0 次观看 • 3:23 分钟 • August 7th, 2025
从转基因小鼠间充质干细胞开始——这类多能细胞来源于骨髓。
这些细胞经过基因工程改造,可表达绿色荧光蛋白(GFP)以及支持神经元生长和存活的治疗性神经营养因子。
用缓冲液洗涤细胞,并进行固定以保持细胞完整性。
用缓冲液再次洗涤,然后加入溶液以通透细胞膜和核膜,并阻断非特异性结合位点。
加入针对细胞增殖标志物蛋白的一抗,该蛋白仅在分裂细胞的细胞核中表达。
用缓冲液洗涤以去除未结合的抗体。
加入针对一抗的荧光素标记二抗以及用于细胞核复染的DNA结合染料。
用缓冲液洗涤以去除未结合的试剂。
将培养板装入高内涵筛选系统,并采集图像以检测荧光信号。
细胞增殖标志物的表达表明细胞正在进行活跃的分裂,提示转基因细胞适用于神经治疗应用。
进行Ki-67细胞增殖实验时,使用0.1摩尔磷酸缓冲液冲洗细胞培养物1分钟。重复洗涤一次后,在室温下用4%多聚甲醛(PFA)固定细胞培养物20分钟。
固定后,去除PFA,并用PBS清洗各孔,每次七分钟,共清洗三次。根据文本方案封闭细胞后,向每个孔中加入100微升一抗溶液。盖好培养板,在4摄氏度下孵育过夜。
细胞经三次洗涤,每次七分钟,加入二抗,避光放置,在室温下孵育90分钟。再经过三次洗涤后,盖上培养板,于4摄氏度保存直至成像。
为进行自动成像,将免疫标记的培养板装入高内涵筛选(HCS)系统,并让培养板平衡20分钟。打开HCS系统的图像采集与分析软件。选择使用1倍相机像素合并(binning)和增益设置为2的10倍物镜的采集参数。
使用自动曝光功能找到细胞所处的Z平面,并计算每个感兴趣波长的偏移量。在本演示的分析中,需采集DAPI、GFP和Cy3的图像。
选择阴性对照孔在图像采集时无信号的最大强度水平。对阳性孔使用相同的阈值设置。最后,采集图像并将其保存至数据库,然后根据文本方案进行图像分析。
本研究聚焦于利用经基因工程改造以表达GFP和神经营养因子的转基因小鼠间充质干细胞。该方法包括采用免疫荧光技术评估细胞增殖,表明其在神经治疗应用中的潜力。
评估基因工程改造的间充质干细胞的增殖能力,可预测其在神经治疗应用中的适用性。这种高内涵表征方法通过确认表达治疗因子细胞的功能活性,支持靶点验证。该方法能够在早期发现阶段将转基因表达与增殖能力关联起来,从而实现机制层面的风险评估,为基于干细胞的治疗策略提供决策依据。
该方法适用于从靶点验证到临床前开发的整个发现流程,可支持神经治疗领域的干细胞工程工作流程。
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最后更新:22 八月 2026