2019年1月7日
本文介绍了一种用于分析人原代T细胞与抗原呈递细胞之间免疫突触的定性和定量完整工作流程。该方法基于成像流式细胞术,可在相对较短的时间内获取并分析数千个细胞的图像。
该方法有助于解答人类免疫学领域的关键问题,例如白细胞在分子和细胞水平上如何进行相互通讯。该技术的主要优势在于,可在相对较短的时间内对外周血未经纯化的原代人类T细胞进行离体分析。本次实验操作将由本实验室的技术员 Henning Kirchgessner 演示。
首先,在50毫升锥形管中将1毫升新鲜采集的人外周血与30毫升ACK裂解缓冲液混合。室温孵育8分钟后,用PBS加满锥形管,进行离心洗涤,并将沉淀重悬于2毫升培养基中,在37摄氏度下孵育60分钟。孵育结束后,在各FACS管中分别加入5 × 10⁵个金黄色葡萄球菌肠毒素B(SEB)负载或未负载的Raji细胞,溶于500微升培养基中,随后加入650微升泛白细胞悬液。
将共培养物离心,将沉淀重悬于150微升新鲜培养基中,在37摄氏度下孵育45分钟。然后,在加入1.5毫升1.5%多聚甲醛的同时,以100 rpm轻轻涡旋细胞10秒。室温下反应10分钟后,加入1毫升含1% BSA的PBS终止固定,并通过离心收集细胞。
将沉淀重悬于 100 微升含 BSA 和 0.1% 皂苷的 PBS 中,并将细胞样品加入 96 孔 U 型底板的两个独立孔中。室温孵育 15 分钟后,离心平板,并将沉淀重悬于 50 微升含 BSA 和皂苷的 PBS 中,加入荧光标记的抗体或目标化合物,避光室温孵育 30 分钟。孵育结束后,用 150 微升含 BSA 和皂苷的 PBS 洗涤细胞三次,并将沉淀重悬于 60 微升 PBS 中。
为了通过流式细胞术对细胞进行成像,首先打开分析软件,检查液体液位,然后在仪器菜单中点击启动(Startup)。接着点击加载(Load),并在提示时将样品加载到进样口。在照明(Illumination)选项卡下,将激发激光功率调整至适当的纳米波长长度。
然后,调整第四通道和第十一通道的门控,并调整第一通道的区域。为评估门控和激光功率的设置,将“视图”菜单切换至相应的门控,调节门控和激光功率,直至细胞及细胞对清晰可见。接着,在“文件采集”选项卡中,定义样本名称、需采集的图像数量以及适用于CD3染色的门控,然后点击“采集”以开始采集。
为了分析获取的细胞图像,请打开相应的分析软件。根据补偿下拉菜单中的说明,生成补偿矩阵,并将该矩阵保存为 comp date ctm。接着,打开一个原始图像文件,在窗口中应用 comp date ctm 以生成已补偿的图像以及默认的数据分析文件。
打开经过补偿的图像文件后,将图像转换为彩色模式。在图像库属性工具栏中调整查找表,以获得最佳的可见颜色。在分析菜单中打开掩膜管理器,通过为第五通道选择60%阈值掩膜并填充该掩膜,定义T细胞,从而生成T细胞掩膜。
接下来,为第二通道选择宽度为三像素的谷值掩膜(Valley mask),以生成谷值掩膜,并将T细胞掩膜与谷值掩膜合并,创建T细胞突触掩膜。为计算T细胞中总的CD3表达量,打开特征管理器(Feature Manager),创建特征:强度、T细胞、第五通道。为计算T细胞中F-actin的总量,创建特征:强度、T细胞、第六通道。
为了评估免疫突触中CD3的含量,创建特征:强度、T细胞突触、通道五。为了确定免疫突触中F-actin的含量,创建特征:强度、T细胞突触、通道六。最后,为了定义F-actin和CD3的富集程度,分别计算免疫突触中F-actin或CD3的比值与所选蛋白总表达量的比值。
在这些图表中,展示了利用小体积人血样本中未经纯化的全白细胞,分析替代性抗原呈递细胞(APCs)与T细胞之间免疫突触内蛋白质富集情况的关键设门策略概览。此处显示的是在无SEB存在时,T细胞-APC共轭复合物在免疫突触内CD3和F-actin水平较低的代表性图像;而在SEB存在时,这些T细胞-APC共轭复合物显示出明显的CD3和F-actin富集。在无超抗原存在时,15%的T细胞在免疫突触处表现出CD3和F-actin的共富集,而在超抗原存在时,该比例达到29%。
事实上,在缺乏超抗原的情况下,细胞中少于20%的总F-actin在免疫突触处聚集,而在存在超抗原时,该比例超过30%。值得注意的是,即使在缺乏超抗原的情况下,CD3也能在免疫突触处聚集,尽管添加超抗原后其聚集程度显著增加,这表明该方法适用于定量分析T细胞-抗原呈递细胞免疫突触处的蛋白质聚集情况。一旦掌握,若操作得当,该技术可在六至七小时内完成。
在进行该实验操作时,重要的是要记得包含所有相关的对照,包括不含超级抗原的样本,因为即使使用不含SEB的抗原呈递细胞(APCs),也会发生蛋白质富集现象。完成该操作后,可进一步采用其他方法,如超分辨率显微镜技术,以探究免疫突触精细结构的相关问题。该技术建立后,为细胞通讯领域的研究人员探索人类免疫突触的机制奠定了基础,推动了基础研究、临床试验以及转化医学的发展。
观看本视频后,您应能够充分理解如何在人源T细胞离体条件下分析T细胞-抗原呈递细胞连接区及免疫突触。请务必注意,操作原代人源材料可能存在生物危害,因此在进行本实验操作时,应始终采取相应预防措施,例如佩戴手套或在生物安全二级条件下操作。
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本文介绍了一种利用成像流式细胞术分析人T细胞与抗原呈递细胞之间免疫突触的工作流程。该方法可快速获取并评估大量细胞图像。
该工作流程能够对未经纯化的全血样本中分离的原代人T细胞进行免疫突触的高通量形态学分析,支持在早期免疫学靶点验证中进行机制性风险评估。通过成像流式细胞术定量分析T细胞与抗原呈递细胞界面处的蛋白富集情况,可对靶点结合及信号通路调控提供预测性信心。该方法适用于小体积患者样本,有助于从发现阶段到临床生物标志物评估的转化研究连续性。
该方法适用于从靶点假设验证到先导化合物优化的整个发现流程,尤其适用于免疫调节剂和疫苗研究,其中免疫突触动力学具有机制相关性。