Name: 流感聚合酶PB2亚基基因结构测定多目标并行处理方法 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-06-28T12:00:00.000+00:00
Duration: 22 min 10 s
Description: 学习利用多目标并行处理策略测定流感病毒PB2聚合酶亚基的三维结构。该方法通过X射线晶体学技术提高蛋白质结构解析的成功率，为基于结构的药物设计提供高质量蛋白样品和研究基础。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

作者谨向SSGCID联盟的所有成员致以感谢。SSGCID目标的实现得益于Emerald Bio全体团队成员的巨大努力。本研究由美国国家过敏与传染病研究所、美国国立卫生研究院及美国卫生与公共服务部资助，联邦合同编号为HHSN272200700057C。

<ol><li>Lowen, A. C., Mubareka, S., Steel, J., Palese, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influenza+virus+transmission+is+dependent+on+relative+humidity+and+temperature%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathogens%22%5BJournal%5D)">Influenza virus transmission is dependent on relative humidity and temperature.</a> PLoS Pathogens. 3 (10), 1470-1476 (2007).</li>
<li>Yamada, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+and+structural+characterization+of+a+host-adapting+amino+acid+in+influenza+virus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Biological and structural characterization of a host-adapting amino acid in influenza virus.</a> PLoS Pathog. 6, e1001034(2010).</li>
<li>Lorimer, D., Raymond, A., Walchli, J., Mixon, M., Barrow, A., Wallace, E., Grice, R., Burgin, A., Gene Stewart, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Composer%3A+database+software+for+protein+construct+design%2C+codon+engineering%2C+and+gene+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Composer: database software for protein construct design, codon engineering, and gene synthesis.</a> BMC Biotechnol. 9, 36(2009).</li>
<li>Kabsch, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration%2C+scaling%2C+space-group+assignment+and+post-refinement%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cryst.+D%22%5BJournal%5D)">Integration, scaling, space-group assignment and post-refinement.</a> Acta Cryst. D. 66, 125-132 (2010).</li>
<li>McCoy, A. J., Grosse-Kunstleve, R. W., Adams, P. D., Winn, M. D., Storoni, L. C., Read, R. J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phaser+crystallographic+software%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Cryst%22%5BJournal%5D)">Phaser crystallographic software.</a> Appl. Cryst. 40, 658-674 (2007).</li>
<li>Kuzuhara, T., Kise, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+basis+of+the+influenza+A+virus+RNA+polymerase+PB2+RNA-binding+domain+containing+the+pathogenicity-determinant+lysine+627+residue%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Structural basis of the influenza A virus RNA polymerase PB2 RNA-binding domain containing the pathogenicity-determinant lysine 627 residue.</a> J. Biol. Chem. 284, 6855-6860 (2009).</li>
<li>Murshudov, G. N., Skubàk, P., Lebedev, A. A., Pannu, N. S., Steiner, R. A., Nicholls, R. A., Winn, M. D., Long, F., Vagin, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((REFMAC5+for+the+refinement+of+macromolecular+crystal+structures%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cryst.+D%22%5BJournal%5D)">REFMAC5 for the refinement of macromolecular crystal structures.</a> Acta Cryst. D. 67, 355-367 (2011).</li>
<li>Cowtan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+developments+in+classical+density+modification%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cryst.+D%22%5BJournal%5D)">Recent developments in classical density modification.</a> Acta Cryst. D. 66, 470-478 (2010).</li>
<li>Chen, V. B., Arendall, W. B., Headd, J. J., Keedy, D. A., Immormino, R. M., Kapral, G. J., Murray, L. W., Richardson, J. S., Richardson, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MolProbity%3A+all-atom+structure+validation+for+macromolecular+crystallography%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cryst.+D%22%5BJournal%5D)">MolProbity: all-atom structure validation for macromolecular crystallography.</a> Acta Cryst. D. 66, 12-21 (2010).</li>
<li>Mossessova, E., Lima, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ulp1-SUMO+crystal+structure+and+genetic+analysis+reveal+conserved+interactions+and+a+regulatory+element+essential+for+cell+growth+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Ulp1-SUMO crystal structure and genetic analysis reveal conserved interactions and a regulatory element essential for cell growth in yeast.</a> Mol. Cell. 5, 865-876 (2000).</li>
<li>Emsley, P., Lohkamp, B., Scott, W. G., Cowtan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Features+and+development+of+Coot%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cryst.+D%22%5BJournal%5D)">Features and development of Coot.</a> Acta Cryst. D. 66, 486-501 (2010).</li>
<li>Raymond, A. C., Haffner, T. E., Ng, N., Lorimer, D., Staker, B. L., Stewart, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+design%2C+cloning+and+protein-expression+methods+for+high-value+targets+at+the+Seattle+Structural+Genomics+Center+for+Infectious+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cryst.+F%22%5BJournal%5D)">Gene design, cloning and protein-expression methods for high-value targets at the Seattle Structural Genomics Center for Infectious Disease.</a> Acta Cryst. F. 67, 992-997 (2011).</li>
<li>Smith, E. R., Begley, D. W., Anderson, V., Raymond, A. C., Haffner, T. E., Robinson, J. I., Edwards, T. E., Duncan, N., Gerdts, C. J., Mixon, M. B., Nollert, P., Staker, B. L., Stewart, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Protein+Maker%3A+an+automated+system+for+high-throughput+parallel+purification%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Cryst.+F%22%5BJournal%5D)">The Protein Maker: an automated system for high-throughput parallel purification.</a> Acta Cryst. F. 67, 1015-1021 (2011).</li>
</ol>

作者是 Emerald Bio, Inc. 的员工。

多靶点并行处理
基于结构的药物设计在药物发现中起着重要作用。SSGCID 致力于向科学界提供来自 NIAID A-C 类病原体的三维蛋白质结构。广泛提供此类结构信息，最终将促进基于结构的药物设计的加速发展。
MTPP 方法的第一个关键步骤是构建体设计。针对每个靶蛋白设计多个构建体，可提高成功解析结构的概率，并加快周转速度。在流程的各个阶段，部分蛋白构建体失败是不可避免的。采用 PIPE 克隆方法可支持 MTPP 方法，能够在 96 孔板中快速生成大量构建体，而无需耗时的纯化步骤。将 PIPE 克隆与在相同 96 孔板格式中分析蛋白表达的能力（Caliper LabChip 90）相结合，可进一步加快整体流程。这些方法的结合使得能够快速鉴定出可产生可溶性蛋白的构建体，从而确保大规模蛋白表达与纯化的成功。
MTPP高通量技术成功的关键要素之一是Protein Maker（美国专利号6818060，Emerald Bio）仪器。Protein Maker是一种24通道并行液相色谱系统，专为提高高通量蛋白质生产和相关结构基因组学研究流程的效率而开发。与传统的单通道FPLC系统相比，采用前述Protein Maker操作方案时，其优势显而易见。单名操作人员可在八小时内并行纯化多达48个目标蛋白。相比之下，使用单通道FPLC系统的单名操作人员在同一时间段内最多只能纯化四个目标蛋白。利用Protein Maker获得的每个目标蛋白均能达到高水平的纯度，这对于后续蛋白质晶体生长以进行结构分析的成功至关重要。
局限性与故障排除
通过X射线晶体学解析三维结构是一项多阶段的工作，面临诸多挑战，其中之一是难以获得大量可溶性的目标蛋白。为克服溶解度问题，可采用的一种策略是使用替代表达宿主，因为E. coli细胞无法完成多种重要的真核生物翻译后修饰。在能够完成这些翻译后修饰的酵母、昆虫和哺乳动物细胞系中进行表达，通常是合适的替代方案。有时目标蛋白虽能表达，但在标准裂解条件下完全不溶。如Smith et al. 201113所述，Protein Maker可用于快速测试替代的细胞裂解条件，是一种宝贵的资源。这一策略通常对于保持目标蛋白在结构研究流程中的推进至关重要。在任何结构基因组学流程中，标准化的实验方案可能并不适用于每一个进入流程的目标蛋白，因此可能需要对各个目标进行个性化优化。例如，我们选择在每种情况下均使用20%乙二醇作为冷冻保护剂。当该条件不适用时，可能需要测试其他冷冻保护剂或不同浓度。
由于每种目标蛋白具有独特性，结构解析过程中耗时且难以预测的关键步骤是结晶。MTPP 流程通过从初始稀疏矩阵筛选开始进行优化，弥补了蛋白质结晶通常成功率较低的问题。来自商业化稀疏矩阵筛选的每一个初步结晶结果，均会进一步使用 E-Screen Builder（Emerald Bio）进行优化。优化筛选围绕初步结晶条件设计，调整缓冲液、盐类和添加剂的浓度。成功的优化筛选可获得适用于衍射研究和结构解析的晶体。
美国国家过敏与传染病研究所（NIAID）提出的功能基因组学项目为Emerald Bio及美国西北地区的其他三家机构提供资金支持，这四家机构共同组成了SSGCID（Emerald Bio、SeattleBiomed、华盛顿大学和太平洋西北国家实验室）。该联盟的每个成员均因其在应用尖端技术以实现NIAID结构基因组学项目目标方面的专长而被选中。迄今为止，SSGCID已向蛋白质数据库（PDB）提交了461个结构，使其成为全球第七大贡献者，并在2011年成为全球产出最多的机构。SSGCID提供的实验方案与方法旨在造福科学界，并推动传染病相关研究的持续发展。

<table><tbody><tr><td>引物</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>基因</td><td>DNA 2.0</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TE缓冲液</td><td>Qiagen</td><td>试剂盒中提供</td><td></td></tr><tr><td>96孔半裙边PCR板</td><td>VWR</td><td>10011-248</td><td></td></tr><tr><td>PFU Master Mix</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>6X橙色上样染料</td><td>Fermentas</td><td>R0631</td><td></td></tr><tr><td>10X TAE</td><td>Teknova</td><td>T0280</td><td></td></tr><tr><td>琼脂糖</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9414-10G</td><td></td></tr><tr><td>pET28载体</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>2-YT肉汤</td><td>VWR</td><td>101446-848</td><td></td></tr><tr><td>卡那霉素</td><td>Teknova</td><td>K2151</td><td></td></tr><tr><td>限制性内切酶</td><td>Fermentas</td><td></td><td></td></tr><tr><td>QIAquick凝胶回收试剂盒</td><td>Qiagen</td><td>28704</td><td></td></tr><tr><td>Top 10化学感受态细胞</td><td>Invitrogen</td><td>C4040-06</td><td></td></tr><tr><td>一次性槽（无菌，25 ml）</td><td>VWR</td><td>89094-662</td><td></td></tr><tr><td>透气盖膜（用于生物培养的涤纶薄膜）</td><td>VWR</td><td>60941-086</td><td></td></tr><tr><td>24孔块</td><td>VWR</td><td>13503-188</td><td></td></tr><tr><td>QIAvac 96</td><td>Qiagen</td><td>19504</td><td></td></tr><tr><td>BL21(DE3)化学感受态细胞（phageR）</td><td>NEB</td><td>C2527H</td><td></td></tr><tr><td>50%甘油</td><td>VWR</td><td>100217-622</td><td></td></tr><tr><td>TB培养基</td><td>Teknova</td><td>T7060</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 M Tris pH 8.0</td><td>Mediatech</td><td>46-031-CM</td><td></td></tr><tr><td>5 M NaCl</td><td>Teknova</td><td>S0251</td><td></td></tr><tr><td>甘油</td><td>Aldrich</td><td>G7893-4L</td><td></td></tr><tr><td>CHAPS</td><td>JT Baker</td><td>4145-01</td><td></td></tr><tr><td>咪唑</td><td>Sigma</td><td>56749-1KG</td><td></td></tr><tr><td>TCEP</td><td>Amresco</td><td>K831-10G</td><td></td></tr><tr><td>L-精氨酸</td><td>Amresco</td><td>0877-500G</td><td></td></tr><tr><td>苯并核酸酶</td><td>EMD</td><td>70746-3</td><td></td></tr><tr><td>溶菌酶</td><td>USB</td><td>1864525GM</td><td></td></tr><tr><td>10 kDa分子量截留透析管</td><td>Thermo</td><td>68100</td><td></td></tr><tr><td>Amicon Ultra 10 kDa分子量截留浓缩管</td><td>Millipore</td><td>UFC901024</td><td></td></tr><tr><td>HisTrap FF柱</td><td>GE</td><td>17-5255-01</td><td></td></tr><tr><td>HiTrap螯合柱</td><td>GE</td><td>17/0408-01</td><td></td></tr><tr><td>Compact Jr结晶板</td><td>Emerald Bio</td><td>EBS-XJR</td><td></td></tr><tr><td>结晶筛选试剂盒</td><td>Emerald Bio</td><td></td><td></td></tr><tr><td>100%乙二醇</td><td>Emerald Bio</td><td>EBS-250-EGLY</td><td></td></tr><tr><td>晶体磁力直头镊</td><td>Hampton Research</td><td>HR4-729</td><td></td></tr><tr><td>固定式冷冻环（0.1-0.2 mm）</td><td>Hampton Research</td><td>HR4-955</td><td></td></tr><tr><td>ALS型样品托盘（puck）</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>托盘镊（puck wand）</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>弯头镊</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>托盘推杆（puck pusher）</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

流感病毒聚合酶pb2亚基基因至结构解析的多靶点并行处理方法

Multi-target Parallel Processing Approach for Gene-to-structure Determination of the Influenza Polymerase PB2 Subunit

高致病性流感病毒株的大流行可能在全球范围内导致人类群体中广泛的发病和死亡。仅在美国，每年平均就有41,400人因感染流感病毒而死亡，186万人因此住院1。聚合酶基本蛋白2亚基（PB2）的点突变已被证实与病毒在人类中的适应性有关2。这些研究结果揭示了PB2作为毒力因子的生物学意义，从而凸显其作为抗病毒药物靶点的潜力。
美国国家过敏与传染病研究所（NIAID）提出的功能基因组学项目为Emerald Bio及美国西北太平洋地区的其他三家机构提供资金支持，这些机构共同组成了传染病结构基因组学西雅图中心（SSGCID）。SSGCID致力于向科学界提供NIAID A至C类病原体的蛋白质三维结构。将此类结构信息向科学界公开，有助于加快基于结构的药物设计进程。
基于结构的药物设计在药物开发中发挥着重要作用。通过靶向一个通路或整个蛋白质家族，并行追求多个靶点，可显著提高新先导化合物发现的成功几率。Emerald Bio 开发了一条高通量、多靶点并行处理流程（MTPP），用于从基因到结构的测定，以支持该合作项目。本文描述了用于测定四种不同甲型流感病毒株 PB2 亚基结构的实验方案。

以下结果展示了所述实验方案的预期结果，以及PB2的实测结果。
利用 Gene Composer 设计了流感病毒聚合酶亚基 PB2 的五个全长目标氨基酸序列（图2）。这些 PB2 序列经过反向翻译并经历多种工程化步骤3，最终获得密码子协调优化的序列，适用于在 E. coli. 中表达。从 iPCR 产物（图3b）中，共成功将三十四种构建体通过 PIPE 克隆技术3插入至一种经修饰的 pET28 载体系统10中，并带有 N 端 6x His-Smt 融合标签，如图3a所示。克隆工作流程的概要见图4。
成功克隆后，在BL21(DE3) E. coli 细胞中对每个构建体进行小规模蛋白表达检测。细胞在添加Novagen Overnight Express 1培养基的TB培养基中，于220 rpm振荡培养箱中20 °C培养48小时。培养完成后，收集细胞，并使用Caliper LabChip 90进行毛细管电泳检测可溶性蛋白的表达情况。在34个PB2构建体中，有14个能够表达可溶性目标蛋白，进入大规模发酵阶段。每个构建体的大规模培养均按照生产商说明书，在TB培养基中添加Novagen Overnight Express 1培养基进行。培养完成后，通过离心收集细胞，并在-80 °C保存。在进行大规模纯化之前，通过SDS-PAGE分析确认每种培养物的大规模蛋白表达情况（图5）。
使用Protein Maker对14种PB2构建体进行了并行纯化。将这14种构建体的澄清裂解液依次通过镍螯合柱。通过SDS-PAGE确定含有目标蛋白的洗脱组分后，分别合并各样本对应的组分，并通过A280读数测定其浓度。通过加入ULP1酶并进行过夜透析，随后再经第二次镍柱处理，以切除6x His-Smt标签。通过SDS-PAGE确认His-Smt标签的切除效果（图6），然后使用10 kDa Amicon Ultra离心管对各样本进行浓缩。使用Amicon Ultra离心管浓缩后，各样本再经分子筛柱层析以获得可用于晶体生长的纯度。随后进行第二次浓缩，以将蛋白浓度提高至适合结晶的水平。所有14种构建体均成功纯化，并进入结晶试验阶段。
通过解冻先前冷冻的蛋白质来启动结晶。结晶在温湿度受控的房间内进行 16 °C 使用特别设计的板（Emerald Bio）进行悬滴蒸汽扩散（图7）。初步筛选采用四种稀疏矩阵筛选试剂盒进行：JCSG+、Pact、Wizard Full 和 CryoFull（Emerald Bio），遵循扩展的纽曼策略。 0.4 μl 蛋白溶液随后与 0.4 μl 从相应的储液池中使用96孔Compact Jr结晶板（Emerald Bio）吸取结晶液（或储液溶液）。在十四种纯化样品中，有九种获得了适合衍射研究的晶体（图8). 使用配备Osmic VariMax HF光学系统和Saturn 944+ CCD探测器的Rigaku SuperBright FR-E+旋转靶X射线发生器，在Cu Kα波长下对九个结晶构建体中的五个收集了实验室内部的衍射数据集（图9）。每个数据集均使用 XDS/XSCALE 进行处理4 并缩放至最终分辨率。使用分子置换法尝试求解结构 Phaser 5 来自 CCP4 套件 7最终模型经 REFMAC 精修后获得 7 以及通过手动重建 Coot 11. 采用几何形状和适配度评估并校正结构MolProbity 9. 共确定了四种PB2亚基的结构（图10）并存入PDB。 图11 展示了MTPP流程中每个阶段的整体结果。
<img alt="基因到结构通路示意图：基因工程、蛋白质表达、纯化、结晶。" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/4225/4225fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 1"> 
 图 1. 在 Emerald Bio 实现多靶标并行处理的 SSGCID 基因到结构通路概览。
<img alt="基因序列比对，工具界面显示DNA共识序列、突变分析、构建设计。" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/4225/4225fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig2.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图2"> 
 图2. Gene Composer软件中的比对查看器与蛋白质构建设计模块。目标蛋白的氨基酸基础构建显示为绿色（中间窗口），基于结构指导的替代构建截短形式显示为金色（底部窗口）。 多个流感病毒PB2序列的比对结果与PDBID 3CW4的C端结构域序列及其二级结构元件进行比较。了解该结构域及其二级结构元件后，可在Gene Composer设计模块中通过右键点击目标氨基酸残基来选择N端截短方案。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4225/4225fig2large.jpg" target="_blank"> 点击此处查看高清图像</a>。
<img alt="基因合成与表达载体流程的插入片段和载体PCR示意图。" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig3a.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Figure 3a"> 
 图3a. PIPE克隆示意图，其中合成基因插入片段（橙色）通过设计的正向（红橙色线条）和反向（橙蓝色线条）引物扩增，生成插入片段PCR产物。 表达载体则使用反向（红黑色线条）和正向（蓝黑色线条）引物扩增，生成载体PCR产物。插入片段PCR产物（iPCR）的末端序列与载体PCR产物（vPCR）的末端序列互补（iPCR的红色部分与vPCR的红色部分互补，iPCR的蓝色部分与vPCR的蓝色部分互补）。这种互补性使得iPCR和vPCR产物能够退火形成质粒，并在转入宿主BL21(DE3)化学感受态E. coli细胞后进行复制。
<img alt="显示iPCR和vPCR结果的电泳凝胶，以及带有分子标记物的DNA分离。" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig3b.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图3b"> 
 图3b. PB2亚基iPCR产物的琼脂糖凝胶分析。 iPCR失败表现为微弱或弥散的条带，而成功的iPCR产物则呈现清晰、强健的条带。iPCR产物的质量通常与克隆成功率相关。分子量标记物单位为千道尔顿（kDa）。该图引自Raymond et al., 201112。
<img alt="基因表达过程示意图；用于生物学研究的靶点、构建体及检测。" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig4.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 4"> 
图 4. 使用 Gene Composer 软件进行靶标 PB2 蛋白的基因工程步骤。 在为每个靶标建立优化的核酸序列后，分别为其设计了 6–7 种不同的蛋白构建体。在基因设计与克隆的初始阶段对多个靶标进行并行处理，共获得 34 种构建体，其中 14 种为可表达可溶性蛋白的有效靶标，在 E. coli 中成功表达。
<img alt="用于蛋白质分离的SDS-PAGE凝胶电泳示意图，显示以kDa为单位的分子量标记。" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig5.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图5"> 
 图5. 大规模发酵的代表性SDS-PAGE分析，显示强烈的蛋白质表达（预期大小为25.76 kDa），约50%为可溶性（第4泳道），洗脱蛋白中约50%的6x His-Smt标签被切割（第7泳道）。
<img alt="显示分子量标记物和样品泳道的蛋白质电泳凝胶；蛋白质分离。" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig6.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图6"> 
图6. 聚合酶PB2亚基三种构建体的SDS-PAGE结果。 第1泳道：分子量标记物（左侧标注，单位为kDa）；第2、6、10泳道：来自镍柱1的合并蛋白；第3、7、11泳道：镍柱2中在缓冲液A中洗脱的切割后蛋白的穿流组分；第4、8、12泳道：在缓冲液B中从镍柱2去除6x His-Smt标签后的蛋白。
<img alt="蛋白质结晶装置示意图；井、储液池、密封、晶体收获过程。" fo:content-width="4.5in" fo:src="/files/ftp_upload/4225/4225fig7highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig7.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Figure 7"> 
图7. 采用悬滴法进行蒸汽扩散的示意图。 蛋白质结晶的悬滴法属于蒸汽扩散法的一种。该方法将纯化的蛋白质样品与沉淀剂混合后，置于与含有较高浓度相同条件溶液的较大储液池相对平衡的环境中。随着水分从蛋白质样品中蒸发并转移至储液池，沉淀剂浓度逐渐升高，达到适合蛋白质结晶的最佳水平。
<img alt="溶液中晶体形成的显微镜图像；晶体学实验；材料分析。" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig8.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图8"> 
 图8. 来自一种流感病毒株的聚合酶PB2亚基蛋白晶体。
<img alt="X射线晶体学图谱；分子结构分析示意图；可见衍射斑点。" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig9.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图9"> 
图9. 来自一种流感病毒株的聚合酶PB2亚基的X射线衍射图像。
<img alt="蛋白质结构、示意图；PDB 编号 3K2V、3KHW、3KC6、3L56；分子可视化。" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/4225/4225fig10highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig10.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 10"> 
图 10. 4 个 PB2 结构晶体学不对称单元中分子的带状图。 二级结构以彩虹色模式着色，并标注相应的 PDB 编号。(a) 3K2V (A/Yokohama/2017/2003/H3N2) (b) 3KHW (A/Mexico/InDRE4487/2009/H1N1) (c) 3KC6 (A/Vietnam/1203/2004/H5N1) (d) 3L56 (A/Vietnam/1203/2004/H5N1)。
<img alt="聚合酶亚基研究；用于菌株分析的克隆与纯化构建体详细表格。" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_upload/4225/4225fig11highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4225/4225fig11.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 11"> 
 图 11. 采用所述方法对流感病毒 PB2 靶标进行结果分析。 结构解析流程分为五个步骤进行说明：克隆、溶解性分析、纯化、结晶及结构解析。

基于结构的药物设计在药物研发中发挥着重要作用。并行追求多个靶点可显著提高先导化合物发现的成功率。以下文章重点介绍了西雅图传染病结构基因组学中心如何采用多靶点策略，实现流感病毒A型PB2亚基从基因到结构的测定。

流感病毒聚合酶PB2亚基基因至结构解析的多靶点并行处理方法

高致病性流感病毒株的大流行可在全球范围内导致人类群体中广泛的发病和死亡。在美国……

以下实验的总体目标是采用多靶点策略，通过X射线晶体学对目标蛋白进行结构解析，而起始材料仅为本例中的一条单一基因或遗传序列。该目标蛋白为甲型流感病毒的PB2聚合酶亚基，是病毒复制过程中的关键组分。多靶点策略的实现首先基于单一目标序列以及对该蛋白已知的其他信息，平行设计并克隆一系列基因构建体。第二步是检测每种构建体的表达水平，并从中筛选出最适合在细胞培养中进行大规模蛋白表达的构建体。下一步需要裂解细胞，从表达产物中分离目标蛋白，并将每种蛋白纯化至极高纯度。随后对每种蛋白进行一系列结晶试验，以获得适合X射线研究的晶体形态。随后对一个或多个晶体收集高分辨率X射线衍射数据，并用于求解和精修电子密度图，以描绘出每个靶标蛋白的结构。这些结果使得能够基于电子密度图呈现靶标蛋白的三维结构。多靶标处理通过在结构解析路径中的每一个潜在瓶颈处提供可行的替代方案，显著提高了结构确定成功的可能性。同时对多个靶点进行操作也具有很高的效率，可降低每一步骤中每个蛋白质所需的时间和成本。提高药物可靶向蛋白结构解析完成的速度，将每年带来更多治疗方案开发的机会。尽管该方法可为结构生物学研究提供宝贵的见解，但通过这些方法获得的高质量蛋白质还可支持任何基于蛋白质的科学研究。该过程的每个阶段都有其自身的科学依据，并需要相应的专业知识，但一旦整合所有环节，对人员、仪器和专业技术的投入将会获得丰厚的回报。在选定目标基因及其基因产物进行研究后，第一步需要设计多种遗传变异体或构建体。利用基因设计软件，在蛋白质水平上设计这些构建体，同时生成相应的编码序列，用于工程化合成基因序列。利用比对查看器模块和构建设计模块，比较蛋白质序列比对结果，并定义蛋白质构建体设计中用于插入片段PCR和载体PCR的末端引物或引物对。接着，使用 Gene Composer 的蛋白质到DNA算法，将每条氨基酸序列反向翻译为编码的工程化核酸序列。根据相应的密码子使用表优化序列，以实现在特定细胞系中的高效表达。在此例中为大肠杆菌。一旦目标基因序列准备就绪，即可进行虚拟克隆，并将该基因插入适合细菌表达的载体质粒中。此处所用载体为改良的 PET 28 载体。该载体包含表达和蛋白质纯化所需的某些组分。目标基因经过修饰，可在蛋白的N端或C端插入组胺标签序列，以及一段可被切割的序列，以便在纯化过程中去除标签。该载体还带有抗生素抗性基因，用于表达检测和发酵。随后，通过标准的基因合成方法构建每种目标蛋白的遗传序列，以准备进行引物介导的不完全延伸克隆（pipe cloning）。pipe cloning 是一种基于 PCR 的克隆策略，其中使用与预定载体互补的引物扩增目标基因。该方法利用了 PCR 后期阶段扩增不完全的特性，使 PCR 产物带有可变的单链末端。我通过在每个反应中加入五微升的正向引物和五微升的反向引物来制备插入片段 PCR（IPCR）。根据96孔板的板图，将每种全长合成基因各2微升加入对应的孔中。随后，向每个孔中加入25微升PFU主混合液，按照以下PCR条件循环反应25次：在95摄氏度下变性30秒。在50摄氏度下变性45秒，并在68摄氏度下延伸三分钟。通过IPCR产物的AGROS凝胶分析确认片段扩增，成功的IPCR产物表现为清晰浓重的条带。较不理想的结果通常表现为单独反应中出现微弱或弥散的条带。通过载体PCR（VPCR）扩增表达质粒，并对VPCR产物进行AROS凝胶分析以确认片段扩增。在IPCR和VPCR产物扩增完成后，将其加入合并板中，并放入热循环仪中进行合并反应。将成功克隆的构建体转化至化学感受态的大肠杆菌细胞中，并储存在甘油菌种中，以开始表达检测划线。从每种克隆构建体的甘油保存菌种中取少量样品，分别接种到独立的琼脂平板上。平板中加入细菌营养肉汤及载体中编码的抗生素标记物卡那霉素，在37摄氏度下培养过夜，次日进行后续操作。从新培养的琼脂平板上挑取单个菌落，为每个样品起始一个预培养。用该菌落接种1.2毫升添加了氯霉素和葡萄糖的TB培养基，以进行平行处理。每个预培养在96孔圆底板中进行。在37摄氏度、220转/分钟振荡条件下过夜培养。过夜培养后，取40微升预培养液接种，为每个样品启动小规模诱导培养。1.2 毫升 TB 培养基，添加 50 毫克/毫升卡那霉素和 Novagen Overnight Express 系统。1. 在 20 摄氏度下培养诱导培养物 48 小时，以 220 RPM 摇动，然后在 4,000 G 力下离心 15 分钟收集细胞。弃去上清液，将沉淀物在纯化后于负20摄氏度保存至少一小时，然后再进行后续处理。根据制造商的说明书，使用Caliper Lab CHIP 90系统通过毛细管电泳分析经或未经切割反应的蛋白质。以甲型流感病毒PB2蛋白亚基为例，在34个构建体中，有14个产生了可溶性目标蛋白，并进入下一步大规模发酵阶段。开始大规模发酵时，从甘油菌种中接种含有50毫克/毫升卡霉素的100毫升细菌培养液，并在37摄氏度下振荡培养过夜。次日，在220转/分钟的振荡条件下，用10毫升该预培养液接种扩大培养。在2升带挡板的烧瓶中加入含有自动诱导培养基和50毫克/毫升卡那霉素的1升培养液。在37摄氏度下振荡培养扩增的菌液，大约每30分钟摇动一次。通过测量600纳米波长下的紫外吸光度来检测菌液的光密度。当光密度达到0.6时，在达到所需生长时间后，将摇床培养箱的温度调整为20摄氏度。从每种构建体中取出10毫升具有代表性的样品用于表达检测。在5,000 ×g离心力下离心15分钟收集细胞。倒掉上清液，并将细胞沉淀在负80摄氏度下冷冻。开始此操作时，将细胞糊在裂解缓冲液中按1:5的总体积比解冻并重悬。在4摄氏度下剧烈搅拌30分钟。使用洁净的刮刀从烧杯壁上刮下结块。在冰上使用超声破碎仪对细胞进行机械裂解。将粗裂解液在4°C条件下以18,000 ×g离心30分钟，以澄清裂解液。收集上清液，并在进行大规模纯化之前保留少量等分试样用于分析。通过SDS-PAGE凝胶分析确认每种培养物的大规模蛋白表达。此代表性SDS-PAGE结果显示出强烈的蛋白表达，溶解度约为50%，切割率约为50%。在此情况下，组氨酸标签与一个在原始构建体中引入的蛋白溶解度标签一同被切除。使用镍树脂将带有独特组胺标签的目标蛋白与包括天然细菌蛋白在内的所有其他细胞物质分离。通过用四倍柱体积的UE水洗涤以去除保存缓冲液，随后用一倍柱体积的缓冲液B和五倍柱体积的缓冲液，准备镍柱。使用蛋白纯化仪进行A缓冲液的平衡并行化操作，该仪器可同时运行多个层析柱。将含有可溶性组氨酸标签蛋白的每份澄清裂解液分别上样至独立的层析柱中，上样速率为每分钟2毫升，随后用缓冲液A进行数倍柱体积的洗涤，收集穿流液并保存用于后续分析。使用缓冲液A与缓冲液B以95:5、60:40、最后至100%缓冲液B的逐步梯度洗脱结合的蛋白。缓冲液B中的组分可与组氨酸竞争镍树脂上的结合位点，从而在特定比例下将目标蛋白从层析柱上洗脱下来。分别收集每一份洗脱组分。此处展示的是在镍柱上进行一次层析的代表性层析图结果。通过SDS-PAGE分析镍柱洗脱组分、粗裂解液、澄清裂解液以及镍柱穿流组分，并与层析纯化过程中采集的280纳米波长下的紫外吸收值进行比较。此步骤用于确定纯化是否成功。选择并合并含有目标蛋白的组分，用于后续处理。根据蛋白的理论消光系数，通过测量280纳米处的紫外吸光度，并结合合并组分的总体积，计算此阶段蛋白的总量。保存少量样品用于分析。目标蛋白的基因编码了一个特定序列，该序列可被ULP一识别为切割位点，因此加入ULP一后可在组氨酸标签与目标蛋白之间发生切割。开始此操作时，每5毫克纯化合并组分中的蛋白加入1微升泛素样蛋白酶一。此时，将切割后的蛋白质通过透析袋从缓冲液B转移至缓冲液A中以进行后续处理，在4°C条件下于2升缓冲液A中透析4小时，并持续搅拌。透析后，对PB2使用10千道尔顿的分子量截断值。在存在和不存在ULP1的情况下，对目标蛋白再次进行SDS-PAGE凝胶电泳分析。这将确定ULP1切割是否成功，并允许选择最佳组分用于后续处理。此处显示的是聚合酶pb三种构建体的代表性SDS-PAGE结果。第一泳道中为两种亚基分子量标记物。第2、6、10泳道为镍柱一纯化后汇集的蛋白质；第3、7、11泳道含有镍柱二中在缓冲液A中洗脱的切割后蛋白；第4、8、12泳道显示在缓冲液B中从镍柱二去除组氨酸标签的结果。去除组胺后，合并镍柱第二次洗脱的组分并进行浓缩。开始凝胶过滤层析（SEC）时，需根据目标蛋白的分子量再次选择合适的层析树脂。本实验采用Superose 110 10/300 GL柱，使用5毫升注射器以每分钟0.5毫升的流速，用200毫升SEC缓冲液平衡层析柱。将样品加载至10毫升样品环中，开始进行SEC层析。在收集小体积组分的同时，于280纳米处监测紫外吸收色谱图。通过SDS-PAGE电泳分析所有相关的SEC组分。蛋白质结晶试验的标准方法采用悬滴法，通过蒸汽扩散进行。在每种靶蛋白的初始阶段，通常会同时设置两个或更多的稀疏矩阵筛选实验。开始该流程时，先在选定的结晶筛选条件下，向96孔紧凑型初级结晶板的每个储液池中预先加入80微升溶液；然后向96个孔中的每一个孔加入0.4微升SEC缓冲液中的蛋白质溶液。接着加入0.4微升的结晶筛选试剂，确保每个液滴充分混合。用透明封板膜完全密封整块板，确保每个孔都完全密封。将板置于16摄氏度、无干扰且无环境振动的位置保存。在接下来的几周内，定期在解剖显微镜下检查蛋白质结晶情况。如果未出现蛋白质晶体，应设置新的实验板，改变条件，并调整最终液滴中的蛋白质浓度，以提高收获前的成功几率。将一个ALS样式的样品托在装有液氮的杜瓦瓶中冷却，并盖上盖子，以开始收获。将覆盖目标蛋白质晶体所在孔的透明胶带切至附近一个空孔，加入1.6微升相应的结晶条件溶液，并与0.4微升乙二醇混合。在结晶条件下含有20%乙二醇的溶液可保护蛋白质晶体。在冷冻过程中，通过显微镜观察晶体，并选择合适的冷冻环进行 harvesting，使冷冻环的内径与晶体的最大宽度相匹配。将冷冻环固定在磁性晶体镊子上，直接从孔板溶液中捞取晶体。立即将带有收获晶体的冷冻环浸入冷冻保护剂中，然后放入 LS 型样品托中。进行闪冻，将晶体重复冷冻，直至获得所需数量的晶体。完成收集后，使用载具棒将带有弯曲舌片的磁性盖子放置在装有闪冻晶体的载具上。将载具翻转至倒置状态，以进行下一步操作。将样品托推杆拧到样品托上，然后将样品托转移至KU actor doer装置，并用其顶开盖子。样品托中的晶体将保持在液氮浴中冷冻状态，直至使用J Director图像采集软件进行X射线衍射研究。设置以下晶体筛选参数：光束狭缝为0.5度，探测器距离为50毫米，图像步进为70度，曝光时长为30秒。这是在晶体筛选过程中图像采集软件的示例截图，中间面板显示了一个代表性晶体观测到的X射线衍射图像，需在高分辨率下采集足够数量的图像，以获得用于三维结构解析的完整数据集。本视频中展示的克隆与蛋白质纯化策略共获得14个纯化的PB2样品，其中9个样品获得了适用于衍射研究的晶体。在九个构建体中的五个上，使用Rigaku Super Bright FRE Plus旋转阳极X射线发生器配合QKα辐射，在自备实验室收集了X射线衍射数据集，该系统配备Ossec VariMax HF光学组件和Saturn 944 Plus CCD探测器。此处显示的是聚合酶 PB2 亚基的 X 射线衍射图像。每套数据均经过处理，共确定了 PB2 亚基的四个结构。每个结构均经过同行评审，并已上传至蛋白质数据银行（Protein Data Bank），供公众访问。该图展示了晶体学不对称单元中分子的带状结构图。四种 PB2 结构的二级结构按照彩虹色谱着色，并标注了相应的 PDB 编号。本表展示了通过本视频文章所述方法对流感 PB2 靶标进行的结果分析。基因到结构测定的多靶标并行处理流程包括五个步骤：克隆、可溶性检测、纯化、结晶和结构测定。我们的结构生物学流程产出的结果不仅为基于结构的研究提供了基础，还可支持其他研究，例如通过功能检测验证蛋白质功能，或在MAR或SPR中对新型化合物进行生物物理筛选，以发现药物开发的新起点。该技术及其配套工具的发明，为结构生物学家开展多种发现型研究铺平了道路，包括基于结构的药物设计，这对人类健康与疾病防治产生了重大影响。观看本视频后，您应该能够充分理解多靶标并行处理如何显著提高结构测定的成功率。请务必注意，在结构生物学实验室工作可能存在极高风险，进行实验操作时必须始终采取适当的安全防护措施，例如正确使用个人防护装备（PPE）。

multi-target-parallel-processing-approach-for-gene-to-structure

Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

流感聚合酶PB2亚基基因结构测定多目标并行处理方法

由于前体mRNA具有瞬时性，因此难以分离和研究 体内.  此处，我们介绍一种新型的 体外...

一种用于绘制人pre-mRNA上核糖核蛋白（RNPs）结合位点的快速高通量方法

流感病毒在与宿主细胞染色质相关联的情况下复制其RNA基因组。本文介绍一种从感染细胞的染色质中纯化完整病毒核糖核蛋白复合物的方法。所获得的纯化病毒复合物可通过Western...

从感染细胞的染色质中亲和纯化流感病毒核糖核蛋白复合物

3DNA 软件包是一种广受欢迎且功能多样的生物信息学工具，能够分析、构建和可视化三维核酸结构。本文介绍了 3DNA...

使用3DNA分析与构建核酸结构

本视频展示了用于优化引物退火温度的梯度聚合酶链式反应，该方法可在各孔中设置梯度退火温度。通过扩增产物的产量来确定不同退火温度的效果，从而优化反应条件。...

梯度聚合酶链式反应确定最佳退火温度

本文描述了一种高效纯化双Strep标签融合蛋白及其特异性复合物的方法，该方法采用经Bis(sulfosuccinimidyl)...

一步纯化双Strep-tag标记蛋白及其复合物的Strep-Tactin树脂交联方法：使用BS3（Bis(sulfosuccinimidyl) suberate）交联树脂

本文介绍了一种简化方案，用于对来自肺炎链球菌（Streptococcus...

SP0092 碳水化合物转运底物结合蛋白的生化与结构表征

本方案描述了在膜片钳记录后进行单细胞多重逆转录聚合酶链式反应所需的关键步骤和注意事项。该技术是一种简单而有效的方法，可用于分析通过膜片钳记录所鉴定的单个细胞中预设基因集的表达谱。...

膜片钳后单细胞多重逆转录聚合酶链式反应

本文描述了仅需短合成DNA和RNA寡核苷酸以及纯化的RNA聚合酶II（Pol II）即可组装Pol II延伸复合物的方法。这些复合物可用于研究与Pol...

用于解析共转录 RNA 加工事件的人工 RNA 聚合酶 II 延伸复合物

蛋白质结合微阵列（PBM）实验结合生化分析，可关联DNA引物酶（一种在模板DNA上合成RNA引物的酶）的结合特性与催化特性。该方法被称为高通量引物酶分析（HTPP），可用于揭示多种酶的DNA结合模式。...

利用高通量引物酶谱分析技术研究DNA引物酶对DNA序列的识别

本方案展示了使用一种快速、三步式、基于适配体的指数扩增检测方法来检测目标物。涵盖了样本制备、信号扩增和显色发育步骤，以实现对该体系的应用，特异性识别茶碱而非咖啡因的存在。...

基于适体的靶标检测结合三阶段G-四链体等温指数扩增反应

本文介绍了一种用于处理通过冷冻电子断层扫描技术成像的流感病毒数据的方案，以及随后对血凝素糖蛋白进行亚断层平均的步骤。该方案涵盖了从图像预处理到最终模型优化的逐步数据处理流程。...

利用流感病毒冷冻电子断层扫描技术解析血凝素的亚纳米级分辨率结构

学习利用多目标并行处理策略测定流感病毒PB2聚合酶亚基的三维结构。该方法通过X射线晶体学技术提高蛋白质结构解析的成功率，为基于结构的药物设计提供高质量蛋白样品和研究基础。

流感病毒聚合酶PB2亚基基因至结构解析的多靶点并行处理方法

探索更多视频