0 次观看 • 3:12 分钟 • March 31st, 2026
取两块培养皿,其中含有表达绿色荧光蛋白标记的SKN-1的C. elegans线虫,SKN-1是一种定位于肠道细胞质的转录因子。这些线虫的肠道中还含有显示自发荧光的脂褐素颗粒。
一个平板接种非致病性细菌作为对照组,另一个平板接种致病性细菌作为实验组。
在实验组中,病原体产生的过氧化氢引发氧化应激,触发 SKN-1 转位至肠细胞核内。
在对照组中,大部分SKN-1在细胞质中呈弥散分布。
用缓冲液洗涤每块培养板,并将线虫转移至离心管中。
离心以分离线虫并去除缓冲液。
加入含有叠氮化钠的培养基以使其麻醉。
将线虫置于琼脂糖垫上,加盖盖玻片,在荧光显微镜下观察。利用自发荧光显示细胞核边界。
与对照组中弥散的细胞质信号相比,实验组中强烈的细胞核内 SKN-1 信号表明蛋白向细胞核重定位,证实病原体诱导了氧化应激。
使用移液器,将约100条L4幼虫分别加入每个THY链球菌接种的平板和NGM大肠杆菌(E. coli)接种的平板中。每种细菌菌株使用三个平板。
将培养皿在25摄氏度下孵育2至3小时。随后从孵育箱中取出培养皿,用M9W洗涤,并将线虫收集至15毫升锥形管中。
将蠕虫按照之前离心步骤的方法清洗三次。用移液法吸除大部分M9W。然后向蠕虫沉淀中加入500微升含有2毫摩尔叠氮化钠或盐酸四咪唑的M9W,以进行麻醉。
将含有线虫沉淀的离心管在室温下孵育15分钟。然后,取15微升线虫悬浮液滴加到预先制备好的琼脂糖垫上。在荧光显微镜下,使用FITC和DAPI滤光片观察SKN-1的定位情况。
以10倍和20倍放大倍数对线虫进行成像。根据定位程度分为三个等级对线虫进行评分:低度定位,即未观察到细胞核定位;中度定位,即SKN-1 BCGFP出现在线虫的前端或后端;高度定位,即在所有肠细胞中均观察到SKN-1 BCGFP的细胞核定位。
本方案通过追踪GFP标记的SKN-1的定位,演示如何在秀丽隐杆线虫(C. elegans)中可视化病原体诱导的氧化应激。理解这一过程对于研究模式生物中细胞对氧化应激的响应至关重要。
该方法能够在遗传学上可操控的模型中直接可视化病原体诱导的氧化应激反应,通过将微生物毒力因子与宿主应激通路相联系,支持早期阶段的靶点验证。转录因子核转位的定量评分为主机-病原体相互作用及氧化损伤机制的假设提供了机制性读出,有助于降低假设风险。该方法提供了一个可扩展、可重复的系统,可用于筛选调节与炎症疾病模型相关的应激反应通路的化合物或遗传修饰因子。
该方法适用于从靶点假设验证到机制确认,再到临床前优先级排序的整个发现流程,尤其适用于涉及氧化应激和解毒反应的通路。
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最后更新:29 八月 2026