热酚水提取纯化及革兰氏阴性菌脂多糖的可视化

该程序的总体目标是从革兰氏阴性菌中提取 LPS。这是通过首先在适当的培养基中培养 5 毫升过夜细菌培养物并将培养物调整至 600 纳米的光密度 0.5 来实现的。接下来，通过微量离心使细菌沉淀，并将细胞重悬于含有 SDS 和束乙醇或 capto 乙醇的 tris 缓冲液中。

然后将细胞裂解物煮沸并用蛋白酶和核酸酶处理。最后，用热的苯酚水和乙醚进行两次连续萃取，小心去除并保留蓝色水层。最终，通过使用 LPS 特异性抗体通过 SDS 页面和蛋白质血液分析分离或直接染色凝胶中的多糖，可以获得显示 LPS 和细菌菌株的数量以及存在与否以及 O 抗原链长度模式的结果。

与 Hitchcock 和 Brown 的蛋白酶处理相比，该技术的优势在于，该技术可产生纯 LPS 样品，可通过 SDS 页面和蛋白质印迹更好地分离。该方法可以深入了解 VIR 中脂多糖的合成和调节到几乎任何革兰氏阴性菌中，包括大肠杆菌和沙门氏菌，以及生物防御和新出现的病原体，如埃拉和醋酸杆菌，以培养细菌。对于 LPS 提取，在 5 毫升补充有抗生素的 LB 中设置革兰氏阴性菌的过夜培养物。

如有必要，将培养物在 200 RPM 和 37 摄氏度的振荡培养箱中培养过夜。使用 LB 将培养物稀释 1 到 10，然后根据结果测量 600 纳米的光密度。制备 1.5 毫升细菌悬浮液，最终光密度为 600 纳米 0.5。

微量离心机中以 10、600 倍 G 的离心力沉淀细菌 10 分钟。然后取出并丢弃上清液。为了提取 LPS，制备以下溶液，一种 XSDS 缓冲液、4% 斗鱼 capto 乙醇或 BME 4%SDS 和 20% 甘油，溶于 0.1 摩尔 tris HCL pH 6.8 中，含一小撮溴酚蓝和 10 毫克/毫升 DNA 一 RNA 和蛋白酶 K 溶液，溶于无菌蒸馏水中重悬。

200 微升一种 XSDS 缓冲液中沉淀的细菌通过上下移液确保沉淀完全重悬。将悬浮菌在水浴中缓慢煮沸 15 分钟。然后让溶液在室温下冷却 15 分钟。

作为可选步骤，加入 5 μL 的 DNA one 和 RNA 溶液，并将样品在 37 摄氏度下孵育 30 分钟。加入 10 微升蛋白酶 K 溶液，并将样品在 59 摄氏度下孵育 3 小时。在每个样品旁边，加入 200 微升冰冷的 tris，饱和苯酚。

盖紧盖子，将每根试管涡旋 5 到 10 秒。将样品在 65 摄氏度下孵育 15 分钟。涡旋，偶尔将它们冷却至室温。

然后在通风橱下，向每个样品中加入 1 毫升室温乙醚，涡旋 5 到 10 秒。将样品以 20， 600 倍 G 离心 10 分钟，然后小心地将其从离心机中取出。从每个样品中提取底部的蓝色层，避开上面的透明层。

再加入 200 微升冰冷的 tris、饱和苯酚，然后对每个试管重复提取。加入 200 微升两种 XSDS 缓冲液。在 8 至 15% SDS 聚丙烯酰胺凝胶上分离 5 至 15 μL 每个 LPS 样品。

此处显示的是从囊性纤维化患者的痰液样本中分离的不同菌株制备的 LPS 样品的 12%SDS 页面凝胶。不同的条带模式反映了 O 抗原的不同数量，重复单元连接到核心寡糖上。在样本 1 和 6 中可以看到相似数量的重复单元。

不要忘记，使用苯酚达乙醚可能是危险的，应采取预防措施，例如佩戴防护性个人防护设备，如实验室外套、手套和护目镜，并且在尝试此程序时应在通风橱中进行这些实验。快速进行提取非常重要，这样您就不会在处理过程中丢失样品。按照此程序，需要采用蛋白质免疫印迹或通过银 STR 或其他方法可视化脂多糖的方法，以可视化菌株之间的相关性。