2017年1月19日
本方案描述了如何在克隆水平上评估大量基因的表达。单细胞逆转录定量聚合酶链式反应(RT-qPCR)可对数百个样本和基因产生高度可靠且灵敏度强的结果。
本实验的总体目标是观察单个细胞中多个基因的表达。该方法有助于解答免疫学领域中的关键问题,例如细胞群体内分子特征的异质性,或稀有分子特征的存在。该技术的主要优势在于,可同时在大量细胞中检测至少48个不同基因的特异性分子特征。
首先,在一个1.5毫升离心管中配制适用于48个反应的预扩增混合液。向该管中加入240微升特异性逆转录缓冲液、62.4微升低EDTA TE缓冲液以及9.6微升Taq DNA聚合酶。使用电子移液器,将6.5微升预扩增混合液分别加入96孔单细胞板中的48个孔内。
接下来,在一个1.5毫升离心管中配制0.2x的检测反应混合液。向管中加入每种引物各1.4微升,用低EDTA TE缓冲液定容至终体积140微升。
使用电子移液器,将 2.5 µL 的 0.2× 检测混合液加入含有预扩增混合液的 96 孔单细胞分选板中的 48 个孔中。用封板膜密封反应板,涡旋混匀后,在 280 ×g 条件下离心 1 分钟。
通过荧光激活细胞分选法对单个肝脏固有淋巴样细胞(ILC)进行分选。开始此操作前,先使用一个空的96孔板作为测试。将测试板放置在板架上,使A1孔位于左侧并朝向实验操作者。
调整板架,使液滴位于含验证微珠的单孔中央。调整到位后,将含有检测混合液和预扩增产物的96孔单细胞分选板放置在板架上。绘制板布局图,并对门控细胞群进行分选,每孔分选一个细胞。
每个细胞在96孔单细胞分选板上的精确定位至关重要,应使用电子表格软件记录板式布局。留出一个孔,其中含有0.2倍体积的检测混合液和预扩增混合液,但不加入细胞,作为空白对照。可选地,留出两行共六个孔用于cDNA梯度稀释,作为引物扩增效率的对照。
单细胞分选后立即涡旋振荡,并离心96孔单细胞分选板。将该板放入热循环仪中。按指示进行逆转录和预扩增。
为了获得足够的材料,需要对分选后的单个细胞中特定的目标基因进行预扩增。向每个孔中加入36微升低EDTA TE缓冲液,以稀释预扩增的样品。开始此操作前,用移液器将175微升qPCR预混液和17.5微升样品加载试剂加入一个1.5毫升离心管中,配制总量为191微升的主混合液。
在新的96孔板中,向48个孔中每个孔加入3.6 µL的主混合液。此板即为96孔样本板。从96孔单细胞分选板中,将2.9 µL预扩增的cDNA转移至新的96孔样本板中,保持各样本在两块板中的位置相同。
在新的96孔板上,向其中48个孔各加入3微升检测上样试剂,以制备96孔检测板。向每个孔中加入3微升引物。引物在96孔检测板中的正确位置至关重要。
在电子表格软件中记录板布局。开始此操作时,将集成微流控芯片(IFC)放置在实验台上,并使用注射器检查阀门。取下注射器的帽,将其垂直置于一个阀门上,并用力按压。
O型环应能移动。用对照液充满芯片。对第二个阀门重复上述步骤后,从芯片底部移除黑色薄膜。
将芯片装入IFC控制器中。在IFC控制器屏幕上,选择“预启动”(prime),然后运行。接着弹出芯片,并重新密封芯片底部的黑色薄膜。
使用八通道移液器,将 96 孔检测板中的 5 µL 液体转移至芯片的一侧(即左侧)。每次更换芯片的每个孔时均需更换吸头。避免产生气泡,若出现气泡,可使用 10 µL 吸头将其移除。
按照指示填充芯片的左侧。同样,从96孔样品板中取5微升填充芯片的右侧。为了确保本实验成功,必须正确填充IFC芯片,以便顺利装入IFC控制器。
取下芯片底部的蓝色薄膜,将芯片装入IFC控制器中。在IFC控制器屏幕上,选择加载混合液,然后运行。完成后,弹出芯片,并将蓝色薄膜重新密封在芯片底部。
运行芯片时,首先在微流控qPCR计算机上选择数据采集软件。启动后,选择新建运行。选择弹出并加载芯片。
按照文本方案中所述设置软件后,选择“开始运行”。反应过程大约需要90分钟。要开始数据分析,请打开实时PCR分析软件,选择“文件”菜单中的“打开”,找到实验文件夹,然后选择扩展名为.bm1的芯片运行文件。
点击分析视图、结果表格和热图视图。用 x 标记的方框表示低于阈值检测水平和/或扩增曲线异常。为样本命名。
进入样本设置,选择新的 SBS 96。点击映射,根据 96 孔样本板的布局选择样本排列方式。从电子表格软件中复制样本布局设计并粘贴。
将粘贴的布局定义为样本名称。使用相同步骤命名检测。在检测器设置中输入引物名称,并将粘贴的布局定义为检测器名称。
点击分析视图并进行分析。选择文件,导出并另存为热图结果。通过流式细胞术,根据广泛表达的固有淋巴细胞(ILC)标记物对肝脏ILC群体进行分选,并定义了三个不同的群体。
正确加载的单细胞多重基因表达芯片应呈现整齐的直线和行列,每个反应室均被填充且尺寸一致。加载不当的芯片则会出现空的反应室行列以及弯曲的线条。这张显示正确加载芯片的荧光素酰胺图像表明,经过几个循环后,反应室的亮度出现差异。
具有扩增信号的反应室比无扩增或低扩增信号的反应室更亮。经过适当的细胞分选、预扩增和上样后,在成年野生型小鼠肝脏中,ILC群体在基因表达上呈现异质性。左侧为未经修饰的热图。
右侧是定义样本和检测名称后获得的修正热图。通过使用在线软件,鉴定了细胞特异性基因表达特征及细胞群体之间的关系。每行代表一个基因,每列代表相同的细胞,三个细胞群体分别以蓝色、红色和绿色表示。
一旦掌握,该技术可在九小时内完成,前提是操作得当。在进行该过程时,必须仔细记录培养板的方向,以确保细胞和引物的分布准确无误。该技术建立后,为研究人员探索细胞群体中稀有且特异的分子特征铺平了道路。
观看本视频后,您应能够充分理解如何在完成适当的细胞分选、预扩增和上样后,同时对大量单个细胞中的多个基因表达进行评估。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本方案描述了一种利用单细胞RT-qPCR在克隆水平上评估基因表达的方法。该技术可同时检测多个基因的表达,有助于揭示细胞异质性。
单细胞多重RT-qPCR技术能够对稀有淋巴样群体中的基因表达异质性进行高分辨率表征,解决了免疫学和早期药物发现领域的一项关键挑战。该方法通过解析克隆水平的细胞多样性,提高了靶点验证的预测可信度,并支持基于风险评估的研发管线决策。其单细胞水平数十个基因的表达谱分析能力,可显著优化发现阶段的筛选流程,并为转化研究策略提供依据。
这种单细胞多重RT-qPCR方法可整合从早期发现到先导物鉴定及临床前研究的全过程,尤其适用于免疫细胞靶点的研究。