0 次观看 • 4:11 分钟 • April 30th, 2023
大脑中的单核细胞,包括淋巴细胞和单核细胞,在维持大脑功能和稳态中发挥着关键作用。
为了分离这些单核细胞,首先取经生理盐水灌流的新鲜收获的小鼠脑组织。
灌流可清除血管中的血液及其成分,从而在后续步骤中实现脑内常驻免疫细胞的分离。
现在,用适当的培养基冲洗脑组织,以去除黏附的红细胞。随后进行剪碎处理,以获得小块组织。
将组织块匀浆,以获得单细胞和细胞碎片的悬液。
向此悬浮液中加入预冷的培养基和适当体积的适宜密度梯度介质,以形成低密度梯度介质。
接下来,加入特定体积的高密度梯度介质;高密度梯度介质在底部形成独立的一层,从而构建出不连续的密度梯度。
在高速和低温条件下离心该悬液。单个核细胞位于两种密度梯度介质层之间的界面处。
弃去含有细胞碎片和髓鞘的上层,髓鞘是包裹神经细胞轴突的脂肪组织鞘。
将界面层转移至含有适当培养基的新离心管中,并进行离心。
纯化的单个核细胞会沉淀成团,可重悬于缓冲液中以进行后续分析。
小心地从鼻部向颈部切开颅骨,将每只动物的脑组织从颅腔中取出,分别放入含有10毫升RPMI培养基的50毫升离心管中。
充分混匀各管,以去除贴壁的红细胞,然后用抽吸法移除培养基。向每管中加入10毫升新鲜培养基,并将脑组织转移至各自的100毫米培养皿中。
用剃刀将每个脑组织切碎,并使用塑料移液管将一个培养皿中的组织尽可能全部转移至6毫升培养基中,然后将其加入预冷的7毫升烧结玻璃匀浆器中。
先使用研杵的“松散”活塞研磨脑组织,再使用“紧密”活塞继续研磨直至组织悬浮液呈均匀状态。然后,将所得的组织匀浆倒入预冷的15毫升锥形管中,并置于冰上。
所有样品匀浆完成后,向每管中加入新鲜培养基,将体积调整至7毫升,然后将每种组织悬液加入新的预冷15毫升离心管中,每管含有3毫升100%基底膜基质。
轻轻倒置混匀数次,用3毫升移液器小心缓慢地在每份组织溶液样品下方加入1毫升70%密度梯度溶液。
通过密度梯度离心法分离细胞,并移除几乎所有的上层液体,注意彻底清除所有髓鞘成分。
将界面转移至新的15毫升离心管中,并用新鲜培养基调整体积至10毫升。然后再次离心样品,弃去上清液,再将每管沉淀重悬于约100微升培养基中。
本文详细介绍了从小鼠脑组织中分离单核细胞的方法,强调了这些细胞在脑功能和稳态中的重要作用。该方法包括灌流、组织匀浆以及密度梯度离心,以纯化这些免疫细胞用于后续分析。
分离脑内常驻的单核细胞,可通过提供一个纯化的系统来研究淋巴细胞和单核细胞在中枢神经系统稳态及疾病模型中的功能,从而在神经免疫学靶点验证中实现机制层面的风险评估。该技术通过生成可重复、定量的细胞悬液用于后续功能检测,减少外周污染物带来的生物学噪声,从而提高早期发现阶段的预测可信度。该方法与临床前模型开发相一致,在神经炎症和神经退行性疾病项目中,对中枢神经系统免疫细胞浸润的理解有助于制定基于风险评估的推进决策。
该方法适用于从靶点验证到临床前表征的整个发现流程,其中分离的脑单个核细胞可作为神经炎症疾病模型中免疫调节剂活性的主要检测指标。
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最后更新:29 八月 2026