0 次观看 • 3:35 分钟 • July 8th, 2025
从化学固定的肿瘤细胞悬液开始。
加入最佳浓度的肿瘤结合型免疫球蛋白G,该抗体可与肿瘤细胞表面抗原结合,形成免疫复合物(ICs)。
将免疫复合物转移至含有贴壁树突状细胞的培养板中。孵育。
树突状细胞识别免疫复合物,将其内化,并加工成肽段片段。
这些片段被加载到主要组织相容性复合体II类(MHC-II)分子上,并与共刺激分子CD86一起呈现在细胞表面。
移除培养基。加入细胞解离缓冲液,用力吹打以使细胞脱离。
将细胞转移至离心管中。
离心并用封闭溶液重悬细胞,以阻断非特异性相互作用。
使用靶向 MHC-II 和 CD86 的荧光染料标记抗体混合物进行孵育。
加入DNA结合染料,短暂孵育以染色死细胞核。
通过流式细胞术鉴定共表达 MHC-II 和 CD86 的活细胞,以确认免疫复合物介导的树突状细胞活化。
首先,在室温下用1.8%缓冲的多聚甲醛固定细胞10分钟。将细胞悬液接种至U型96孔板的每孔中。接着,在每孔中加入不同稀释度的肿瘤结合抗体。然后,将细胞在冰上孵育15至20分钟。
孵育后,用150微升磷酸盐缓冲液洗涤细胞,然后以400 × g离心 g 在4摄氏度下孵育5至10分钟。离心后,弃去上清液,并将细胞洗涤两次。用含有荧光素偶联二抗的100微升FACS缓冲液重悬细胞。随后,将培养板置于冰上孵育15至20分钟。
孵育15至20分钟后,加入200微升FACS缓冲液以洗涤细胞。在400 × g 条件下离心5至10分钟。弃去上清液。通过流式细胞术分析肿瘤结合情况,并确定包被细胞所需的免疫球蛋白G的最低浓度。
当细胞包被了最低浓度的免疫球蛋白G后,按1:5的比例将CFSE标记的肿瘤免疫复合物加入单核细胞来源的树突状细胞中。随后,在完全培养基中于37°C孵育12至16小时(过夜)。进行流式细胞术(FACS)分析以检测单核细胞来源的树突状细胞的活化情况。
本文介绍了一种利用肿瘤结合性免疫球蛋白G及免疫复合物激活树突状细胞的方法。该过程包括将树突状细胞与这些复合物共同孵育,随后通过流式细胞术分析以确认细胞的活化状态。
本方案通过免疫复合物介导的抗原摄取,实现树突状细胞活化的功能验证,为免疫调节候选物的评估提供了一种机制性读出方法。通过将抗原加工过程与MHC-II和CD86表面表达相关联,该方法可支持免疫肿瘤学项目中的靶点去风险化。基于流式细胞术的读出系统可为早期发现阶段的决策提供定量、可重复的数据支持。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物优化的免疫肿瘤学发现全过程,其中树突状细胞的活化可预测免疫治疗的潜力。
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最后更新:29 八月 2026