2007年8月22日
知识是需要许多组织培养操作活菌的确切人数。本协议描述了如何区分活细胞和死细胞和使用hemacytometer量化细胞。虽然它描述了人类神经干/前体细胞(hNSPCs)计数,它可用于其他类型的细胞。
现在我将向您展示如何计数人神经前体细胞。当您需要将细胞用于免疫化学实验或使用核因子装置进行转染时,就需要对细胞进行计数。我使用带有边缘网格的相差显微镜血细胞计数板,同时使用一种名为台盼蓝的染料。该染料可用于区分活细胞与死细胞。
死亡或即将死亡的细胞会摄取这种染料而呈现蓝色。当你在血细胞计数板中观察时,活细胞能够排斥这种染料,因此不会呈现蓝色。通过这种方法,你可以判断细胞的存活率,以制备含有台盼蓝和培养基的溶液。
我将向这个0.5毫升离心管中加入20微升的台盼蓝溶液。然后,再加入25微升的培养基。这样,目前我共有45微升的台盼蓝与培养基混合溶液,因此当我加入5微升的细胞悬液后,即可实现1比10的稀释比例。
现在,我将加入5 µL细胞悬液。首先,我会用手指轻弹管壁使细胞充分重悬。接下来,我需要确保该溶液充分混匀。
因此,我将把床升降几次。最后,我会将约12微升的这种细胞悬液加入血细胞计数板中。它有两个加样口,您可以使用其中任意一个。
因此,您只需将溶液从这个端口加入,液体就会通过毛细作用被吸入。现在我已准备好进行计数。这是在10倍镜下观察血细胞计数板的视野,此处有一个包含16个方格的象限。
如您所见,我们可以在此观察到活细胞和死细胞。此处这些是活细胞,例如这个、这个以及这个。此外,我们还有一些死细胞,例如这个。
如果仔细观察,死细胞呈深蓝色,而活细胞周围则呈现出类似冰晶的亮圈。现在我将开始计数所有活细胞,计数顺序为从左到右、从上到下。
1、2、3、4、5、6、33、1、32、33、34、3、5、3、6。因此,该象限中共有六个细胞。当观察到位于象限边界线上的细胞时,例如此处这条线上的细胞,为了保持一致性,我仅计数位于左侧边界和上侧边界上的细胞。
我会对血细胞计数板上所有四个象限的边界细胞进行持续计数。接下来,我们将计算每微升中含有多少个细胞。为此,我将取每个象限细胞数的平均值(即38),再乘以10,这个系数是由计数室的尺寸所决定的。
同时,我们还要乘以10,这是本实验中的稀释倍数。最终,我们将得到每微升中的细胞数量。因此,在本例中,每微升含有3,800个细胞。
由于我们将细胞沉淀重悬于500微升溶液中,因此可以计算出细胞的总数。至此,所有步骤均已完成。
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本方案概述了一种使用血细胞计数板对人神经干细胞/前体细胞(hNSPCs)进行计数的方法。该方法强调了在多种组织培养应用中区分活细胞与死细胞的重要性。
准确量化存活的人类神经干细胞/前体细胞(hNSPCs)对于神经科学药物发现中可重复的组织培养工作流程至关重要。本方案可实现可靠的细胞活力评估和浓度测定,支持后续实验应用(如免疫细胞化学和转染)中一致的实验接种。通过使用台盼蓝染色结合血细胞计数板进行活/死细胞区分的标准化操作,该方法可提高早期靶点验证和检测方法开发流程中的预测可靠性。
该方法适用于早期发现研究的连续流程,支持从靶点验证到检测优化及临床前药效测试的可靠细胞制备。