3D Kinematic Analys för funktionell utvärdering i Rat Modell av Sciatic Nerve Crush Skada

Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Vi introducerar en kinematic analysmetod som använder en tredimensionell motion capture apparat som innehåller fyra kameror och databehandlingsprogram för att utföra funktionella utvärderingar under grundläggande forskning som involverar gnagare modeller.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Wang, T., Ito, A., Tajino, J., Kuroki, H., Aoyama, T. 3D Kinematic Analysis for the Functional Evaluation in the Rat Model of Sciatic Nerve Crush Injury. J. Vis. Exp. (156), e60267, doi:10.3791/60267 (2020).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Jämfört med Sciatic Functional Index (SFI) är kinematic-analys en mer tillförlitlig och känslig metod för att utföra funktionella utvärderingar av ischiasnervska gnagare modeller. I detta protokoll beskriver vi en ny kinematic analysmetod som använder en tredimensionell (3D) motion capture apparat för funktionella utvärderingar med hjälp av en råtta ischias nerv krossa skada modell. Först är råttan bekant med löpband promenader. Markörer är sedan knutna till de utsedda ben landmärken och råttan är gjord för att gå på löpbandet med önskad hastighet. Under tiden registreras råttans bakre lemrörelser med fyra kameror. Beroende på vilken programvara som används skapas markörspårningar med både automatiska och manuella lägen och önskade data produceras efter subtila justeringar. Denna metod för kinematic analys, som använder en 3D motion capture apparat, erbjuder många fördelar, inklusive överlägsen precision och noggrannhet. Många fler parametrar kan undersökas under de omfattande funktionella utvärderingarna. Denna metod har flera brister som kräver övervägande: Systemet är dyrt, kan vara komplicerat att använda, och kan producera dataavvikelser på grund av hudväxling. Ändå är kinematic analys med hjälp av en 3D motion capture apparat användbart för att utföra funktionella främre och bakre lem utvärderingar. I framtiden kan denna metod bli allt mer användbar för att generera korrekta bedömningar av olika trauman och sjukdomar.

Introduction

Sciatic Functional Index (SFI) är riktmärket metod för att utföra funktionella sciatic nerv utvärderingar1. SFI har antagits allmänt och används ofta inom olika funktionella utvärderingsstudier om råtta sciatic nervskador2,3,4,5,6. Trots dess popularitet finns det flera problem med SFI, inklusive automutilation7, gemensam kontrakturrisk och utsmetande av fotspåren8. Dessa problem påverkar allvarligt dess prognostiska värde9. Därför krävs en alternativ, mindre felbenägen metod som ersättning för SFI.

En sådan alternativ metod är kinematic analys. Detta inkluderar omfattande gånganalys med hjälp av spårningsmarkörer kopplade till beniga landmärken eller leder. Kinematic analys används i allt högre grad för funktionella utvärderingar9. Denna metod är successivt erkänns som ett tillförlitligt och känsligt verktyg för funktionell utvärdering10 utan de brister som tillskrivs SFI11,12.

I detta protokoll beskriver vi en serie kinematiska analyser som använder en 3D-rörelseinsamlingsapparat som består av ett löpband, fyra 120 Hz laddade kopplade enheter (CCD) kameror och databehandlingsprogram (se Materialförteckning). Denna kinematiska analysmetod skiljer sig från allmän video gång eller gång analys13,14. Två kameror är placerade i olika riktningar för att spela in bakre lem rörelser från en enda sida. Därefter är en 3D digital modell av den bakre extremiteten konstruerad med hjälp av datorgrafik9. Vi kan beräkna utsedda ledvinklar, såsom höft, knä, fotled och tå led, genom att nära sammanfatta de faktiska lem dimensioner. Dessutom kan vi bestämma olika parametrar såsom steg/ steglängd och förhållandet mellan hållningsfasen och svängfasen. Dessa rekonstruktioner är baserade på en helt rekonstruerad 3D digital modell av de bakre lemmar, som genereras från data som överförs av två uppsättningar kameror. Även den imaginära tyngdpunkten (CoG) banan kan beräknas automatiskt.

Vi använde denna 3D motion capture apparat för att införa och bedöma flera kinematic parametrar som avslöjar funktionella förändringar över tiden inom ramen för råttisk nerv krossa skada modell.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Protokollet godkändes av djurförsökskommittén vid Kyotouniversitet, och alla protokollsteg utfördes i enlighet med riktlinjerna från djurexperimentkommittén, Kyotouniversity (godkännandenummer: MedKyo17029).

1. Bekanta råttor med löpband promenader

  1. Ställ in två genomskinliga plastskivor på båda sidor av löpbandet för att låta en 12 veckor gammal manlig Lewis råtta gå i rak, frontriktning och slå sedan på elchocknätet.
  2. Låt varje råtta gå på löpbandet. Gradvis påskynda löpbandet till önskad hastighet (20 cm / s eller 12 m / min) och låt råttan gå normalt vid denna hastighet i 5 min. Efter varje promenad, ge en 1-2 min paus. Upprepa denna process 3x per dag, 5 dagar per vecka, för 1 vecka.
    OBS: Starta löpbandet gå 1 vecka före steg 2.
  3. Hus råttor i grupper om tre per bur med en 12 h ljus-mörk cykel och mata dem kommersiella råtta mat och kranvatten ad libitum.

2. Utföra den ischiasnerven krossa skada

  1. Placera råttan i en anestesiinduktionskammare och införa 5% isofluran inhalationslösning.
  2. Ge en intraperitoneal injektion av en kombinationbedövning beredd med 0,15 mg/kg medetomidinhydroklorid, 2 mg/kg midazolam, och 2,5 mg/kg butorphanol tartrate till råttan. Kontrollera om det saknas pedalreflexer. Raka sedan ett område från vänster större trochanter till mitten av låret med en elektrisk rakapparat.
  3. Sprid ut en bit aseptisk trasa, placera råttan på den, och få den ligga i vänster lateralposition. Placera sterila kirurgiska instrument på duken också.
  4. Skapa ett rakt snitt från den större trochanter till mitten av låret med en kirurgisk nr 10 blad. Utför sedan en trubbig dissekering mellan quadriceps femoris och biceps femoris med hjälp av en kirurgisk hemostat för att exponera ischiasnerven.
  5. Lossa isciatiska nervfrån den omgivande vävnaden med två par mikroforceps och krossa ischiasnerven i 10 s, med hjälp av en vanlig kirurgisk hemostat, för att skapa en 2 mm lång krossskada på platsen direkt under gluteal tuberosity.
  6. Utför en 9-0 nylon epineural stygn vid proximala slutet av skadan med hjälp av ett par mikropinpar och sedan stänga muskler och hud med 4-0 nylon suturer.
  7. Ge en intraperitoneal injektion av en bedövningsantagonist beredd med 0,3 mg/kg atipamezolhydroklorid till råttan, för att väcka den inom 10 min. Efter råttan återhämtar sig från anestesi, observera vänster tå rörelser medan råttan är suspenderad av basen av svansen. Om tinnan inte sprids alls, var operationen framgångsrik.
  8. Hus råttorna individuellt efter operationen med en 12 h ljus-mörk cykel och mata dem kommersiella råtta mat och kranvatten ad libitum.

3. Fästa markörerna

  1. Placera den utbildade råttan i en anestesiinduktionskammare och införa en 5% isofluran inandningslösning. Kontrollera om pedalreflexen saknas genom att nypa tinnan.
  2. Låt råttan kontinuerligt sövd med hjälp av en bedövningsmask (2% isofluran inandningslösning). Medan råttan får stabil anestesi, raka ett område från nedre delen av ryggen till den bilaterala formazol med hjälp av en elektrisk rakapparat.
    VARNING: För att förhindra att forskare exponeras för den läckande isofluran, se till att masken tätt täcker huvud och ansikte av råttan.
    OBS: För att förhindra skador på råttan, raka håret så försiktigt som möjligt.
  3. Placera råttan i utsatt läge. Använd en svart markörpenna för att markera följande benlandmärken på den rakade huden: En linje genom de spinösa processerna från ländryggen till sakralkotor, de främre överlägsna iliaca-taggarna, de större trochanters, knälederna, sidomalleoli, den femte metatarsophalangeal leder, och spetsen på den fjärde tå.
    LINJEN genom spinous processerna används för att avgöra om de bilaterala markörerna är axiellt symmetriska.
  4. Använd ett flytande lim för att fästa hemispheric markörer till dessa ben landmärken, med undantag för linjen genom spinous processer från ländryggen till sakrala kotor, och spetsen på den fjärde tuten. Använd distinkta färger för alla andra landmärken för att undvika förvirring. Spetsen på den fjärde tinnan är märkt med rosa bläck.
    VARNING: Var noga med att inte droppa lim på förarens exponerade hud.
  5. Efter att ha placerat alla markörer, lägg råttan tillbaka i buren. Sätt inte råttan på löpbandet förrän den återhämtar sig helt från anestesi.
    OBS: Minskat medvetande kan allvarligt påverka normal vandring om råttan inte helt återhämta sig från anestesi.

4. Kalibrering och programinstallation

  1. Ställ in två genomskinliga plastskivor på båda sidor av löpbandet och placera kalibreringsboxen i mitten av löpbandet. Öppna inspelningsprogrammet och klicka sedan på ikonen Kalibreringsbild på displayen (Tilläggsfil 1).
  2. Klicka på ikonen Inspelning om du vill spela in 1–2 s video från fyra håll med 120 Hz CCD-kameror. Klicka på ikonen Inspelning igen för att stoppa inspelningen.
    Videon sparas automatiskt när inspelningen har stannat.
  3. Öppna videofilen i beräkningsprogrammet. Klicka och dra de karakteristiska punkterna i kalibreringsboxens 3D-modeller längst ned till höger på skärmen till motsvarande markörer på de fyra bilderna, som automatiskt omvandlas från videon i kalibreringsmönstret (Tilläggsfil 2). Klicka sedan på ikonen Spara.
    Obs: Ändra inte kamerornas lägen när kalibreringen är klar.

5. Spela in promenader

  1. Ta ut kalibreringslådan ur löpbandet, slå på elstötnätet och placera den helt vakna råttan på löpbandet. Öppna inspelningsprogrammet och mata in den grundläggande informationen om råttan, inklusive dess serienummer, gånghastighet och namnet på huvudoperatören.
  2. Slå på löpbandet och ställ in hastigheten på 20 cm/s. När råttan anpassar sig till hastigheten och kan gå normalt, klicka på inspelningsikonen på displayen för att spela in gångråttan med de fyra kamerorna. När tillräckligt många steg har spelats in (>10) klickar du på ikonen igen för att stoppa inspelningen och stäng av löpbandet.
    Videon sparas automatiskt när inspelningen har stannat.
  3. Sätt tillbaka råttan i anestesiinduktionskammaren för anestesi. Medan råttan är under kontinuerlig anestesi (administreras via bedövningsmask), ta bort de hemispheric markörerna.
    OBS: Ta bort markörerna så försiktigt som möjligt för att undvika att orsaka smärta för råttan.
  4. Vid den angivna tiden (t.ex. 1 vecka, 3 veckor eller 6 veckor efter operationen) utför du den kinetiska mätningen på råttan genom att upprepa steg 3.1–5.3. Gör den kinetiska mätningen endast en gång, i början av experimentet, för råttor na som inte fick operation (dvs. kontrollgruppen).

6. Spårning av markör

  1. Öppna beräkningsprogrammet och öppna videofilen i gränssnittet.
  2. Klicka och dra det bilaterala kontrollfältet på förloppsindikatorn i videon för att säkerställa att endast en 10-stegs löpband gångskiva visas(tilläggsfil 3). Klicka och dra varje karakteristisk punkt från 3D-modellen längst ner till höger på skärmen till motsvarande markör på var och en av de fyra första bilderna av de videor som togs av kamerorna(Kompletterande fil 4).
  3. Klicka på ikonen Spåra automatiskt för att starta den automatiska markörspårningsprocessen(tilläggsfil 5, tilläggsfil 6). Om systemet inte spårar en markör korrekt klickar du på ikonen Digitalisera manuellt för att växla till det manuella spårningsläget (Tilläggsfil 7), klicka på den karakteristiska spårningspunkten i 3D-modellen och klicka sedan på svaramarkören i bilden.
  4. När markören har klickats kontrollerar du att bilden växlar till nästa bildruta i videon. Klicka nu kontinuerligt på markören tills markörspårningsprocessen är klar. När du är klar klickar du på ikonen Spara.

7. Kinematic analys

  1. Öppna analysprogrammet och öppna sedan den bearbetade videofilen på gränssnittet.
  2. Klicka på ikonen Inställning och välj och lägg till angivna parametrar som ankelvinkel, tåvinkel och bäckenskifte (X och Z-axlar) i visningslistan i popup-fönstret till höger (Tilläggsfil 8). Klicka på OK, så att kurvor som representerar värdeändringarna i parametrarna visas på gränssnittet.
  3. Klicka på mätikonen och välj Smidig bearbetning i sin pull-down-meny. Ange 20 Hz i popup-fönstret för att ta bort frekvenser som är större än 20 Hz i kurvorna(tilläggsfil 9).
  4. Se till att det finns fem paneler på gränssnittet: den vandrande videon av råttan, den dynamiska 3D-modellen, kurvor som representerar värdeförändringar i parametrarna från 10-stegscykeln, kurvor som representerar genomsnittliga värdeförändringar i parametrar och histogram och schematiska diagram som representerar förhållandet mellan hållning och svängfas(tilläggsfil 10).
  5. Högerklicka på panelen för kurvor som representerar medelvärdesändringar i parametrar och välj Datautdata i pull-down-menyn(tilläggsfil 11). Detta kommer att producera medelvärdena för de bakre lem ledvinklar, inklusive fotled och tå vinklar, bäckenskifte, och alla andra önskade parametrar i 10-stegs cykelperioder.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Vi valde ut fyra parametrar för att undersöka funktionella förändringar över tiden i en råtta-sciatic nervkrossaskada modell. Dessa var förhållandet mellan hållning-till-swing fas, tyngdpunkt (CoG) bana, ankelvinklar och tåvinklar i "tå off" fas9. Tjugofyra råttor tilldelades slumpmässigt till en av fyra grupper: kontrollgruppen (C), råttor vid första (1w), tredje (3w) och sjätte (6w) vecka efter vänster ischias nerv krossa skada.

Genom 3D-kinetisk analys beräknades och representerades medelvärdet för hållnings- eller svängfasen i 10-stegscykeln automatiskt och representerades på gränssnittet(figur 1A-D). Vi fann att förhållandet mellan stance-to-swing fasen återfanns efter operation.

CoG är en virtuell punkt som kan spåras med en virtuell markör av 3D-rörelsefångstapparaten. Det ligger vid tvärpunkten av två linjer som förbinder någon av de två främre överlägsen iliaca taggar till deras kontralaterals större trochanters. Således resulterar realtidbäckenskiftet i koronalplanet (X och Z-axlarna) i en samtidig förskjutning av CoG som en 3D-konstruerad bäckenmodell används. Denna förändring kan också mätas automatiskt. CoG banan beskrivs som den föränderliga kurvan för bäckenskiftet medelvärde i X och Z axlar i 10-stegscykeln. Den normala CoG-bananformen liknar oändlighetstecknet (∞). Vi fann att CoG banan formen inte återgå till en ungefär normal form förrän 6 veckor efter operationen(Figur 2AD).

Den normala fotleden och tåvinklarna i "tåoff"-fasen når maximalt värde under plinthållningen i stegcykeln15, men dessa parametrar kan felaktigt rapporteras om råttan har opererats. Ändå tillät 3D kinematic analys oss att bestämma vinklarna i "tå off" fas genom att hänvisa till videon. Medelvärdet för fotleden eller tåvinkeln i "tåoff"-fasen beräknades från 10-stegscykeln. Resultaten tyder på att fotleden och tåvinklar, i "tå off" fasen förbättrats i en uppåtgående riktning efter operation. (Figur3A-B).

Figure 1
Figur 1: Bilateral hållning och svängfas. Den högra svängningen (magenta), höger hållning (röd), vänster sväng (azurblå) och vänster hållning (blå) faser representeras av deras respektive färgade barer. Gula staplar symboliserar dubbla stödfaser. Panel A-D visar varje bilateral hållning och svängfas i 10-stegs cykelperioder för kontrollgruppen(A), 1w (B), 3w (C) och 6w(D)grupper. C = kontroll; 1w = 1 vecka efter operationen; 3w = 3 veckor efter operationen; 6w = 6 veckor efter operationen. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 2
Figur 2: CoG banor. Paneler AD visar representativa genomsnittliga CoG banor under 10-stegcykel perioder för kontrollgruppen(A), 1w (B), 3w (C) och 6w(D)grupper. C = kontroll; 1w = 1 vecka efter operationen; 3w = 3 veckor efter operationen; 6w = 6 veckor efter operationen. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 3
Bild 3: Fotled och tåvinklar. PanelErna A och B visar förändringar över tiden i fotleden och tåvinklarna i de 10 "tåoff"-faserna för kontrollgruppen, 1w, 3w och 6w-grupper (**p < 0,01, jämfört med kontrollgruppen** p<0.01, jämfört med angränsande grupper. Felfält = standardfel i medelvärdet (SEM); C = kontroll; 1w = 1 vecka efter operationen; 3w = 3 veckor efter operationen; 6w = 6 veckor efter operationen. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Kompletterande fil 1. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 2. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 3. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 4. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 5. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 6. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 7. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 8. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 9. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 10. Klicka här för att se den här filen.

Kompletterande fil 11. Klicka här för att se den här filen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

I detta protokoll är en stabil och kontinuerligt vandrande råtta den viktigaste komponenten i kinematic analys. Löpbandets hastighet sattes till 20 cm/s. Denna gånghastighet anses inte på något sätt vara "hög" om råttor rör sig utan utrymmesbegränsningar16. Ändå är denna hastighet för snabb för otränade råttor att hugga på löpbandet och skulle sannolikt resultera i en onormal gång och nonuniform rörelser. Dessa händelser kan allvarligt påverka datatillförlitlighet och äkthet. Löpbandhastigheter som är lägre än 20 cm/s kan dock orsaka att råttorna periodvis slutar gå, vilket kan ge stora avvikelser och minskad datatillförlitlighet. Därför är det oerhört viktigt att träna råttorna för att stadigt kunna gå i rak, frontåt riktning på löpbandet om man ska kunna uppnå exakt kinematic analys.

Dessutom bör operatörerna inte bortse från behovet av återbekräftelse och finjusteringar under kinematicanalysprocessen. Vi fann att swing fasen stod för 25% av steget cykeln i normala råttor. Detta innebär att bakre lem rörelser under swing fasen accelererade till den punkt där kamerasystemet inte kunde exakt fånga rörelserna kontinuerligt och över tiden. Dessutom, alltför ljuseller svagt omgivande ljus, fläckar på den genomskinliga löpband ark, och onormala rörelsemönster som för övrigt uppstår under promenader kan resultera i en överdriven avvikelse av spårning etiketter från markörer knutna till råttorna. Dessa faktorer kan minska noggrannheten i processen för att fånga i motion. Manuella justeringar introducerades i markörspårningssystemet för att lösa problemet. Med manuell justering kan uppenbara avvikelser eller subtila rörelsefångstförluster omedelbart rättas till under markörspårningsprocessen. Dessutom, bekräftelse av förändringar i kurvorna för flera parametrar bearbetas med hjälp av kinematic analys programvara med hjälp av att söka efter och korrigera brister i markörspårningsprocessen. Bekräftelse gjorde det också möjligt för oss att generera de mest tillförlitliga och autentiska data.

Jämfört med den kinetiska analysen härrör SFI:s brister huvudsakligen från dess låga noggrannhet och tillförlitlighet, snarare än från störningar som produceras av ovannämnda faktorer. I en tidigare studie noterades också att SFI-metoden varken är tillförlitlig eller reproducerbar när den tillämpas under den tidiga perioden efter skadeperioden17. Å andra sidan har den höga noggrannheten och tillförlitligheten hos kinematic analys erkänts allmänt. Många tidigare tillämpningar kunde dock bara observera och mäta utsedda vinklar, särskilt ankelvinklar10,15,18,19,20. Begränsningarna för tvådimensionell (2D) videoanalys förhindrar undersökning av ytterligare parametrar under funktionella utvärderingar.

Tredimensionell kinematisk analys övervinner alla brister i SFI och möjliggör undersökning av många ytterligare parametrar. Den digitala 3D-modellen är tillverkad av bilder tagna av fyra kameror. Följaktligen kan denna apparat mäta eller beräkna parametrar mer exakt än konventionella 2D kinematic metoder. Därför har kinematic analys som använder 3D motion capture apparaten enormt lovande som ett potentiellt substitut för andra funktionella utvärderingsmetoder.

3D-kinematic-analysmetoden har dock flera begränsningar. Utbildning gnagare, fästa markörer, och spåra undersökningsprocesser är komplicerade och tidskrävande. För att få reproducerbara och tillförlitliga uppgifter bör operatören vara väl inkopplad i de kritiska steg som krävs. Den hudväxling som uppstår under gnagare promenader är särskilt sannolikt att producera dataavvikelser21. Dessutom kan den höga kostnaden för 3D kinematic analys utrustning hindra dess popularisering och begränsa användningen i relevanta studier.

Tidigare studier har visat att 3D kinematic analys uppnått korrekta och giltiga resultat i samband med råtta ischias nervskada modell9,22. Följaktligen har vi skäl att tro att denna metod kan vara ett användbart verktyg för funktionella utvärderingar av olika trauma eller sjukdomstater som involverar de bakre extremiteterna, inklusive störningar i det centrala och perifera nervsystemet och muskuloskeletala sjukdomar. Genom att ändra markörpositioneringen kan denna metod dessutom användas för att funktionellt utvärdera främre lemrörelser. Även om dessa hypoteser kräver ytterligare verifiering genom framtida experiment, tror vi att kinematic analys med hjälp av en 3D motion capture apparat kan inspirera mer lovande funktionella utvärderingsmetoder och spela en viktig roll i forskning och kliniska tillämpningar.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Författarna har inget att avslöja.

Acknowledgments

Denna studie stöddes av JSPS KAKENHI Grant Number JP19K19793, JP18H03129 och JP18K19739.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
9-0 nylon suture Bear Medic Corporation. T06A09N20-25
Anesthetic Apparatus for Small Animals SHINANO MFG CO.,LTD. SN-487-0T
ISOFLURANE Inhalation Solution Pfizer Japan Inc. (01)14987114133400
Kine Analyzer KISSEI COMTEC CO.,LTD. N.A. A analysis software
Liquid adhesive KANBO PRAS CORPORATION PT-B180
Micro forceps BRC CO. 16171080
Motion Recorder KISSEI COMTEC CO.,LTD. N.A. A recording software
Standard surgical hemostat Fine Science Tools, Inc. 12501-13
Surgical blade No.10 FEATHER Safety Razor CO., LTD 100D
Surgical hemostat World Precision Instruments 503740
Three-dimensional motion capture apparatus (KinemaTracer for Animal) KISSEI COMTEC CO.,LTD. N.A. A 3D motion analysis system that consists of cameras
Three-dimensional(3D) Calculator KISSEI COMTEC CO.,LTD. N.A. A marker tracing software
Treadmill MUROMACHI KIKAI CO.,LTD MK-685 a treadmill with affialiated the electrical schocker, transparent sheats and a speed control apparatus

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kanaya, F., Firrell, J. C., Breidenbach, W. C. Sciatic function index, nerve conduction tests, muscle contraction, and axon morphometry as indicators of regeneration. Plastic and Reconstructive Surgery. 98, (7), 1264-1274 (1996).
  2. Takhtfooladi, M. A., Jahanbakhsh, F., Takhtfooladi, H. A., Yousefi, K., Allahverdi, A. Effect of low-level laser therapy (685 nm, 3 J/cm(2)) on functional recovery of the sciatic nerve in rats following crushing lesion. Lasers in Medical Science. 30, (3), 1047-1052 (2015).
  3. Xing, H., Zhou, M., Assinck, P., Liu, N. Electrical stimulation influences satellite cell differentiation after sciatic nerve crush injury in rats. Muscle & Nerve. 51, (3), 400-411 (2015).
  4. Yang, C. C., Wang, J., Chen, S. C., Jan, Y. M., Hsieh, Y. L. Enhanced functional recovery from sciatic nerve crush injury through a combined treatment of cold-water swimming and mesenchymal stem cell transplantation. Neurological Research. 37, (90), 816-826 (2015).
  5. Jiang, W., et al. Low-intensity pulsed ultrasound treatment improved the rate of autograft peripheral nerve regeneration in rat. Scientific Reports. 6, 22773 (2016).
  6. Ni, X. J., et al. The Effect of Low-Intensity Ultrasound on Brain-Derived Neurotropic Factor Expression in a Rat Sciatic Nerve Crushed Injury Model. Ultrasound in Medicine & Biology. 43, (2), 461-468 (2017).
  7. Weber, R. A., Proctor, W. H., Warner, M. R., Verheyden, C. N. Autotomy and the sciatic functional index. Microsurgery. 14, (5), 323-327 (1993).
  8. Dellon, A. L., Mackinnon, S. E. Sciatic nerve regeneration in the rat. Validity of walking track assessment in the presence of chronic contractures. Microsurgery. 10, (3), 220-225 (1989).
  9. Wang, T., et al. Functional evaluation outcomes correlate with histomorphometric changes in the rat sciatic nerve crush injury model : A comparison between sciatic functional index and kinematic analysis. PLoS One. 13, (12), e0208985 (2018).
  10. de Ruiter, G. C., et al. Two-dimensional digital video ankle motion analysis for assessment of function in the rat sciatic nerve model. Journal of the Peripheral Nervous System. 12, (3), 216-222 (2007).
  11. Walker, J. L., Evans, J. M., Meade, P., Resig, P., Sisken, B. F. Gait-stance duration as a measure of injury and recovery in the rat sciatic nerve model. Journal of Neuroscience Methods. 52, (1), 47-52 (1994).
  12. Dijkstra, J. R., Meek, M. F., Robinson, P. H., Gramsbergen, A. Methods to evaluate functional nerve recovery in adult rats: walking track analysis, video analysis and the withdrawal reflex. Journal of Neuroscience Methods. 96, (2), 89-96 (2000).
  13. Lee, J. Y., et al. Functional evaluation in the rat sciatic nerve defect model: a comparison of the sciatic functional index, ankle angles, and isometric tetanic force. Plastic and Reconstructive Surgery. 132, (5), 1173-1180 (2013).
  14. Rui, J., et al. Gait cycle analysis: parameters sensitive for functional evaluation of peripheral nerve recovery in rat hind limbs. Annals of Plastic Surgery. 73, (4), 405-411 (2014).
  15. Yu, P., Matloub, H. S., Sanger, J. R., Narini, P. Gait analysis in rats with peripheral nerve injury. Muscle & Nerve. 24, (2), 231-239 (2001).
  16. Amado, S., et al. The sensitivity of two-dimensional hindlimb joint kinematics analysis in assessing functional recovery in rats after sciatic nerve crush. Behavioural Brain Research. 225, (2), 562-573 (2011).
  17. Monte-Raso, V. V., Barbieri, C. H., Mazzer, N., Yamasita, A. C., Barbieri, G. Is the Sciatic Functional Index always reliable and reproducible? Journal of Neuroscience Methods. 170, (2), 255-261 (2008).
  18. Varejao, A. S. P., et al. Motion of the foot and ankle during the stance phase in rats. Muscle & Nerve. 26, (5), 630-635 (2002).
  19. Lin, F. M., Pan, Y. C., Hom, C., Sabbahi, M., Shenaq, S. Ankle stance angle: a functional index for the evaluation of sciatic nerve recovery after complete transection. Journal of Reconstructive Microsurgery. 12, (3), 173-177 (1996).
  20. Patel, M., et al. Video-gait analysis of functional recovery of nerve repaired with chitosan nerve guides. Tissue Engineering. 12, (11), 3189-3199 (2006).
  21. Filipe, V. M., et al. Effect of skin movement on the analysis of hindlimb kinematics during treadmill locomotion in rats. Journal of Neuroscience Methods. 153, (1), 55-61 (2006).
  22. Tajino, J., et al. Three-dimensional motion analysis for comprehensive understanding of gait characteristics after sciatic nerve lesion in rodents. Scientific Reports. 8, (1), 13585 (2018).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics