2011年3月15日
我们展示了利用DNA芯片为表达对神经系统的分析。我们描述了RNA的质量控制,样品标签,和阵列杂交和扫描。
本实验的总体目标是使用自动化混样装置进行微阵列实验。首先在RNA扩增和标记后,利用生物分析仪分析RNA样品的质量,然后将RNA样品与微阵列进行杂交。
最后,对杂交后的微阵列进行洗涤并扫描。最终通过双色荧光微阵列图像的分析,获得显示RNA转录本差异表达的结果。由于该实验需要使用特殊设备,微阵列杂交步骤难以掌握,因此本方法的可视化演示至关重要。
质量控制分析首先按照书面操作规程准备 2, 100 bioanalyzer 仪器和芯片上样站。然后用移液器吸取 550 微升凝胶基质,加入随 RNA 6,000 nano 试剂盒提供的离心过滤器中,在室温下以 1,500 RCF 离心 10 分钟进行过滤。
然后将过滤后的凝胶分装成每份65微升,可在4摄氏度下保存长达一个月。将染料浓缩液涡旋震荡10秒,取1微升加入一份65微升的凝胶中。将混合物充分涡旋后,于室温下以13,000 RCF离心10分钟,所得滤液可用于上样运行样品。
首先将芯片放置在上样工作站上。本演示中使用的是 RNA 6,000 nano 芯片。在黑色背景上标有白色 G 的加样孔中加入 9 µL 凝胶染料混合物。
将移液管吸头置于孔板最底部。将注射器活塞定位在1毫升处,并关闭引液站。缓慢而稳定地按压活塞,直至其被卡扣固定。
30 秒后,松开夹子,让推杆上升几秒钟。待推杆停止后,将推杆拉回至 1 毫升位置,并打开预润站。加入 9 µL 的凝胶染料。
在两个孔中分别混匀。取五微升标记物(Mark G)加入到泳道孔以及12个样品孔中。接着,将一微升变性的DNA标记物加入泳道孔,将一微升每种变性样品分别加入各样品孔中。
最后,向每个未使用的样本孔中加入一微升的上样标记物。上样后,将芯片在2,400 RPM转速下涡旋震荡一分钟。启动2,100 Expert软件后,放置芯片并关闭盖子。
确保选择正确的端口,并在加样后五分钟内运行检测,以防止蒸发。RNA扩增和标记的操作方法详见书面实验方案。标记完成后,纯化cRNA以去除未掺入的核苷酸。使用Cogens的简易小柱,可用NanoDrop 2000分光光度计对标记后的cRNA进行定量。
在微阵列检测模式下,记录样品浓度、得率和比活性。进行微阵列杂交前,至少需要达到825纳克的得率和每微克8皮摩尔的比活性,且应在杂交前至少两小时完成。打开杂交仪,并将其温度设置为65摄氏度。
本方案描述了使用安捷伦(Agilent)四乘40 4K芯片与罗氏(Roche)NimbleGen杂交系统,以及在按照书面方案完成cRNA片段化后,使用四个混合室进行杂交的步骤。准备杂交室,将微阵列芯片放入组装/拆卸工具中,条形码朝上。首先打开一个A4混合室,暴露固定芯片的粘合面,并将芯片与组装/拆卸工具固定,以防止任何移动。
将A四通道混样器从远端开始放置在载玻片上。确保其与工具正确对齐,并沿阵列粘附混样器。从混样器末端滑动,取下载玻片与混样器组件。
使用压边工具,沿粘合垫圈的整个边缘按压,以确保其与载玻片紧密粘合。粘合剂与载玻片之间被困住的小气泡在深色背景下可见。请额外花时间用压边工具将这些气泡去除。
芯片现在已准备就绪,可以加样。使用正向置换移液器加入100 µL杂交样品。将吸头紧紧插入加样孔内,缓慢而平稳地 dispensing,以避免在芯片区域滞留气泡。
当样本覆盖整个阵列且液体开始从通气孔快速流出时,立即移开移液器,但不要释放活塞。待吸头离开玻片后,轻轻吸取两个孔处的多余液体,注意不要将样本从反应室中抽出。然后使用镊子将贴纸覆盖在孔口上。
将玻片放置于杂交仪上,并检查气囊孔是否准确对准O型环。这将确保杂交过程中充分混匀。合上玻片盖和仪器盖。
将仪器设置为混合模式B,在65摄氏度下杂交芯片17小时。杂交完成后,用洗涤缓冲液一填充标记为A的玻璃培养皿,该培养皿应足够大,能够容纳组装/拆卸工具,并留有操作空间。所有洗涤步骤均应使用玻璃器皿进行,因为塑料器皿容易浸出化合物,导致芯片背景信号升高。
将一个载玻片架和一根搅拌子放入标记为B的染色缸中,加入洗涤缓冲液至浸没载玻片架,然后将染色缸置于室温下的搅拌器上。同时,将一根搅拌子放入另一个标记为C的空染色缸中,并将其放置在搅拌器上。
从杂交仪中取出芯片,放入芯片拆卸工具中。用一只手从两侧分别握住芯片拆卸工具和载玻片,将整个装置浸入 a 培养皿中。小心剥离 A four 混合器,注意不要划伤芯片区域。
迅速将玻片放入染色架和染色缸 B 中。由于 SCI five 染料对臭氧敏感,应尽量减少暴露在空气中的时间。以中等速度搅拌,洗涤擦除液 1 分钟。用预热的洗涤缓冲液二填充染色缸 C。
将载玻片转移并洗涤一分钟。洗涤后,非常缓慢地将染色架从染色皿 C 中取出,以尽量减少载玻片上残留的液滴。通过离心旋转两分钟使载玻片干燥。
然后将载玻片放入一个50毫升的锥形管中,并立即使用Molecular Devices公司的GenePix 4,000B扫描仪进行氩气扫描,以避免信号丢失。以下是自人脑组织中分离的四个RNA样本示例。使用RNA 6,000芯片在2,100 Bioanalyzer上评估肿瘤组织样本的质量。
实心箭头和空心箭头分别指示18S和28S rRNA物种的位置。RNA完整性数(RIN)是RNA质量的定量度量指标,高质量的总RNA样品在生物分析仪上进行质量控制检测时,应仅产生对应于两种主要核糖体RNA物种的两个主要峰。
一些RNA降解会在第一个核糖体RNA峰之前表现为拖尾弥散,而严重降解时28S rRNA峰则显著降低。低质量的RNA会在低保留时间处呈现宽峰或一系列峰,而两个核糖体RNA峰的强度会非常低,甚至无法识别。
高质量的芯片应能在相对较低的PMT值下产生高信号。在实验样本和参照样本中,大多数转录本的表达水平应相近。基因表达发生大范围显著变化的情况可能缺乏生物学意义。
因此,芯片的大部分区域应呈现黄色,而非绿色或红色。高质量的信号还应处于动态范围内,使得信号直方图完全重叠,这可在芯片图像的散点图中观察到。观看本视频后,您应能够充分理解如何使用自动化杂交设备进行微阵列实验。
本文展示了在神经系统中使用DNA微阵列进行表达谱分析的方法。详细介绍了RNA质量控制、样品标记以及微阵列杂交和扫描的过程。
DNA微阵列表达谱分析使生物制药研发团队能够研究与疾病相关的神经系统的转录响应,从而支持靶点验证和作用机制的风险评估。定量双色杂交可对基因表达变化提供可靠的预测依据,为早期发现阶段的立项或终止决策提供信息。该工作流程将RNA质量控制和杂交定位为面向神经科学药物发现的可扩展、可重复筛选检测中的基础步骤。
微阵列工作流程适用于从靶标假设验证到先导化合物鉴定的发现连续过程,在此过程中,转录谱分析可为靶标选择性和通路调控提供信息。