2018年9月23日
经颅直流电刺激(tDCS)是一种用于治疗精神疾病的研究性治疗技术。建立动物模型对于理解tDCS所引发的特定生物学改变至关重要。本方案描述了一种采用慢性植入电极的小鼠tDCS模型。
Alvar Gaaud 操作旨在小鼠中应用经颅直流电刺激。该方法通过直流电流发生器产生低强度电流,并通过电极直接传递至动物体内。在人类主要精神疾病(如抑郁症、精神分裂症、阿尔茨海默病、注意缺陷多动障碍(AHDH)和自闭症)的治疗中,tDCS 已被研究作为一种非药物治疗替代方案。
此外,经颅直流电刺激(tDCS)因其成本低、操作简便且具有非侵入性等特点,成为一种独特的技术。然而,tDCS 的生物学效应尚未被完全阐明,关于刺激参数(如电流强度、持续时间以及脑区定位)也尚未达成共识。因此,利用模式生物进行最低限度的实验对于深入研究这些机制至关重要,这将通过获取和分析行为、细胞和分子数据,促进对 tDCS 临床疗效的更深入理解。
目前,经颅直流电刺激(tDCS)有两种电极设置,分别称为阳极刺激和阴极刺激。在阳极刺激中,电流直接传递至动物头部,穿过动物身体,最终进入位于动物胸部的阴极。而在阴极刺激中,电流从动物胸部进入,向上传导至其头部,再进入阴极。
在这两种情况下,电流发生器控制电流强度和刺激持续时间,同时产生接触质量并推断反馈。主动定位有多种不同的设置方式。
因此,应考虑所有三个维度的轴向。本方案中,将头部电极植入至颅骨冠状缝根部前方1毫米处,位于颅骨中线的一侧,体部电极则放置于动物胸部。由于刺激时间较短,建议使用起效迅速且作用时间短的麻醉剂,如异氟烷蒸汽。
该操作包含两个关键步骤:电极放置和经颅直流电刺激。手术器械在440摄氏度下通过预处理进行灭菌。
棉签在121摄氏度、20磅/平方英寸的条件下高压灭菌20分钟。将热平台控制器调至37摄氏度。称量动物体重,并计算合适的麻醉诱导剂量。
使用剂量为每千克体重100毫克的氯胺酮和每千克体重8毫克的赛拉嗪混合物。针头规格为31G。动物应在2至3分钟内入睡。
使用电动剃须刀或剃刀剃除手术区域的毛发。将动物放置在预热的加热板上方的立体定位仪上。固定动物头部,并将耳杆尖端插入动物两侧耳道,以将其固定在立体定位仪平台上。
缓慢移动动物头部,确认无明显的侧向偏移和较小的垂直移动。轻轻将麻醉面罩滑至小鼠鼻部,并通过拧紧螺丝固定。在动物眼睛上涂抹眼膏,以防止手术过程中角膜干燥。
使用棉签对手术部位进行消毒,交替使用聚维酮碘擦拭三次,或使用2%氯己定和70%乙醇擦拭三次。使用镊子轻轻夹捏动物的脚趾以确认麻醉效果,并验证动物足部回缩的一般夹捏反射是否消失。在动物耳线后约三毫米处做一切口,并延伸至眼线处停止。
切口部位的长度应约为一厘米,以确保足够大,能够容纳植入物。使用骨刮匙轻轻刮擦颅骨,以增强胶水和骨水泥的粘附性。操作时手法要轻柔,目的是产生微小的划痕。
小心地将手术钩放置于松弛的皮肤处,以保持手术视野开放,并清除皮肤和毛发等障碍物。使用无菌棉签轻轻擦干动物的头皮。使用解剖显微镜观察动物颅骨的顶部。
将针头连接至立体定位仪固定装置,并定位前囟。将针头置于动物头部正上方,轻轻接触前囟。以前囟为参考点,调整目标区域的坐标。
将植入物固定在立体定位仪支架上。将植入物置于动物头部上方,并缓慢下降至目标区域。用针头将一滴约35 µL的超级胶水均匀涂抹在植入区域。
缓慢向下移动固定器,直至其接触颅骨。确保植入空间完全与表面接触。根据制造商的说明准备外科水泥。
精确固定位置后,使用毛刷逐滴在颅骨及植入物的下部均匀涂抹三层薄而均匀的水泥。各层需形成U形结构,以进一步增强植入物的结构支撑。
保持种植体的螺纹部分无粘结剂,以确保连接顺畅无阻。每层等待约四分钟使其干燥。干燥后,小心取下夹持器,直至其完全与种植体分离。
操作植入物时务必格外小心,因为植入物可能会意外地从动物颅骨上脱落。使用浸有生理盐水的棉签润湿动物的皮肤及切口部位。在植入物基部上方切开皮肤。
使用一对镊子将组织合拢,并在每2厘米组织处滴加一滴组织手术胶以闭合切口。在切口部位及下方组织浸润1%至2%的利多卡因。同时给予动物500微升乳酸林格液进行水化。
将小鼠放入已预热至37摄氏度的清洁单只饲养笼中。在笼内制备一小盘湿润的食物颗粒,以便小鼠在术后数小时内易于取食。记录动物术后的体重。
动物必须给予酮洛芬,在手术后立即以及接下来的两天内,剂量为每千克体重5毫克。确保经颅直流电刺激仪已充满电。
将阳极和阴极电缆连接到经颅直流电刺激仪,并将其放置在模拟实验区域附近。将针型电极固定在立体定位仪支架上。将加热平台温度设置为 37 摄氏度。
打开吸入麻醉系统上的氧气流量计,调节至每分钟1升。将小鼠放入麻醉诱导室中。打开异氟烷挥发罐至3%,使动物接受异氟烷作用四分钟。
在动物处于诱导室期间,使用无菌注射器将体电极填充0.9%生理盐水溶液。将动物从诱导室中取出,并将其胸部置于体电极上方。轻轻地将麻醉面罩滑至小鼠鼻部并固定。
将异氟烷输出浓度降至1.5%。用生理盐水填充植入物和针型电极,小心地将两者连接。根据您的实验方案调整刺激时间和电流强度。
稍后在tDCS系统上验证接触质量。启动刺激,观察电流在20秒内逐渐上升至所选数值。
并在设定时间内保持稳定。然后,在该阶段结束时再次逐渐降低。按下控制按钮以启动控制。
观察电流在20秒内逐渐上升至选定值,然后在其余刺激期间逐渐下降一次,最后在刺激结束时再次连续上升至选定值,并随之连续下降。刺激阶段完成后,小心将动物转移至预热至37摄氏度的笼子中,静置10分钟。
本方案采用经颅直流电刺激(tDCS)刺激小鼠大脑皮层,刺激部位位于前囟前1毫米处。该图显示了tDCS刺激方案后的统计结果和基因表达情况。每日刺激强度为0.35毫安,持续10分钟。
该tCDS植入物在第1天至第5天均表现出自我可行性,各天之间的接触质量无显著差异。在模型大脑中存在多种tCDS刺激方案。应根据实验所依据的具体条件选择相应的方案。
刺激区域、电流强度、刺激时长以及电极放置位置。在本实验方案中,我们旨在通过已知的经颅直流电刺激(tDCS)技术,以350微安电流持续刺激10分钟,从而调节小鼠的运动皮层。观看本视频后,您将能够对小鼠进行tDCS操作。
进行手术操作时,每只动物可能需要长达四分钟的时间。在手术过程中使用小鼠时,必须充分考虑动物护理指南,并在术后对动物进行适当的护理,以确保动物在研究期间保持健康。我们还建议在植入物放置后等待五到七天再进行实验,因为动物对创伤的生理反应可能会影响生物学结果。
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本研究探讨了经颅直流电刺激(tDCS)在小鼠动物模型中的应用,旨在研究tDCS对精神疾病相关的生物学效应。文中提供了一种用于实施tDCS的电极植入详细实验方案,强调了理解刺激参数及其对行为和生物学反应影响的重要性。
在小鼠中进行经颅直流电刺激(tDCS)提供了一个受控的临床前平台,可用于探究与神经精神疾病相关的神经调节机制。该模型能够系统性地评估刺激参数及其对皮层基因表达的影响,从而支持在早期靶点验证中获得可预测的可信度。该方法通过在临床探索之前实现机制层面的风险排除,弥补了关键的转化鸿沟。
这种小鼠tDCS模型适用于从早期发现到临床前验证的连续研究过程,可在临床转化之前实现系统的假设检验和参数优化。