلبه أنظمه التصوير الحيوي هذا يجعل التقاط احداث التصاق المبكر تحديا ، خاصه عند اختبار مثبطات متعددة أو ظروف معالجه متزامنة.

الأساليب المفصلة ، هنا ، توفر طريقه واضحة واقتصاديه ولكن كميه لتقييم المعلمات التي تحكم تجميع التصاق والانتشار في المختبر. يتم تنفيذ البروتوكول باستخدام المعدات المختبرية المتاحة عاده ، مثل المجهر الكتابي وكاميرا CCD. يتضمن هذا الفحص تطبيق الخلايا المعتمدة علي المرسي علي سطح مطلي بالقوات الخاصة بعد فتره من الاكسده الناجمة عن التثبيط الكيميائي لنشاط الصراف الألى ، والذي تم إثباته في السابق5. بعد الطلاء ، ويسمح للخلايا لنعلق والتزام لفترات محدده من الزمن. يتم غسلها الخلايا غير المرفقة بعيدا ، في حين يتم إصلاح الخلايا المرفقة ووصفت مع الأجسام المضادة القائمة علي الفلورية لعلامات التصاق (علي سبيل المثال ، باكيلين) والانتشار (علي سبيل المثال ، F-actin)2،5. ثم يتم تصور هذه البروتينات وتسجيلها باستخدام المجهر الكتابي. ويجري تحليل البيانات اللاحقة باستخدام برامجيات فيجي المتاحة بحريه. وعلاوة علي ذلك ، يمكن تكييف هذه الطريقة لفحص ديناميات التصاق تحت مجموعه واسعه من الشروط بما في ذلك البروتينات المختلفة ECM ، والعلاج مع مختلف العوامل المؤكسدة/ثقافة الخلايا أو مجموعه متنوعة من خطوط الخلايا التي تعتمد علي مرسي لمعالجه مجموعه واسعه من المسائل البيولوجية.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1-الاعمال التحضيرية

ملاحظه: تم تحسين البروتوكول الموضح أدناه للاستخدام مع خلايا REF52 وأجهزه الصرافالألى +/+ أو atm-/- الورم الليفي البشري. أنواع الخلايا الأخرى قد تتطلب المزيد من التحسين كما هو موضح في الملاحظات واستكشاف الأخطاء وإصلاحها المقاطع أدناه.

  1. جعل 500 mL من خليه كامله ثقافة المتوسطة للخلايا REF52. إلى 500 مل من ارتفاع الجلوكوز التي تحتوي علي المتوسط النسر المعدلة دولبيكو (DMEM) أضافه 10 ٪ من الطراز الثاني ، 2 مم L-الجلوتامين ، و 100 وحده/مل البنسلين-ستربتوميسين.
  2. اعداد 25 ميكروغرام/مل محلول من الفيبرونكتين (FN) عن طريق أضافه 300 μL من 1 مغ/مل الحل FN إلى 12 مل من العقيمة 1x الفوسفات مخزنه المالحة (تلفزيوني) ، pH 7.4. اخلط جيدا.
  3. اعداد 0.5 ٪ (ث/ف) ديليبيداتيد (اي الأحماض الدهنية الحرة) المصل البقري الزلال (dlBSA) حل في مصل الدم الحرة DMEM الثقافة المتوسطة. أضافه 0.5 غرام من dlBSA إلى 100 مل من المصل المتوسطة الحرة DMEM. مزيج الحل جيدا ، ولكن لا دوامه. تصفيه معقمه الحل في حاويه معقمه جديده ، وذلك باستخدام فلتر حقنه 0.22 μM قبل الاستخدام. يخزن عند درجه حرارة 4 درجات مئوية.
  4. جعل 3.7 ٪ محلول بارافورمالدهيد بحل 3.7 غرام من بارافورمالدهيد في 100 mL من 1x تلفزيوني. استخدام الحرارة لطيف والتحريك للحصول علي بارافورمالدهيد في الحل.
    ملاحظه: الحل بارافورمالدهيد حساسة للضوء ويجب ان تكون محمية من الضوء. انها جيده لمده تصل إلى أسبوع واحد عند تخزينها في 4 درجه مئوية.
    تحذير: بارافورمالدهيد هو سام وقابل للاشتعال ومسبب للتاكل وخطر صحي. مراجعه ورقه بيانات سلامه المواد للبارافورمالدهيد قبل الاستخدام. استخدام معدات الحماية الشخصية المناسبة عند التعامل معها بما في ذلك درع العين ، درع الوجه ، كامل الوجه الجسيمات التنفس ، والقفازات ، ومعطف المختبر.
  5. اعداد حل التغلغل الذي يحتوي علي 0.2 ٪ غير الايونيه السطحي في 1x تلفزيوني (v/v). ل 100 mL ، أضافه ببطء 0.2 مل من تريتون X-100 إلى 100 مل من 1x تلفزيوني ، مع التحريك.
  6. جعل العازلة حجب المناعية التي تحتوي علي 2.5 ٪ بوسنيا ، 5 ٪ مصل الماعز ، و 0.05 ٪ غير الايونيه السطحي (ث/v/v) المذاب في 1x الحل تلفزيوني. ل 100 mL ، أضافه 5 مل من مصل الماعز ، 2.5 غرام من الجيش الصربي البوسني و 0.05 mL من تريتون X-100 في ~ 95 mL 1x تلفزيوني ، مع التحريك.
  7. تنمو الخلايا REF52 في DMEM كامله الثقافة المتوسطة في 10 سم2 (أو اي حجم السفينة الأخرى) خليه ثقافة معالجه الصفيحة في حاضنه ثقافة الخلية في 37 درجه مئوية و 5 ٪ CO2.

2. طلاء لوحات ثقافة الخلية مع الفيبرونكتين البروتين مصفوفة خارج الخلية

ملاحظه: تنفيذ هذا القسم باستخدام تقنيه العقيم والكواشف العقيمة في BSL-2 شهادة غطاء للتدفق الرقائقي. راجع الشكل 1A للحصول علي نظره عامه حول الخطوات الرئيسية قبل البدء.

  1. باستخدام ثقافة الانسجه المعتمدة 24 بئر لوحه ، ووضع واحد الزجاج المشبك (12-Cir-1) في كل بئر. تسميه لوحه وفقا لشكل 1b.
  2. ماصه 500 μL من 25 ميكروغرام/مل الحل FN لكل بئر من لوحه 24 بئر.
  3. ماصه المحلول علي كل كوفيرسليب بضع مرات لضمان طلاء حتى والغمر الكامل. ضع الغطاء مره أخرى علي اللوحة.
  4. احتضان لوحه في حاضنه ثقافة الخلية في 37 درجه مئوية و 5 ٪ CO2 لمده 1 ساعة.
    ملاحظه: بدلا من ذلك ، احتضان بين عشيه وضحيها في 4 درجه مئوية.
  5. بعد 1 ساعة ، وأزاله لوحه من الحاضنة ويستنشق حل الجبهة الكترونيه من الآبار.
  6. يغسل الآبار ثلاث مرات مع 500 μL من 1x تلفزيوني. يستنشق الغسيل النهائي من 1x تلفزيوني.
  7. كتله الآبار مع 500 μL من 0.5 ٪ من الحل dlBSA لمده لا تقل عن 15 دقيقه في 37 درجه مئوية و 5 ٪ CO2.
  8. يستنشق الحل dlBSA قبل الطلاء الخلايا في الخطوة 3 أدناه.
    ملاحظه: إذا تخزين لوحات ، أضافه 500 μl من 1x تلفزيوني لكل كوفيرسليب بعد التطلع للحل dlbsa. ويمكن بعد ذلك الاحتفاظ بالصفائح عند درجه حرارة 4 درجات مئوية لمده تصل إلى أسبوع واحد.

3-اعداد الخلايا المعتمدة علي الرسو لفحص التصاق

ملاحظه: تنفيذ هذا القسم باستخدام تقنيه العقيم والكواشف العقيمة في BSL-2 شهادة غطاء للتدفق الرقائقي.

  1. علي الأقل 30 دقيقه قبل الطلاء الخلية ، قبل الحارة الحلول التالية: DMEM كامله المتوسطة ، dlBSA الحل ، 1x تلفزيوني ، 0.5 ٪ التريبسين--أدتا الحل ، و تريبسين تحييد المصل (TNS) في 37 درجه مئوية حمام المياه.
  2. بدءا من متموج أحادي الطبقة من خلايا REF52 في صحن 10 سم2 ، وغسل الخلايا مرتين مع 6 مل من الدافئة 1X تلفزيوني. مصل تجويع الخلايا لمده 1 ساعة علي الأقل (اعتمادا علي نوع الخلية) في 6 مل من الحل dlBSA الدافئة في 37 درجه مئوية و 5 ٪ CO2.
  3. غسل الخلايا مع 6 مل من تحسنت 1x تلفزيوني ، يستنشق تلفزيوني وأضافه 1.5 mL من الحارة 0.5 ٪ التريبسين--أدتا الحل.
  4. مكان الخلايا في حاضنه ثقافة الخلية في 37 درجه مئوية و 5 ٪ CO2 ل ~ 2 دقيقه.
  5. راقب الخلايا تحت المجهر الضوئي لضمان اكتمال الانفصال. إذا كانت الخلايا لا تزال ملتصقة بعد التنصت علي لوحه علي اعلي مقاعد البدلاء ، والعودة إلى 37 درجه مئوية حاضنه لمده اضافيه 2 دقيقه. ترسينايز الخلايا لمده قليله كما هو ضروري.
  6. ماصه 1.5 mL من محلول التريبسين الدافئ تحييد (TNS) إلى الطبق لوقف التريسينزيشن وجمع الخلايا المنفصلة. ماصه الحل صعودا وهبوطا علي الجزء السفلي من لوحه مرات عديده لأزاله جميع الخلايا الملتصقة المتبقية. إذا ظهرت الخلايا بالتكتل ، فانها تزيد من التعليق الخلوي عن طريق التغليف اللطيف صعودا وهبوطا علي الجانب الخلفي من الطبق.
  7. عد الخلايا باستخدام الاستبعاد الأزرق التريبين ومقياس الكريات الدموية تحت المجهر الضوئي. بدلا من ذلك ، استخدم عداد الخلايا التلقائي.
  8. أزاله كميه مناسبه من الخلايا لإنشاء 1.0-3.0 x 104 خلايا/مل تعليق خليه في 5 مل من dlbsa في أنبوب مخروطي 15 مل.
  9. خلايا الطرد المركزي في ~ 300 x g ل 5 دقيقه باستخدام الدوار زاوية ثابته في جهاز الطرد المركزي الجدول الأعلى.
  10. يستنشق ماده طافي من بيليه الخلية ، وأعاده التعليق الخلايا في ما مجموعه 7 مل من الحل dlbsa الدافئة. لا تسمح للخلايا ان تكون مفرطة المتموج عند طلاء الشفاه ، ولكن توزيعها بالتساوي مع عدد قليل من الخلايا لمس بعضها البعض.
  11. يقسم بالتساوي تعليق الخلية إلى 2 15 mL أنابيب مخروطيه ، واحده للتحكم في السيارة وحدها (DMSO) واحد ل Ku55933 (ATM كيناز المثبط ، أكسده)5. ضمان كل أنبوب يحتوي 3.5 مل من تعليق الخلية.
  12. باستخدام أنبوب مدور ، تدور الأنابيب في 37 درجه مئوية ل 90-120 دقيقه في حاضنه ثقافة الخلية.
  13. 30 دقيقه قبل الطلاء ، أضافه تركيز نهائي من 10 μM Ku55933 و DMSO (1:1000) لكل أنبوب المعنية. وضع تعليق الخلية مره أخرى علي المدورة للوقت المتبقي.
  14. مباشره قبل طلاء الخلايا ، واسترداد لوحه 24 بئر من الحاضنة ويستنشق الحل dlBSA.
  15. بعد دائر تعليق الخلية لمده 90-120 دقيقه ، أزاله 500 μl من تعليق الخلية من كل مجموعه العلاج وأضافه إلى واحده الجبهة المغلفة الصلبة كوفيرسليب في لوحه 24 بئر من الخطوة 2 كما هو موضح (الشكل 1b). العودة لوحه إلى 37 درجه مئوية و 5 ٪ CO2 خليه ثقافة الحاضنة وتعليق الخلية مره أخرى إلى التناوب.
  16. بعد الطلاء تعليق الخلية علي الجبهة التي تغطيها-الشفتين ، والسماح للخلايا التمسك لطول المطلوب من الوقت (علي سبيل المثال ، 10 دقيقه ، 15 دقيقه ، 20 دقيقه ، 30 دقيقه) ومن ثم المضي قدما فورا إلى الخطوة 4.

4. تثبيت الخلية وتلطيخ الأجسام المضادة للمناعة

ملاحظه: يتم تنفيذ الخطوات التالية تحت ظروف غير معقمه وفي درجه حرارة الغرفة ما لم يذكر خلاف ذلك.

  1. بعد الوقت المطلوب للتصاق مرت ، يستنشق حل الخلية من كل كوفيرسليب في لوحه.
  2. باستخدام الجانبين من البئر ، والاستغناء بلطف 500 μl من 3.7 ٪ محلول بارافورمالدهيد علي كل كوفيرسليب والانتظار 10-15 دقيقه.
  3. أزاله محلول بارافورمالدهيد وغسل كل كوفيرسليب مع 500 μl من 1x تلفزيوني لما مجموعه مرتين.
    ملاحظه: التخلص من النفايات بارافورمالدهيد بمسؤوليه ، وفقا لخطه الصحة والسلامة البيئية للمؤسسة.
  4. يستنشق في الاذاعه التلفزيونية ، والخلايا تتخلل كل كوفيرسليب مع 500 μl من 0.2 ٪ تريتون X-100 في 1x تلفزيوني (v/v) ل 10-15 دقيقه في درجه حرارة الغرفة.
  5. غسل كل كوفيرسليب مع 500 μl من 1x تلفزيوني ثلاث مرات.
  6. كتله الخلايا علي كل كوفيرسليب مع 500 μl من حجب المناعي العازلة التي تحتوي علي 5 ٪ مصل الماعز ، 2.5 ٪ بوسني و 0.05 ٪ تريتون X-100 المذاب في 1 × حل تلفزيوني لمده 30-60 دقيقه.
  7. تمييع الأجسام المضادة لمكافحه باكسيلين الاساسيه (1:250) في المخزن المؤقت للحظر. اخلط جيدا وأضف 200 μL من محلول الأجسام المضادة إلى كل شفه. احتضان في درجه حرارة الغرفة لمده 1 ساعة علي الأقل.
    ملاحظه: بدلا من ذلك ، يمكن احتضان الحل المضاد الأساسي بين عشيه وضحيها في 4 درجه مئوية. هناك العديد من علامات التصاق البؤري المشتركة التي يمكن استخدامها لتلطيخ المجمعات التصاق وتحليل FA اللاحقة. وتشمل هذه الأجسام المضادة ضد البروتينات التالية: الوحدات الفرعية التكاملية (التي 1 ، α5 ، أو αv) ، talin ، أو فينكولين2.
  8. يستنشق حل الأضداد ، ويغسل كل كوفيرسليب مع 500 μl من 1x تلفزيوني ثلاث مرات لمده 10 دقيقه لكل منهما. حماية العينات من الضوء من هذه النقطة إلى الامام.
  9. تمييع phسبائك المسبار F-actin مترافق إلى الأحمر الفلورسنت اليكسا 594 صبغ (1:1000) والماعز مكافحه الماوس 488 الأجسام المضادة الثانوية الفلورسنت (1:400) في نفس الحل العازلة الحاجز. تخلط جيدا وأضافه 200 μl من محلول الأجسام المضادة لكل كوفيرسليب لمده 30 دقيقه.
    ملاحظه: يمكن استخدام الأجسام المضادة فلوريسسينتلي الثانوية المترافقة من الأنواع الأخرى أيضا. ومع ذلك ، فان استخدام الأجسام المضادة من الأنواع الأخرى يتطلب تعديل مصل الحاجز العازل.
  10. يستنشق حل الأضداد ، ويغسل كل كوفيرسليب مع 500 μl من 1x تلفزيوني ثلاث مرات لمده 10 دقيقه لكل منهما.
  11. يستنشق 1x تلفزيوني وشطف مره واحده مع 500 μL من dIH2O.
  12. جبل الشفتين علي الشرائح المجهر باستخدام مكافحه تتلاشي تصاعد المتوسطة التي تحتوي علي DAPI.
  13. ترك الشرائح المجهر لتعيين بين عشيه وضحيها في الظلام في درجه حرارة الغرفة.
  14. تخزين الشرائح المجهر في الظلام في 4 درجه مئوية للتخزين علي المدى الطويل وحتى التصوير.
    ملاحظه: الصورة باستخدام تقنيات المناعة القياسية. فمن المستحسن استخدام الغمر النفط عاليه الطاقة 60x عدسه الهدف لضمان دقه كافيه لملاحظه التصاقات البؤرية والكشكشة الطرفية في حواف الخلية. الحصول علي صور من الخلايا 20-30 في مجالات متعددة من الرؤية لكل كوفيرسليب تحت كل شرط العلاج والوقت. من الجمع بين النسخ المتماثلة ، وهذا ينبغي ان تسفر علي الأقل 60 خلايا من أجل اجراء التحليل الإحصائي. حفظ وتصدير الصور الفلورية باعتبارها. ملف TIFF مع الحد ادني من دقه 300 dpi.

5. القياس الكمي ألياف الإجهاد ، ودوران الخلية ، وتشكيل التصاق البؤري

ملاحظه: يتم تنفيذ تحليلات الصور التالية باستخدام أحدث إصدار من حزمه معالجه الصور المفتوحة المصدر فيجي هو مجرد صوره J (فيجي) ، والتي يمكن تحميلها مجانا في (http://fiji.sc/).

  1. معالجه الصور العامة
    ملاحظه: ستحتاج جميع الصور إلى ان تكون مستعدة للتحليلات الحسابية من خلال تنفيذ الخطوات 5.1.1-5.1.5 أدناه (الشكل 2). بعد ذلك ، قد يتم اختيار اي أو كل إجراءات التحديد الكمي اللاحقة.
    1. افتح الباب صوره مضانه TIFF باستخدام فيجي. تاكد من ان الصور هي 8 بت وتدرج الرمادي.
    2. حدد صوره-ضبط-نافذه/مستوي وحدد السيارات (الشكل 2a).
    3. حدد عمليه-طرح الخلفية لطرح مضان الخلفية. تحقق من انزلاق منحيات وحدد الخيار من دائره نصف قطرها الكره المتداول من 50 بكسل (الشكل 2b).
      ملاحظه: للتحقق من الحجم المناسب لدائره نصف قطرها الكره المتداول ، حدد أداه الخط ورسم دائره نصف قطرها علي أكبر التصاق في الصورة. حدد قياس للتحقق من طول الخط المرسوم. إذا كانت قيمه نصف القطر كبيره جدا ، سيتم فقدان الميزات بما في ذلك التصاقات في الصورة. إذا كان نصف قطرها صغير جدا ، فانه سيؤدي إلى ظهور القطع الاثريه في الصورة المعالجة بسبب الضوضاء في الخلفية.
    4. حدد صوره-ضبط-السطوع/التباين للتحقق من شده التصاق علي الخلفية. اضبط إذا لزم الأمر.
      ملاحظه: لتحسين السطوع/التباين وتجنب تشبع الاشاره ، استخدم أداه البحث الخاصة بالصورة لفحص الرسم البياني الخاص بها لضبط السطوع/التباين.
    5. حدد المعلمات التالية ضمن تحليل-تعيين القياسات: المنطقة ، متوسط القيمة الرمادية ، واصفات الشكل ، والكثافة المتكاملة.
  2. تحليل تشكيل ألياف الإجهاد
    ملاحظه: يمكن ان تكون ألياف الإجهاد كميا عده طرق اعتمادا علي النمط الظاهري.
    1. عد عدد الخلايا مع ألياف الإجهاد كنسبه مئوية علي العدد الإجمالي للخلايا. هذا التحليل هو أفضل إذا كان هناك اختلافات بصريه في عدد ألياف الإجهاد التي تشكلت في ظل ظروف تجريبية مختلفه.
    2. احسب عدد من ألياف الإجهاد التي مستعرضه الخلية. يسمح هذا التحليل للمقارنة بين عدد من ألياف الإجهاد التي شكلت لكل خليه.
    3. قياس كثافة الفلورية الاجماليه المعطية من قبل phسبائك (علي سبيل المثال ، F-actin) تلطيخ لكل خليه17،18. هذا الأسلوب سوف يسلط الضوء علي زيادات/انخفاضات جذريه في كثافة الفلوري بسبب تلطيخ F-actin.
      1. قم بتعيين معلمات القياس في الخطوة 5.1.5 أعلاه.
      2. حدد أداه اليد الحرة في شريط أدوات فيجي وتتبع الخلية (الخلايا) ذات الاهتمام يدويا. حدد تحليل-قياس. سيظهر اطار جديد يظهر معلمات القياس المحددة.
      3. حدد أداه Freehand في شريط أدوات فيجي وتتبع يدويا مساحة فارغه مع عدم وجود خلايا. حدد تحليل-قياس. سيكون هذا القياس بمثابه مضان الخلفية.
      4. استخدم المعادلة أدناه لتحديد إجمالي الفلورية F-actin لكل خليه:
        Equation 1
        ملاحظه: يمكن تطبيع القياس الناتجة ومقارنتها مع الخلايا الأخرى لإعطاء F-actin مضان لكل خليه.
  3. تحليل الخلية الدائرية
    ملاحظه: يمكن أيضا تسجيل المعلومات المتعلقة بمنطقه الخلية (مؤشر الخلية التي تنتشر علي مر الزمن) ، وكذلك الدوران. ويعطي هذا القياس كنسبه تتراوح بين 0 و 1 كطريقه لقياس الخلايا الممدودة إلى الجولة علي التوالي.
    1. حدد أداه اليد الحرة في شريط أدوات فيجي ، وتتبع خليه فرديه. حدد صوره-قياس وتسجيل منطقه الخلية وقياسات المحيط لكل خليه. كرر هذا الاجراء لكل خليه.
      ملاحظه: ضمن الدالة " تعيين القياسات " ، يتم توفير دائري كقياس واصفات الشكل (الخطوة 5.1.5).
    2. عد يدويا المحير أو نتوءات المغذية لكل خليه كما هو مبين في الشكل 3 والشكل 4.
  4. تحليل التصاق البؤري
    ملاحظه: قبل تنفيذ تحليل التصاق البؤري, تثبيت المكسيكي قبعة مرشح المساعد علي أحدث نسخه من فيجي. تم تعديل البروتوكول التالي من الدراسات السابقة19و20و21.
    1. حدد عمليه-تعزيز التباين المحلي (كلاس) باستخدام حجم كتله من 19 ، سلال الرسم البياني 256 ، والمنحدر الأقصى من 6 ، مع عدم وجود قناع وليس بسرعة. (الشكل 2 جيم)
    2. حدد عمليه-فلاتر-التمويه الضبابي مع سيغما (نصف قطر) من 2.0 لتصفيه الصورة (الشكل 2d).
    3. حدد الإضافات-المكسيكي قبعة فلتر (Mhf) مع دائره نصف قطرها 2.0 (الشكل 2e).
    4. تشغيل عتبه وحدد خلفيه داكنه وأكثر/تحت استخدام اما هوانغ أو isodata كاسلوب الدرس. حدد العتبة التلقائية.
      ملاحظه: هذه الخطوة تضمن ان يتم تمييز التصاقات ، ولكن أيضا مميزه عن بعضها البعض.
    5. حدد تحليل-تحليل الجسيمات مع المعلمات التالية المحددة: الحجم = 20 ، بكسل-انفينيتي والدوران = 0.00-0.99. تحقق من الخطوط العريضة لضمان الكشف السليم وفصل التصاقات البؤرية.
      ملاحظه: تسفر هذه النتائج عن الرقم والمساحة ووصف شكل التصاقات البؤرية الفردية.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

مخطط عام لاعداد التجريبية

يمثل الشكل 1 المخطط العام للتصاق الخلية وبروتوكول النشر الذي يبدا بتجويع المصل من خلايا REF52 وينتهي بالتحليل الحسابي للصور الفلورية المكتسبة. يتم توضيح الخطوات الرئيسية في البروتوكول في الجدول الزمني. ومن الملاحظ ان الخطوة 2 من البروتوكول تصف اعداد الشفتين المغلفتين بالقوات الخاصة ، والتي ينبغي أداؤها بالتزامن مع الخطوة 3: المصل الذي يتضور جوعا REF52 خلايا قبل وضعها في التعليق (الشكل 1A). مثال علي لوحه من 24 بئر المسمي وهميه تشير إلى مجموعات العلاج ومده التصاق الخلية قبل تثبيت عينات لمجهر مضان (الشكل 1B).

معالجه الصور المناعية لقياس التصاق البؤري

وقد عقدت REF52 زنزانة في التعليق لمده 90 دقيقه ، مطليه بالقوات الجديدة ، وسمح لها بالانضمام لمده 15 دقيقه اضافيه. بعد التثبيت وتلطيخ مع المضادة-باكسيلين الأضداد ، تم الحصول علي الفلورسنت 8 بت الصور الرمادية من الخلايا. تم اجراء تحليل معالجه الصور وفقا للبروتوكول المحدد في الخطوة 5. تظهر هي الصور التمثيلية لكل خطوه معالجه متميزة بما في ذلك الصورة الاصليه (الشكل 2A) ، والصور التالية الطرح الخلفي (الكره بعد المتداول) (الشكل 2A) ، كلاس (الشكل 2A) ، التمويه الضبابي ( الشكل 2D) ومرشح قبعة المكسيكية (بعد MHF) (الشكل 2d) تصفيه الخطوات. وبعد الانتهاء من جميع خطوات معالجه الصور ، ينبغي ان تكون التصاقات البؤرية الفردية بارزه ، وفي التركيز ، ويمكن تمييزها بسهوله عن بعضها البعض (الشكل 2 هاء). بعد ان يتم تصفيه الصور ، يمكن تحديد كميه التصاقات البؤرية وقياس مساحتها (الخطوات 5.1 و 5.4).

التصور من التصاق الخلية والانتشار علي FN بعد الاكسده

صوره التدرج الرمادي التمثيلية لمكافحه باكسيلين (علامة التصاق البؤري) (الشكل 3، اللوحة العلوية) و Phمسبوكه F-actin المسبار تلطيخ (الشكل 3، لوحه أسفل) من خلايا REF52 بعد الطلاء علي FN مع أو بدون Ku55933 ( العلاج بالعامل الذي يحفز الروس. قبل الفحص ، كانت خلايا REF52 المصل المتعطشة لمده 1 ساعة. بعد المجاعة المصل ، وعقدت الخلايا في التعليق في حين يجري التعامل مع اي مركبه وحدها أو 10 μM Ku55933 للحث علي الاكسده. تم طلاء الخلايا علي الشفاه المغلفة بالقوات الخاصة للفترة المشار اليها ، ثابته ، ومن ثم ملطخه بجسم مضاد للتصاقات بؤرية و phخلائط idin للكشف عن البروتينات F-actin. يجب ان تكون التصاقات البؤرية البارزة وألياف الإجهاد مرئية بسهوله في خلايا REF52 بعد السماح لها بالتزام ب 20-30 دقيقه علي FN. يجب ان لا تتداخل الخلايا مطلي مع بعضها البعض للسماح الخلوية الكاملة الانتشار بعد التصاق. لاحظ حواف الخلايا الواضحة والمتميزة بالاضافه إلى مساحة الخلايا الفردية للانتشار (الشكل 3). F-actin الكشكشة المخصب في الحافة الرائدة من اغشيه الخلايا مرئية وأشار مع سهم (الشكل 3، لوحه أسفل).

تمثيل بياني للصور الفلورية الكمية للياف الإجهاد ودرجه انتشار الخلايا

أمثله من الصور الكمية المعروضة في شكل شريط الرسم البياني يمثل النسبة المئوية للخلايا مع ألياف الإجهاد ودرجه الخلية التي تنتشر مع وبدون علاج Ku55933 في أوقات مختلفه بعد التصاق. وقد تم تحليل الصور الفلورية من الفيفيبين F-actin المسبار وتلطيخ مكافحه باكسيلين ، علي غرار الصور المعروضة في الشكل 3، لنسبه من ألياف الإجهاد والخلايا المنتشرة (اي مؤشر الدوران) باستخدام إجراءات تحليل الصور موصوفه في الخطوة 5 من البروتوكول. علي وجه الخصوص ، تسبب العلاج المؤكسد زيادة كبيره في تشكيل ألياف الإجهاد في جميع نقاط الوقت التصاق فحص (الشكل 4A) وانخفاض في الخلية التي تنتشر بعد 15 دقيقه من التصاق الخلية إلى FN (الشكل 4a).

الصور المناعية غير قابله للقياس الكمي بسبب الخلوية علي كونفلوينسي

وقد عقدت خلايا REF52 المتعطشة لمصل الدم في التعليق لمده 90 دقيقه ، وخلال هذه الفترة تم التعامل معها مع 10 μM Ku55933 للحث علي تشكيل الروس. ثم تم طلاء الخلايا علي القوات الخاصة وسمح لها بالتزام لمده 20 دقيقه ، وبعد ذلك كانت ثابته وملطخه بالمضادة-باكسيلين أو phسبائك-اليكسا 594 المسبار F-actin. الطلاء في كثافة الخلايا العليا يؤدي إلى الازدحام الخلوي ، الذي يمنع الخلايا من الانتشار الكامل بسبب أكثر من كونفلوينسي. تلاحظ حواف الخلايا لا يمكن تمييزها عن الخلايا المجاورة (الأسهم الصفراء) (الشكل 5A). ونتيجة لذلك ، فان القياس الكمي للخلايا الفردية مستبعد ، ولا يمكن تحديد محيط الانتشار بدقه. في الشكل 5B ، تم تعليق خط خلوي منفصل ، والخلايا الليفية الجنينية الفارهة (MEF) ، وبعد ذلك تم طلاءها علي FN لمده 30 دقيقه. وكانت الخلايا ثابته ثم ملطخه بجسم مضاد لل باكسيلين. يتم الرمز من خلايا التركيز بواسطة السهام الحمراء (الشكل 5 ب). وعلاوة علي ذلك ، فان التفاعل التبادلي للأجسام المضادة لمكافحه باكسيلين مع الحطام الخلوي (السهم الأزرق) سيغير الدرس اثناء تحليل الصورة الكمية (الجزء 5) ولا ينبغي ادراجه في التحليل (الشكل 5 ب).

Figure 1
الشكل 1: الخط الزمني للبروتوكول والمثال 24-حسنا اعداد لوحه.
(ا) يسلط الخط الزمني الضوء علي الخطوات الرئيسية في عمليه التصاق الخلايا ونشرها. (ب) وصفت الممثلة 24 لوحه ، وتوضيح مجموعات العلاج والأوقات للتصاق الخلية. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.

Figure 2
الشكل 2: أمثله للصور المناعية التمثيلية التالية لمعالجه الصور.
وقد عقدت REF52 الخلايا في التعليق لمده 90 دقيقه ، مطليه علي FN ، ويسمح لها بالتزام لمده 15 دقيقه. وكانت الخلايا ثابته وملطخه بمضادات باكسيلين. (ا) الصورة الاصليه والصور التالية (ب) الطرح الخلفي (كره ما بعد الدحرجة) ، (ج) كلاس ، (د) التمويه الضبابي و (ه) تصفيه القبعات المكسيكية (ما بعد mhf) تصفيه الخطوات. الشريط ، 20 ميكرومتر. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.

Figure 3
الشكل 3: الصور المناعية التمثيلية لمكافحه باكسيلين و phسبائك المسبار F-actin الملون REF52 الخلايا مطلي علي FN.
قبل الفحص ، كانت خلايا REF52 المصل المتعطشة لمده 1 ساعة. بعد المجاعة المصل ، وعقدت الخلايا في التعليق بينما تعامل مع اي مركبه وحدها أو 10 μM Ku55933 للتسبب الاكسده. وقد تم طلاء الخلايا علي الشفاه المغلفة بالقوات الخاصة للفترة المشار اليها ، ثابته وملطخه بأجسام مضاده للتصاقات بؤرية و phخلائط idin للكشف عن البروتينات F-actin. يتم الاشاره إلى الكشكشة F-actin المخصب في الحافة الرائدة من اغشيه الخلايا مع السهم. شريط ، 40 μm. وقد تم تعديل هذا الرقم من Tolbert وآخرون5الرجاء انقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.

Figure 4
الشكل 4: القياس الكمي للصور المناعية.
الرسومالبيانية الموضحة (ا) النسبة المئوية للخلايا التي تظهر ألياف الإجهاد و (ب) قياسات دوران الخلايا. تم تعريف دوران الخلية كمنطقه الخلية مقسوما علي محيط الخلية. وتراوحت القيم بين 0-1.0 مشيرا إلى التشكل الممدود أو المدور ، علي التوالي. تشير أشرطه الخطا إلى اختبار tللطالب s.e.m. للعينات المقترنة * p < 0.01 من التجارب التي أجريت في ثلاث نسخ. وقد تم تعديل هذا الرقم من Tolbert وآخرون5الرجاء انقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.

Figure 5
الشكل 5: الصور المناعية غير القابلة للقياس الكمي.
(ا) تم احتجاز خلايا REF52 التي تعاني من الجوع في المصل لمده 90 دقيقه ، بينما عولجت بنسبه 10 ميكرومتر Ku55933. وكانت الخلايا مطليه بالقوات الخاصة وسمح لها بالتصاق بها لمده 20 دقيقه. وكانت الخلايا ثابته وملطخه بالمضادة لل-باكسيلين أو phسبائك-اليكسا 594 المسبار F-actin. يتم عرض حواف الخلية بواسطة الأسهم الصفراء. (ب) كانت خلايا MEF معلقه ومطليه بعد ذلك علي القوات الخاصة لمده 30 دقيقه. وكانت الخلايا ثابته وملطخه بأجسام مضاده لمكافحه باكسيلين. يتم الرمز من خلايا التركيز بواسطة الأسهم الحمراء والتفاعل التبادلي للأجسام المضادة لمكافحه باكسيلين مع الحطام الخلوي ويشار اليها بالأسهم الزرقاء. الشريط ، 30 ميكرومتر. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

البروتوكول الموصوف هنا هو طريقه متعددة واقتصاديه للشاشة بسرعة عدد من أنواع الخلايا التي تعتمد علي المرسي لأعاده عرض ديناميكية خلوي اثناء انتشار الخلية. علي وجه الخصوص ، هذا الأسلوب يفحص كميا ألياف الإجهاد وتشكيل التصاق البؤري اثناء الاكسده عندما تلتصق الخلايا إلى FN (الشكل 1A). وعلاوة علي ذلك ، قد توحي هذه الظواهر الخلوية دورا تنظيميا لأعضاء عائله رو من gtpases الصغيرة لأنها قد وثقت الأدوار اثناء مرفق الخلية ونشر15،16،22. ومع ذلك ، ستكون هناك حاجه إلى تقنيات بيوكيميائية اضافيه لتحديد المشاركة المحتملة لبروتينات الاسره رو النشطة GTP.

يستخدم البروتوكول المعروض الكشف المناعي لل F-actin و باكسيلين لفحص علي وجه التحديد التصاق الخلايا وانتشار خلايا الخلية الليفية الخلد علي FN بعد الاكسده الناجمة عن تثبيط جهاز الصراف الألى كيناز (الشكل 2، الشكل 3 والشكل 4). ومع ذلك ، يمكن أيضا تكييف هذا الاجراء للاستخدام علي البروتينات الأخرى ECM و/أو أنواع الخلايا الملتصقة الأخرى. عند التكيف مع خطوط الخلايا الأخرى ، من المهم لتحسين الظروف التجريبية ، وخاصه: رقم الخلية/الكثافة ، ووقت المجاعة المصل ، وتركيز البروتين ECM ، وظروف الاكسده العلاج الإجهاد. عند اختبار اثار محفز غير معروف علي التصاق وانتشار ديناميات ، فمن الضروري ان تشمل كلا من عينات التحكم السلبية والايجابيه للتحقق من ان الفحص يعمل بشكل صحيح. يمكن ان تشمل عينات التحكم السلبية عينه غير معالجه أو مركبه فقط ، في حين ان السيطرة الايجابيه يجب ان تحفز الاكسده (علي سبيل المثال ، H2O2). وعلاوة علي ذلك ، وعلي الرغم من عدم مناقشتها هنا ، فمن الضروري أيضا استخدام الضوابط المناسبة للأجسام المضادة. ويوصي باستخدام ثلاثه ضوابط منفصلة لكل جسم من الأجسام المضادة للتحقق من خصوصيته ولتحديد اي نزيف فلوري محتمل من خلال23,24. وتشمل هذه: 1) السيطرة المضادة الاساسيه لضمان ربط محدده من الأجسام المضادة الاساسيه إلى مستضد وللتاكد من ان الربط مستضد يحدث تحت ظروف التثبيت المستخدمة, 2) سيطرة الأجسام المضادة الثانوية (لغير الثانوية مترافق-الأجسام المضادة ) التي تبين الخصوصية للأجسام المضادة الاساسيه ، و 3) الضوابط فلوكوفيري التي تضمن فلوكوفيري المضافة ليست نتيجة الفلورية الذاتية أو نزيف من خلال الأجسام المضادة أخرى.

في حين ان هذا الفحص مفيد لتحليل الاحداث الحركية في وقت مبكر من التجمع التصاق والانتشار ، فانه ليس مناسبا لفحص مفصل من التصاق التفكيك أو قوه التصاق والتقوية الخلوية. ويتطلب هذا الأخير استخدام المحطات الحيوية للتصوير علي المدى الطويل أو التقنيات الطيفية للقوه أحاديه الخلية. وتشمل هذه التقنيات الاخيره المجهر القوه الذرية ، ملاقط بصريه ، وأجهزه استشعار التوتر من البروتينات التصاق مثل فينكولين25 أو تالين26،27، و 3d-قوه المجهر28.

وتشمل الخطوات الهامه في البروتوكول الطلاء الكامل للشفاه مع FN. هذا ضرورية ل ال [سبردينغ] موحده والتصاق الخلايا. ولذلك فمن المهم لماصه الحل FN صعودا وهبوطا علي الشفتين عده مرات قبل الحضانة. يجب ان تظل الشفاه مغمورة بالبالكامل في محلول FN خلال فتره الحضانة. ويمكن تخزين الشفاه المغلفة FN لمده تصل إلى 2 أسابيع في 4 درجه مئوية.

كثافة الخلية هو أيضا مهم ، والخلايا التي يتم مطلي كثيفه جدا لن تحقق اقصي انتشار محيط. وعلاوة علي ذلك ، لن يكون من الممكن التمييز بين التصاقات البؤرية الفردية أو الكشكشة الخلوية لكل خليه علي حده. ولذلك فانه من الضروري حساب الخلايا باستخدام مقياس الكريات الدموية أو عداد الخلايا الألى قبل وضع الخلايا في التعليق. في حين يتم توفير تقدير لكثافة الخلايا للخلايا REF52 ، وهذا سوف تحتاج إلى تحديد تجريبي للخلايا الأخرى قيد الدراسة. وينبغي ان تكون الخلايا مطليه بكميات قليله تكفي لتداخل الخلايا ، مما يسمح لها بالانتشار الكامل (الشكل 5).

الخطوات الهامه الأخرى في البروتوكول للنظر هي فلوريسسينتلي مترافق phمسبوك idin-اليكسا 594 F-actin التحقيق والأجسام المضادة الثانوية حساسة للضوء. ولذلك ، يجب ان تكون العينات الحد الأدنى من التعرض للضوء بعد تطبيق هذه الكواشف. وعلاوة علي ذلك ، فان عددا من العوامل التي تحفز علي الاكسده لها نصف عمر قصير. ولذلك فمن الضروري اختبار الاكسده المختارة للحصول علي الجرعة المثلي ووقت التعرض لتحقيق ذروه النشاط.

تحتوي الأقسام التالية علي نصائح لإطلاق النار علي المتاعب فيما يتعلق بتركيز القوات الخاصة ، وظروف المجاعة في المصل ، ومنهجيات انفصال الخلايا. هذه النصائح مفيده عند تكييف البروتوكول لخطوط الخلايا الأخرى و/أو ظروف العلاج.

لتحليل متسقة FA ، المرفق الأمثل وشروط الانتشار ضرورية ، والتي سوف تختلف اعتمادا علي ligand ECM. للقوات الخاصة ، تبدا باستخدام مجموعه ديناميكية من 10-30 ميكروغرام/مل. في تركيزات اعلي من القوات الخاصة ، لا يوجد فرق يذكر في ملحق الخلية. ومع ذلك ، فان بعض أنواع الخلايا لا تنتشر بكفاءة في تركيزات اعلي من ECM.

كل نوع الخلية يستجيب بشكل مختلف لظروف المجاعة المصل. يمكن بسهوله ان الخلايا REF52 تجويع بين عشيه وضحيها دون اي فقدان القدرة علي البقاء ، ومع ذلك ، هذا ليس صحيحا لجميع خطوط الخلايا. ولذلك ، فمن الضروري تحديد الدرجة التي يمكن ان تحمل خط الخلية تحت الدراسة المجاعة المصل.

لنشر المقايسات ، يجب ان تكون الخلايا التريسينزيد لأقل وقت ممكن لنتائج استنساخه29. التالية مفرزه الخلية بواسطة التريسينزيشن, مستقبلات سطح الخلية, ل ligands مشابه, والنشاط رو gtpase تتطلب فتره نقاهة للعودة إلى مستويات الدولة ثابت14,15. وينبغي ان الاجراء التريسينزيشن المبينة في هذا البروتوكول تمكين الخلايا للاحتفاظ بمعظمها من سطح الخلية مستقبلات ملزمه FN29. ومع ذلك ، قد تتطلب بعض أنواع الخلايا أساليب بديله لمفرزه الخلية لمنع تماما هضم مستقبلات سطح الخلية. وتشمل هذه الأساليب الخلايا مخلبيه باستخدام الحلول المستندة إلى أدتا (علي سبيل المثال ، Versene) أو حلول التفكك الانزيمي أكثر اعتدالا (علي سبيل المثال ، Accutase). استخدام هذه الحلول التفكك قد ترك التصاقات خليه خليه سليمه مما ادي إلى كتل الخلية. ولذلك فمن المهم أعاده تعليق الخلايا الفردية بالبالكامل لضمان الاستنساخ التجريبية.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

ويعلن صاحبا البلاغ انهما لا يملكان مصالح مالية متنافسة.

Acknowledgments

ويشكر المؤلفان السيد سكوت ر. هوتون وميشان س. بلاكدج علي المراجعة النقدية لهذه المخطوطة. تم تمويل هذا العمل من قبل البحوث والبرامج التي ترعاها جامعه هاي بوينت وبرنامج التكنولوجيا الحيوية في جامعه ولاية كارولينا الشمالية.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.05% Trypsin-EDTA (1x) Gibco by Life Technologies 25300-054 cell dissociation
10 cm2 dishes Cell Treat 229620 sterile, tissue culture treated
15 mL conical tubes Fisher Scientific 05-539-5 sterile
1X Phosphate Buffered Saline Corning Cellgro 21-031-CV PBS, sterile, free of Mg2+ and Ca2+
24-well cell culture treated plates Fisher Scientific 07-200-740 sterile, tissue culture treated
4°C refrigerator Fisher Scientific
Mouse IgG anti-paxillin primary antibody (clone 165) BD Transduction Laboratories 610620 marker of focal adhesions
Aspirator Argos EV310
Biosafety cabinet Nuair NU-477-400 Class II, Type A, series 5
Delipidated Bovine Serum Albumin (Fatty Acid Free) Powder Fisher Scientific BP9704-100 dlBSA
Dimethyl Sulfoxide Fisher Scientific BP231-100 organic solvent to dissolve Ku55933
Dulbecco's Modified Eagle Media, High Glucose Fisher Scientific 11965092 REF52 base cell culture medium
Fetal bovine serum Fisher Scientific 16000044 certified, cell culture medium supplement
Fiji National Institutes of Health http://fiji.sc/ image analysis program
Filter syringe Fisher Scientific 6900-2502 0.2 µM, sterile
Glass coverslips (12-Cir-1.5) Fisher Scientific 12-545-81 autoclave in foil to sterilize
Goat anti-mouse IgG secondary antibody Alexa Fluor 488 Invitrogen A11001 fluorescent secondary antibody, light sensitive
Goat Serum Gibco by Life Technologies 16210-064 component of blocking solution for immunofluorescence
Hemocytometer Fisher Scientific 22-600-107 for cell counting
Human Plasma Fibronectin Gibco by Life Technologies 33016-015 FN
IX73 Fluorescence Inverted Microscope Olympus microscope to visualize fluorescence, cell morphology, counting and dissociation
Ku55933 Sigma-Aldrich SML1109-25MG ATM kinase inhibitor, inducer of reactive oxygen species
L-glutamine Fisher Scientific 25-030-081 cell culture medium supplement
Monochrome CMOS 16 bit camera Optimos
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148-500G PFA, fixative for immunofluorescence
Penicillin-streptomycin Fisher Scientific 15-140-122 P/S, antibiotic solution for culture medium
Alexa Fluor 594 phalloidin (F-actin probe) Invitrogen A12381 marker of F-actin, light sensitive
ProLong Gold Anti-fade reagent with DAPI Invitrogen P36941 cover slip mounting media including nuclear dye DAPI, light sensitive
REF52 cells Graham, D.M. et. al. Journal of Cell Biology 2018
Stir plate with heat control Corning Incorporated PC-420D
Syringe BD Biosciences 309653 60 mL syringe
Tissue culture incubator Nuair
Triton X-100 Fisher Scientific BP151-500 detergent used to permeabilize cell membranes
Trypan Blue Solution Fisher Scientific 15-250-061 for cell counting
Trypsin Neutralizing Solution (1x) Gibco by Life Technologies R-002-100 TNS, neutralizes trypsin instead of fetal bovine serum
tube rotator Fisher Scientific 11-676-341
water bath Fisher Scientific FSGPD02

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Geiger, B., Bershadsky, A., Pankov, R., Yamada, K. M. Transmembrane crosstalk between the extracellular matrix--cytoskeleton crosstalk. Nature Reviews: Molecular Cell Biology. 2, (11), 793-805 (2001).
  2. Geiger, B., Yamada, K. M. Molecular architecture and function of matrix adhesions. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 3, (5), (2011).
  3. Lawson, C. D., Burridge, K. The on-off relationship of Rho and Rac during integrin-mediated adhesion and cell migration. Small GTPases. 5, e27958 (2014).
  4. Heo, J., Campbell, S. L. Mechanism of redox-mediated guanine nucleotide exchange on redox-active Rho GTPases. Journal of Biological Chemistry. 280, (35), 31003-31010 (2005).
  5. Tolbert, C. E., Beck, M. V., Kilmer, C. E., Srougi, M. C. Loss of ATM positively regulates Rac1 activity and cellular migration through oxidative stress. Biochemical and Biophysical Research Communications. 508, (4), 1155-1161 (2019).
  6. Hobbs, G. A., et al. Redox regulation of Rac1 by thiol oxidation. Free Radical Biology and Medicine. 79, 237-250 (2015).
  7. Zhang, Y., et al. Mitochondrial redox sensing by the kinase ATM maintains cellular antioxidant capacity. Science Signaling. 11, (538), (2018).
  8. Hobbs, G. A., Zhou, B., Cox, A. D., Campbell, S. L. Rho GTPases, oxidation, and cell redox control. Small GTPases. 5, e28579 (2014).
  9. Shiloh, Y., Ziv, Y. The ATM protein kinase: regulating the cellular response to genotoxic stress, and more. Nature Reviews: Molecular Cell Biology. 14, (4), 197-210 (2013).
  10. Lang, L., et al. ATM-Mediated Phosphorylation of Cortactin Involved in Actin Polymerization Promotes Breast Cancer Cells Migration and Invasion. Cellular Physiology and Biochemistry. 51, (6), 2972-2988 (2018).
  11. Peter, Y., et al. Elevated Cu/Zn-SOD exacerbates radiation sensitivity and hematopoietic abnormalities of Atm-deficient mice. European Molecular Biology Organization Journal. 20, (7), 1538-1546 (2001).
  12. Takao, N., Li, Y., Yamamoto, K. Protective roles for ATM in cellular response to oxidative stress. Federation of European Biochemical Societies Letters. 472, (1), 133-136 (2000).
  13. Jansen, S., Gosens, R., Wieland, T., Schmidt, M. Paving the Rho in cancer metastasis: Rho GTPases and beyond. Pharmacology & Therapeutics. 183, 1-21 (2018).
  14. Berrier, A. L., Martinez, R., Bokoch, G. M., LaFlamme, S. E. The integrin beta tail is required and sufficient to regulate adhesion signaling to Rac1. Journal of Cell Science. 115, (Pt 22), 4285-4291 (2002).
  15. Arthur, W. T., Petch, L. A., Burridge, K. Integrin engagement suppresses RhoA activity via a c-Src-dependent mechanism. Current Biology. 10, (12), 719-722 (2000).
  16. Arthur, W. T., Burridge, K. RhoA inactivation by p190RhoGAP regulates cell spreading and migration by promoting membrane protrusion and polarity. Molecular Biology of the Cell. 12, (9), 2711-2720 (2001).
  17. Chandra, S., Kalaivani, R., Kumar, M., Srinivasan, N., Sarkar, D. P. Sendai virus recruits cellular villin to remodel actin cytoskeleton during fusion with hepatocytes. Molecular Biology of the Cell. 28, (26), 3801-3814 (2017).
  18. Fitzpatrick, M. Measuring Cell Fluorescence Using ImageJ. https://theolb.readthedocs.io/en/latest/imaging/measuring-cell-fluorescence-using-imagej.html (2014).
  19. Berginski, M. E., Vitriol, E. A., Hahn, K. M., Gomez, S. M. High-resolution quantification of focal adhesion spatiotemporal dynamics in living cells. PLoS One. 6, (7), e22025 (2011).
  20. Horzum, U., Ozdil, B., Pesen-Okvur, D. Step-by-step quantitative analysis of focal adhesions. MethodsX. 1, 56-59 (2014).
  21. Elosegui-Artola, A., et al. Image analysis for the quantitative comparison of stress fibers and focal adhesions. PLoS One. 9, (9), e107393 (2014).
  22. Meller, J., Vidali, L., Schwartz, M. A. Endogenous RhoG is dispensable for integrin-mediated cell spreading but contributes to Rac-independent migration. Journal of Cell Science. 121, (Pt 12), 1981-1989 (2008).
  23. Donaldson, J. G. Immunofluorescence Staining. Current Protocols in Cell Biology. 69, (43), 1-7 (2015).
  24. Burry, R. W. Controls for immunocytochemistry: an update. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 59, (1), 6-12 (2011).
  25. Grashoff, C., et al. Measuring mechanical tension across vinculin reveals regulation of focal adhesion dynamics. Nature. 466, (7303), 263-266 (2010).
  26. Kumar, A., et al. Correction: Talin tension sensor reveals novel features of focal adhesion force transmission and mechanosensitivity. Journal of Cell Biology. 214, (2), 231 (2016).
  27. Kumar, A., et al. Talin tension sensor reveals novel features of focal adhesion force transmission and mechanosensitivity. Journal of Cell Biology. 213, (3), 371-383 (2016).
  28. Friedrichs, J., Helenius, J., Muller, D. J. Quantifying cellular adhesion to extracellular matrix components by single-cell force spectroscopy. Nature Protocols. 5, (7), 1353-1361 (2010).
  29. Brown, M. A., et al. The use of mild trypsinization conditions in the detachment of endothelial cells to promote subsequent endothelialization on synthetic surfaces. Biomaterials. 28, (27), 3928-3935 (2007).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics