Name: 大豆原生质体分离的简易方法及其在瞬态基因表达分析中的应用 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 22 s
Description: 学习大豆原生质体分离的简易方法，用于瞬态基因表达分析和调控机制研究。该方法可大量制备均一的原生质体细胞，为植物细胞生物学研究提供可靠的技术支持。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

本研究由美国国家科学基金会植物基因组研究计划（NSF-PGRP-IOS-1339388）资助。

1. 植物的培养
<ol>
	<li>在温室中，于长日照条件（16 小时光照，光强 1,500 µmol m-2 s-1）、25 °C 下，将 5 - 10 粒大豆种子（Williams 82）播种于 13 cm 的花盆中，使用自制的大豆专用土壤混合物（土壤、珍珠岩和粗砂按 1:1:1 比例混合）。</li>
</ol>
2. 质粒DNA的制备
<ol>
	<li>使用无菌的移液枪头或牙签，挑取一个携带含有目的基因质粒的 E. coli 单菌落或冻存的甘油菌种，接种于装有20 mL添加适当抗生素的Luria-Bertani（LB）液体培养基的50 mL锥形瓶中。</li>
	<li>将锥形瓶置于37 °C摇床中过夜培养。于室温下以12,000 × g 离心5分钟收集菌体，弃去上清液。按照质粒提取试剂盒的制造商操作步骤提取并纯化质粒。</li>
</ol>
3. 原生质体分离
<ol>
	<li>从10日龄的大豆幼苗上剪取新展开的单叶（图1）。 
	注意：选择处于适当发育阶段的叶片是成功制备大豆原生质体的关键。仅使用刚刚展开、处于早期发育阶段的叶片。随着叶片成熟，细胞壁将更难消化。</li>
	<li>用新的剃须刀片去除单叶的主脉，然后将剩余部分切成0.5–1 mm宽的条状。 
	注意：两片单叶在10 mL酶解液中消化可获得足够进行10次以上转化的原生质体。</li>
	<li>用镊子立即将叶条轻柔地转移至15 mL离心管中含10 mL新鲜配制的酶解液（Table 1）的溶液中，在室温下进行真空浸润15分钟。</li>
	<li>在室温、弱光条件下，将叶条在酶解液中以轻微振荡（40 rpm）孵育4–6小时。确保随着原生质体释放，酶解液逐渐变为黄绿色。在显微镜下（×10）观察酶解液/原生质体混合液。 
	注意：释放出的原生质体呈球形，而未消化的细胞则呈不规则或椭圆形。</li>
	<li>将10 mL酶解液/原生质体混合液轻柔倾倒入50 mL离心管中，加入10 mL室温W5溶液（Table 1）以终止消化反应。轻轻颠倒混匀数次。将混合液缓慢倾倒在置于50 mL离心管口的洁净75 µm尼龙筛网上，以去除未消化的叶组织。</li>
	<li>将滤过的酶解液/原生质体溶液在50 mL离心管中以100 × g离心1–2分钟（室温）。使用10 mL血清移液管小心吸除上清液，避免扰动原生质体沉淀。</li>
	<li>在显微镜下（×10）使用血细胞计数板计数原生质体数量，用4 °C预冷的W5溶液将原生质体重悬并稀释至浓度为2 × 105 mL-1。将原生质体置于冰上静置30分钟。</li>
	<li>在室温下以100 × g离心悬液1–2分钟，用1 mL移液器小心吸除W5溶液，避免扰动原生质体沉淀。将原生质体在室温下用MMG溶液（Table 1）重悬，调整浓度至2 × 105 mL-1。</li>
</ol>
4. 原生质体转化
<ol>
	<li>制备原生质体的100 µL分装液（2 x 104 原生质体在 2 x 105 mL-1) 加入1.5 mL低吸附微量离心管中，使用未剪切的200 µL吸头进行吹打。留出一份等分试样作为阴性对照。向其余每份原生质体等分试样中加入10 µL质粒（10–20 µg）。</li>
	<li>缓慢加入 110 µL 新鲜配制的 PEG 溶液（表1将溶液加入1.5 mL微量离心管内壁，然后轻轻倒置并旋转管子，直至溶液混合均匀。</li>
	<li>将转化混合物在室温下孵育15分钟。</li>
	<li>为终止转化，于室温下缓慢向1.5 mL离心管中加入400 µL W5溶液，轻轻颠倒混匀直至溶液呈均一状态。于室温下以100 g离心1–2 min，随后用移液器弃去上清液。</li>
	<li>加入1 mL WI溶液（表1将溶液加入管中，轻轻吹吸1-2次以重悬。在6孔组织培养板的每孔中加入1 mL 5%（vol/vol）无菌小牛血清，以包被表面，防止原生质体黏附于孔板。</li>
	<li>数秒后，用移液器弃去小牛血清。将重悬的原生质体转移至培养板的孔中。用盖子盖好培养板。</li>
</ol>
5. 原生质体孵育与收集
<ol>
	<li>将原生质体在室温下避光孵育1-2天。 
	注意：我们发现，与孵育1天相比，孵育2天通常可获得更强的荧光蛋白信号，且荧光蛋白信号可持续达3-4天。</li>
	<li>将原生质体溶液转移至1.5 mL低吸附微量离心管中。在室温下以100 × g离心1-2分钟以收集原生质体。用移液器吸除上清液，并将10 µL原生质体转移至载玻片上。</li>
	<li>在荧光显微镜或共聚焦显微镜下观察荧光信号。以未转染的原生质体作为阴性对照（不应观察到信号）。</li>
</ol>

<ol><li>Melchers, G., Labib, G. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/BF00271144">Somatic hybridisation of plants by fusion of protoplasts.</a> Mol. Gen. Genet. 135 (4), 277-294 (1974).</li>
<li>Gresshoff, P. M. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/2474847">In vitro culture of white clover: callus, suspension, protoplast culture, and plant regeneration.</a> Bot. Gaz. 141 (2), 157-164 (1980).</li>
<li>Lörz, H., Baker, B., Schell, J. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/BF00330256">Gene transfer to cereal cells mediated by protoplast transformation.</a> Mol. Gen. Genet. 199 (2), 178-182 (1985).</li>
<li>Hayashimoto, A., Li, Z., Murai, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+polyethylene+glycol-mediated+protoplast+transformation+system+for+production+of+fertile+transgenic+rice+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">A polyethylene glycol-mediated protoplast transformation system for production of fertile transgenic rice plants.</a> Plant Physiol. 93 (3), 857-863 (1990).</li>
<li>Koop, H. -U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+of+foreign+sequences+into+the+tobacco+plastome+via+polyethylene+glycol-mediated+protoplast+transformation%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Integration of foreign sequences into the tobacco plastome via polyethylene glycol-mediated protoplast transformation.</a> Planta. 199 (2), 193-201 (1996).</li>
<li>Hrazdina, G., Wagner, G. J., Siegelman, H. W. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S003194220089679X">Subcellular localization of enzymes of anthocyanin biosynthesis in protoplasts.</a> Phytochemistry. 17 (1), 53-56 (1978).</li>
<li>Lin, W., Wittenbach, V. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+localization+of+proteases+in+wheat+and+corn+mesophyll+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Subcellular localization of proteases in wheat and corn mesophyll protoplasts.</a> Plant Physiol. 67 (5), 969-972 (1981).</li>
<li>Vögeli-Lange, R., Wagner, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+localization+of+cadmium+and+cadmium-binding+peptides+in+tobacco+leaves%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Subcellular localization of cadmium and cadmium-binding peptides in tobacco leaves.</a> Plant Physiol. 92 (4), 1086-1093 (1990).</li>
<li>Chen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+highly+efficient+transient+protoplast+system+for+analyzing+defence+gene+expression+and+protein-protein+interactions+in+rice%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Plant+Pathol%22%5BJournal%5D)">A highly efficient transient protoplast system for analyzing defence gene expression and protein-protein interactions in rice.</a> Mol. Plant Pathol. 7 (5), 417-427 (2006).</li>
<li>Wu, F. -H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tape-Arabidopsis+Sandwich-a+simpler+Arabidopsis+protoplast+isolation+method%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+methods%22%5BJournal%5D)">Tape-Arabidopsis Sandwich-a simpler Arabidopsis protoplast isolation method.</a> Plant methods. 5 (1), 16(2009).</li>
<li>Christensen, A. H., Sharrock, R. A., Quail, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maize+polyubiquitin+genes%3A+structure%2C+thermal+perturbation+of+expression+and+transcript+splicing%2C+and+promoter+activity+following+transfer+to+protoplasts+by+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Maize polyubiquitin genes: structure, thermal perturbation of expression and transcript splicing, and promoter activity following transfer to protoplasts by electroporation.</a> Plant Mol. Biol. 18 (4), 675-689 (1992).</li>
<li>Marcotte, W. R., Bayley, C. C., Quatrano, R. S. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/nature/journal/v335/n6189/abs/335454a0.html">Regulation of a wheat promoter by abscisic acid in rice protoplasts.</a> Nature. 335 (6189), 454-457 (1988).</li>
<li>Dron, M., Clouse, S. D., Dixon, R. A., Lawton, M. A., Lamb, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutathione+and+fungal+elicitor+regulation+of+a+plant+defense+gene+promoter+in+electroporated+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22P.+Natl.+A.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Glutathione and fungal elicitor regulation of a plant defense gene promoter in electroporated protoplasts.</a> P. Natl. A. Sci. USA. 85 (18), 6738-6742 (1988).</li>
<li>Cocking, E. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/nature/journal/v187/n4741/abs/187962a0.html">A method for the isolation of plant protoplasts and vacuoles.</a> Nature. 187 (4741), 962-963 (1960).</li>
<li>Zhang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+rice+plants+produced+by+electroporation-mediated+plasmid+uptake+into+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Transgenic rice plants produced by electroporation-mediated plasmid uptake into protoplasts.</a> Plant Cell Rep. 7 (6), 379-384 (1988).</li>
<li>Fromm, M., Taylor, L. P., Walbot, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+genes+transferred+into+monocot+and+dicot+plant+cells+by+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22P.+Natl.+A.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Expression of genes transferred into monocot and dicot plant cells by electroporation.</a> P. Natl. A. Sci. USA. 82 (17), 5824-5828 (1985).</li>
<li>Crossway, A., et al. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/BF00331634">Integration of foreign DNA following microinjection of tobacco mesophyll protoplasts.</a> Mol. Gen. Genet. 202 (2), 179-185 (1986).</li>
<li>Holm, P. B., Olsen, O., Schnorf, M., Brinch-Pedersen, H., Knudsen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transformation+of+barley+by+microinjection+into+isolated+zygote+protoplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Res%22%5BJournal%5D)">Transformation of barley by microinjection into isolated zygote protoplasts.</a> Transgenic Res. 9 (1), 21-32 (2000).</li>
<li>Schapire, A. L., Lois, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simplified+and+rapid+method+for+the+isolation+and+transfection+of+Arabidopsis+leaf+mesophyll+protoplasts+for+large-scale+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Signal+Transduction%3A+Methods+and+Protocols%22%5BJournal%5D)">A simplified and rapid method for the isolation and transfection of Arabidopsis leaf mesophyll protoplasts for large-scale applications.</a> Plant Signal Transduction: Methods and Protocols. 1363, 79-88 (2016).</li>
<li>Niedz, R. P. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s11240-005-9028-4">Regeneration of somatic embryos from sweet orange (C. sinensis) protoplasts using semi-permeable membranes.</a> Plant Cell Tiss. Org. Cult. 84 (3), 353-357 (2006).</li>
<li>Sheng, X., et al. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s11240-011-0002-z">Protoplast isolation and plant regeneration of different doubled haploid lines of cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis).</a> Plant Cell Tiss. Org. 107 (3), 513-520 (2011).</li>
<li>Grun, P., Chu, L. -J. <a target="_blank" href="https://www.jstor.org/stable/2442587">Development of plants from protoplasts of Solanum (Solanaceae).</a> Am. J. Bot. 65 (5), 538-543 (1978).</li>
<li>Davey, M. R., Anthony, P., Power, J. B., Lowe, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plant+protoplasts%3A+status+and+biotechnological+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Adv%22%5BJournal%5D)">Plant protoplasts: status and biotechnological perspectives.</a> Biotechnol. Adv. 23 (2), 131-171 (2005).</li>
<li>Pitzschke, A., Persak, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poinsettia+protoplasts-a+simple%2C+robust+and+efficient+system+for+transient+gene+expression+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+methods%22%5BJournal%5D)">Poinsettia protoplasts-a simple, robust and efficient system for transient gene expression studies.</a> Plant methods. 8 (1), 14(2012).</li>
<li>Yoo, S. -D., Cho, Y. -H., Sheen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arabidopsis+mesophyll+protoplasts%3A+a+versatile+cell+system+for+transient+gene+expression+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Arabidopsis mesophyll protoplasts: a versatile cell system for transient gene expression analysis.</a> Nat. Protoc. 2 (7), 1565(2007).</li>
<li>Sedivy, E. J., Wu, F., Hanzawa, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soybean+domestication%3A+the+origin%2C+genetic+architecture+and+molecular+bases%5BTitle%5D)+AND+%22New+Phytol%22%5BJournal%5D)">Soybean domestication: the origin, genetic architecture and molecular bases.</a> New Phytol. 214 (2), 539-553 (2017).</li>
<li>Yang, Y., Li, R., Qi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+analysis+of+plant+promoters+and+transcription+factors+by+agroinfiltration+of+tobacco+leaves%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">In vivo analysis of plant promoters and transcription factors by agroinfiltration of tobacco leaves.</a> Plant J. 22 (6), 543-551 (2000).</li>
<li>Marion, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+analysis+of+protein+subcellular+localization+and+interaction+using+high-throughput+transient+transformation+of+Arabidopsis+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Systematic analysis of protein subcellular localization and interaction using high-throughput transient transformation of Arabidopsis seedlings.</a> Plant J. 56 (1), 169-179 (2008).</li>
<li>Wu, H. -Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AGROBEST%3A+an+efficient+Agrobacterium-mediated+transient+expression+method+for+versatile+gene+function+analyses+in+Arabidopsis+seedlings%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+methods%22%5BJournal%5D)">AGROBEST: an efficient Agrobacterium-mediated transient expression method for versatile gene function analyses in Arabidopsis seedlings.</a> Plant methods. 10 (1), 19(2014).</li>
<li>Govindarajulu, M., Elmore, J. M., Fester, T., Taylor, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+constitutive+viral+promoters+in+transgenic+soybean+roots+and+nodules%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Plant+Pathol%22%5BJournal%5D)">Evaluation of constitutive viral promoters in transgenic soybean roots and nodules.</a> Mol Plant Pathol. 21 (8), 1027-1035 (2008).</li>
<li>Nagamatsu, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+analysis+of+soybean+genes+involved+in+flavonoid+biosynthesis+by+virus-induced+gene+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Biotechnol.+J%22%5BJournal%5D)">Functional analysis of soybean genes involved in flavonoid biosynthesis by virus-induced gene silencing.</a> Plant Biotechnol. J. 5 (6), 778-790 (2007).</li>
<li>Juvale, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+and+spatial+Bean+pod+mottle+virus-induced+gene+silencing+in+soybean%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Plant+Pathol%22%5BJournal%5D)">Temporal and spatial Bean pod mottle virus-induced gene silencing in soybean.</a> Mol. Plant Pathol. 13 (9), 1140-1148 (2012).</li>
<li>Zhang, C., Bradshaw, J. D., Whitham, S. A., Hill, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development+of+an+efficient+multipurpose+bean+pod+mottle+virus+viral+vector+set+for+foreign+gene+expression+and+RNA+silencing%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">The development of an efficient multipurpose bean pod mottle virus viral vector set for foreign gene expression and RNA silencing.</a> Plant Physiol. 153 (1), 52-65 (2010).</li>
<li>Lin, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+mesophyll+protoplasts+from+mature+leaves+of+soybeans%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Isolation of mesophyll protoplasts from mature leaves of soybeans.</a> Plant Physiol. 73 (4), 1067-1069 (1983).</li>
<li>Yi, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+single-repeat+MYB+transcription+factor%2C+GmMYB176%2C+regulates+CHS8+gene+expression+and+affects+isoflavonoid+biosynthesis+in+soybean%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">A single-repeat MYB transcription factor, GmMYB176, regulates CHS8 gene expression and affects isoflavonoid biosynthesis in soybean.</a> Plant J. 62 (6), 1019-1034 (2010).</li>
<li>Faria, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+NAC+domain-containing+protein%2C+GmNAC6%2C+is+a+downstream+component+of+the+ER+stress-and+osmotic+stress-induced+NRP-mediated+cell-death+signaling+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Plant+Biol%22%5BJournal%5D)">The NAC domain-containing protein, GmNAC6, is a downstream component of the ER stress-and osmotic stress-induced NRP-mediated cell-death signaling pathway.</a> BMC Plant Biol. 11 (1), 129(2011).</li>
<li>Kidokoro, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soybean+DREB1%2FCBF-type+transcription+factors+function+in+heat+and+drought+as+well+as+cold+stress-responsive+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">Soybean DREB1/CBF-type transcription factors function in heat and drought as well as cold stress-responsive gene expression.</a> Plant J. 81 (3), 505-518 (2015).</li>
<li>Sun, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+mutagenesis+in+soybean+using+the+CRISPR-Cas9+system%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep-UK%22%5BJournal%5D)">Targeted mutagenesis in soybean using the CRISPR-Cas9 system.</a> Sci Rep-UK. 5, 10342(2015).</li>
<li>Karimi, M., Inzé, D., Depicker, A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11992820">GATEWAY™ vectors for Agrobacterium-mediated plant transformation.</a> Trends Plant Sci. 7 (5), 193-195 (2002).</li>
<li>Xia, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Positional+cloning+and+characterization+reveal+the+molecular+basis+for+soybean+maturity+locus+E1+that+regulates+photoperiodic+flowering%5BTitle%5D)+AND+%22P.+Natl.+A.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Positional cloning and characterization reveal the molecular basis for soybean maturity locus E1 that regulates photoperiodic flowering.</a> P. Natl. A. Sci. USA. 109 (32), E2155-E2164 (2012).</li>
</ol>

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

本实验方案经过我们实验室的充分验证，适用于大豆原生质体的分离及瞬时表达研究，效果良好。该方法操作简便，仅需常规设备且成本低廉。与此前报道的方法相比，本方案可获得大量均一且高质量的原生质体34,35,36,37,38。然而，由于影响原生质体产量和转化效率的因素较多，强烈建议研究人员根据自身的实验条件、目标结果及所用材料对实验条件进行优化。该系统虽非常适用于研究植物细胞中即时的调控和生化事件，但不适用于观察长期的细胞过程以及组织或个体水平上的生物学事件。
我们发现，在理想发育阶段选择生长旺盛的植物材料是大豆原生质体分离过程中最关键的环节。这不仅决定了原生质体的产量，还影响其质量，进而影响后续的DNA转化效率。大豆植株必须始终在稳定的环境中培养，避免遭受干旱、水涝、...

原生质体是去除了细胞壁的植物细胞。由于它们保留了植物细胞的大部分特征和活性，原生质体是观察和评估多种细胞事件的良好模型系统，也是研究体细胞杂交1和植物再生2的重要工具。原生质体还被广泛用于植物转化3,4,5，因为细胞壁会阻碍DNA进入细胞。原生质体具备完整植株的部分生理响应和细胞过程，因此在基础研究中具有重要意义，可用于活细胞中亚细胞蛋白定位6,7,8、蛋白质-蛋白质相互作用9,10以及启动子活性11,12,13的研究。
植物原生质体的分离最早于1960年被报道14 原生质体的分离与转化方案均已建立并优化。标准的原生质体分离流程包括将叶片切碎后进行酶解消化细胞壁，随后将释放出的原生质体与未消化的组织碎片分离。转化策略包括电穿孔法15,16，显微注射17,18，以及基于聚乙二醇（PEG）的4,5,19 方法。已有大量物种成功用于原生质体分离，包括柑橘属20，芸薹属21，茄科22 及其他观赏植物科23,24尽管在不同物种中使用了多种组织类型，但一种瞬时表达系统在 拟南芥 模式植物叶片中分离的叶肉原生质体（TEAMP） 拟南芥 已得到充分证实25 并已广泛应用于多种领域。
大豆（Glycine max (L.) Merr.）是最重要的蛋白质和油料作物之一26。与拟南芥和水稻不同，获得转基因大豆植株被认为相当困难且效率较低。农杆菌（Agrobacterium tumefaciens）介导的侵染方法已广泛用于烟草表皮细胞27以及拟南芥幼苗28,29中的瞬时基因表达研究，而根癌农杆菌（Agrobacterium rhizogenes）则被用于大豆毛状根的转化30。病毒诱导的基因沉默技术已被用于系统性地下调目标基因31,32以及实现瞬时表达33。原生质体为这些方法提供了宝贵而灵活的替代方案。大豆地上部分材料可被用于制备原生质体，并实现快速且同步的外源基因表达。然而，自1983年首次成功分离大豆原生质体以来34，有关大豆原生质体应用的报道仍十分有限35,36,37,38，主要原因是大豆原生质体的产量相对较低。
本文介绍了一种简单高效的分离大豆原生质体的实验方案及其在瞬时基因表达研究中的应用。利用大豆幼苗的幼嫩单叶，我们可在数小时内获得大量具有活性的原生质体。此外，我们优化了一种聚乙二醇-钙介导的转化方法，该方法操作简便、成本低廉，可高效地将DNA导入大豆原生质体中。

<table><tbody><tr><td>MES</td><td>西格玛奥德里奇</td><td>M8250-100G</td><td></td></tr><tr><td>纤维素酶 CELF</td><td>沃辛顿生物公司</td><td>LS002611</td><td></td></tr><tr><td>果胶酶 Y-23</td><td>BioWorld</td><td>9033-35-6</td><td></td></tr><tr><td>CELLULASE &quot;ONOZUKA&quot; R-10</td><td>yakult</td><td>10g</td><td></td></tr><tr><td>MACEROZYME R-10</td><td>yakult</td><td>10g</td><td></td></tr><tr><td>甘露醇</td><td>ICN 生物医学公司</td><td>152540</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>费希尔</td><td>C79-500g</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>NEB</td><td>R3535S</td><td></td></tr><tr><td>DTT</td><td>西格玛奥德里奇</td><td>D5545-5G</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>西格玛奥德里奇</td><td>S7653-1kg</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>费希尔</td><td>P217-500g</td><td></td></tr><tr><td>MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>西格玛奥德里奇</td><td>M8266-100g</td><td></td></tr><tr><td>PEG4000</td><td>Fluka</td><td>81240</td><td></td></tr><tr><td>尼龙筛网</td><td>Carolina</td><td>652222N</td><td></td></tr><tr><td>组织培养板</td><td>USA Scientific</td><td>CC7682-7506</td><td></td></tr><tr><td>剃须刀片</td><td>费希尔</td><td>12-640</td><td></td></tr><tr><td>血细胞计数板</td><td>hausserscientific</td><td>1483</td><td></td></tr><tr><td>QIAprep Spin Miniprep 试剂盒</td><td>Qiagen</td><td>27104</td><td></td></tr><tr><td>EZNA 质粒小提试剂盒</td><td>Omega</td><td>D6942-01</td><td></td></tr><tr><td>GeneJET 质粒小提试剂盒</td><td>Thermo Scientific</td><td>K0502</td><td></td></tr><tr><td>离心机 5810</td><td>eppendorf</td><td>5811000827</td><td></td></tr><tr><td>离心机 5424</td><td>eppendorf</td><td>22620401</td><td></td></tr><tr><td>Jencons Powerpette Plus 移液控制器</td><td>Jencons</td><td>14526-202</td><td></td></tr><tr><td>蔡司 710 共聚焦显微镜</td><td>Zeiss</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>无粘性、无 RNase 微量离心管，1.5 mL</td><td>Ambion</td><td>AM12450</td><td></td></tr><tr><td>15 mL 离心管</td><td>Denville</td><td>C1018-P</td><td></td></tr><tr><td>50 mL 离心管</td><td>Denville</td><td>C1060-P</td><td></td></tr><tr><td>新生小牛血清</td><td>Thermo Scientific</td><td>16010159</td><td></td></tr><tr><td>土壤</td><td>Ingram's Nursery</td><td></td><td></td></tr><tr><td>珍珠岩</td><td>Vigoro</td><td>100521091</td><td></td></tr><tr><td>鱼雷砂</td><td>JKS Ventures</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LB 肉汤，Lennox（粉末）</td><td>费希尔</td><td>BP1427-500</td><td></td></tr></tbody></table>

一种简易的大豆原生质体分离方法及其在瞬时基因表达分析中的应用

A Simple Method for Isolation of Soybean Protoplasts and Application to Transient Gene Expression Analyses

大豆（Glycine max (L.) Merr.）是一种重要的农作物，已成为研究遗传和生化途径的豆科植物模式物种。因此，建立一种高效的大豆瞬时基因表达系统具有重要意义。本文报道了一种简单的大豆原生质体制备方法及其在瞬时功能分析中的应用。我们发现，从大豆幼苗的幼嫩单叶可获得大量高质量的原生质体。通过优化聚乙二醇-钙介导的转化方法，利用大豆单叶原生质体实现了高效的转化效率。该系统为在活体大豆细胞中研究复杂的调控和信号传导机制提供了一个高效且多功能的模型，有助于更深入地理解豆科植物多样的细胞、发育和生理过程。

对10日龄大豆的不同器官进行了原生质体分离实验（图1），并在显微镜下观察了原生质体产量（图2）。下胚轴和上胚轴的细胞壁几乎无法被消化，部分细胞仍相互粘连（图2B、2C）。子叶（图2D）和根（图2A）中仅少数细胞的细胞壁被去除。相比之下，使用单叶时观察到大量原生质体（图2E–G）。进一步检测了处于不同发育阶段的单叶（图2H）。未展开和刚展开的单叶均能获得较高的原生质体产量，但来自刚展开单叶的原生质体大小更为均一（图2F），而未展开单叶产...

我们开发了一种简单高效的方案，用于制备大量大豆原生质体，以研究活细胞中复杂的调控和信号传导机制。

大豆（Glycine max (L.) Merr.）是一种重要的农作物，已成为研究遗传和生化通路的豆科植物模式物种。

本方法的总体目标是从大豆中获得高质量的原生质体细胞，以研究活体大豆细胞中的调控与信号传导机制。该方法有助于回答调控网络中的关键问题，例如其直接靶基因是什么、转录因子如何开启，以及其相互作用的蛋白伙伴是什么。该技术的主要优势在于其艺术性。该方法可产生大量均一的大豆原生质体细胞，且操作简便。通常，初次接触该方法的研究人员会遇到困难，因为除非在特定时期选取单叶期的叶片，否则很难从大豆叶片中获得理想的原生质体。选择处于适当发育阶段的叶片是成功制备大豆原生质体的关键。从10日龄的大豆幼苗上切取新展开的单叶。为确保在样品产生较高原生质体产量时有足够的材料，应采集至少三个处于略微不同发育阶段的单叶样品。用锋利的剃刀片去除每片单叶的主脉，然后将剩余部分切成0.5至1毫米宽的条状。用镊子将叶条轻轻转移至15毫升离心管中，管内含有10毫升 freshly prepared 酶解液。在室温下对叶条进行真空浸润处理，持续15分钟。随后在室温、弱光条件下，将叶条在酶解液中轻轻振荡孵育4至6小时。随着原生质体的释放，酶解液将变为黄绿色。在10倍物镜下镜检酶解液中的原生质体，选择原生质体消化效果最佳的样品。释放出的原生质体呈球形，而未消化的细胞则呈不规则或椭圆形。为了终止消化，将含有最佳原生质体消化效果的10毫升酶解原生质体溶液轻轻倒入50毫升离心管中，并加入10毫升室温的W5溶液。轻轻颠倒离心管数次。然后，将酶解原生质体溶液缓慢倒入置于50毫升离心管上方的洁净75微米尼龙筛网上，以去除未消化的叶片组织。接下来，在室温下以100 × g离心流穿酶解原生质体溶液1至2分钟。然后，用10毫升血清移液管轻轻吸去上清液，避免扰动原生质体沉淀。用预冷的W5溶液重悬原生质体，并将50毫升离心管置于冰上保存。在显微镜下使用血细胞计数板计数原生质体数量后，用预冷的W5溶液将原生质体稀释至每毫升含2×10⁵个原生质体的浓度。将原生质体置于冰上孵育30分钟。在室温下以100×g离心1至2分钟。然后使用1 mL移液器轻轻吸除W5溶液，注意不要扰动原生质体沉淀。在室温下，用MMG溶液将原生质体重悬，浓度为每毫升含2 × 10⁵个原生质体。为准备原生质体转化，使用未切割的200 μL移液器吸头，在1.5 mL低吸附微量离心管中分装100 μL原生质体等分试样。取一份等分试样作为阴性对照备用。向剩余的原生质体等分试样中加入10微升质粒DNA。将110微升新鲜配制的PEG溶液沿1.5毫升微量离心管内壁缓慢加入。然后轻轻颠倒并旋转离心管，直至溶液变为均一状态。将转化混合物在室温下孵育15分钟。为终止转化反应，于室温下向每支1.5毫升离心管中缓慢加入400微升W5溶液，并轻轻颠倒离心管，直至溶液变为均一状态。将离心管在室温下以100 × G离心1至2分钟。弃去上清液。向每个离心管中加入1毫升WI溶液。在六孔组织培养板中包

a-simple-method-for-isolation-soybean-protoplasts-application-to

Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

大豆原生质体分离的简易方法及其在瞬态基因表达分析中的应用

本视频展示了一种从14天龄拟南芥幼苗组织中分离完整原生质体的方法。由于所分离的原生质体至少可保持完整状态96小时，且来源于幼苗而非一个月大的成熟植株，因此该方法可加快需要完整原生质体的实验检测流程。...

从14天龄的Arabidopsis thaliana幼苗组织中分离原生质体

我们报道了一种在植物细胞中引入、追踪和定量分析GFP表达的方法。该方法利用自行设计的机器人系统，对大量样品进行随时间推移的半连续图像采集。我们还展示了使用ImageJ和ImageReady对图像序列进行分析的方法。...

用于植物组织基因表达研究的机器人技术与动态图像分析

利用表现出组织和器官特异性光敏色素缺陷的转基因植物，正在研究空间特异性光敏色素响应的分子基础。通过荧光激活细胞分选技术分离出光敏色素生色团耗竭的特定细胞，随后进行微阵列分析，以鉴定参与空间特异性光敏色素响应的基因。...

利用FACS辅助的细胞类型特异性表达谱分析研究植物组织和器官特异性的光敏色素反应 拟南芥

植物提供了一种新颖的系统，可用于大规模商业化生产药用蛋白，相较于现有的表达模式，该系统更具可扩展性、成本效益更高且更安全。在本研究中，我们报道了一种简单便捷且可扩展的方法，将含有目的基因的根癌农杆菌（Agrobacterium...

高效农杆菌浸润法实现植物中重组蛋白的高水平瞬时表达

本文描述了一种高通量、自动化的烟草原生质体生产和转化方法。该机器人系统能够在模式BY-2体系中实现大规模平行的基因表达与功能研究，且该技术有望拓展应用于非模式作物。...

一种用于高通量原生质体分离与转化的机器人平台

现有的植物修饰方法适用范围有限。本文提出的一种新型肽衍生技术，有望以简单高效的方式将外源蛋白或基因导入完整植物的特定细胞内区室。...

源自肽的方法实现基因和蛋白质在植物细胞及细胞器屏障间的转运

植物细胞间的连接结构——胞间连丝（Pd），在植物生理过程及植物与病毒的相互作用中发挥着核心作用。决定蛋白质向胞间连丝运输的关键因素是引导蛋白质定位至胞间连丝的分选信号。然而，目前对这类信号序列的认识仍处于初级阶段。本文介绍一种用于鉴定靶向胞间连丝蛋白中胞间连丝定位信号的策略。...

鉴定蛋白质中的胞间连丝定位序列 活体植株中

本文介绍了一种高通量瞬时转染大量玉米原生质体的实验方案，可用于在玉米叶肉细胞中筛选大规模质粒文库。...

玉米叶肉原生质体的可扩展转染

本文介绍了一种高效生产转基因大豆毛状根的实验方案。...

大豆毛状根转化用于基因功能分析

本实验方案描述了如何从小鼠骨髓中建立原代造血细胞培养，并随后使用 Gene Pulser MXCell...

小鼠骨髓来源的原代造血细胞培养物制备及其电穿孔

学习大豆原生质体分离的简易方法，用于瞬态基因表达分析和调控机制研究。该方法可大量制备均一的原生质体细胞，为植物细胞生物学研究提供可靠的技术支持。

一种简易的大豆原生质体分离方法及其在瞬时基因表达分析中的应用

探索更多视频