May 22nd, 2020
在这里,我们提出了一个优化的协议,使用荧光显微镜快速和半定量测量异质细胞系统中跨体中的配体受体相互作用。
基于细胞的分析允许观察和定量反式粘附相互作用,而无需冗长的蛋白质纯化或专用设备。尽管此处测试的蛋白质相互作用与神经生物学相关,但该方法可应用于细胞间发生蛋白质粘附的任何研究领域。转染 HEK-293T 细胞 48 小时后,从 6 孔板中收获细胞进行聚集。
首先,用 PBS 洗涤每个孔两次。接下来,为了轻轻解离细胞,向每个孔中加入 1 毫升 10 毫摩尔 EDTA,然后在 37 摄氏度下孵育板。孵育 5 分钟后,轻轻敲击板以分离细胞,并将每个孔收获到单独的 15 mL 锥形管中。
在室温下以 500 x g 离心试管 5 分钟。当细胞沉淀时,通过用实验条件标记微量离心管的顶部来准备六个孵育管。应使用 GFP 和 mCherry 的每种排列。
从 15 毫升锥形管中取出上清液,并将细胞重悬于 500 微升培养基中。使用血细胞计数器,对每个锥形管中的细胞进行计数。然后将来自每种条件的 200, 000 个细胞分装到适当的孵育管中,进行总体积为 500 微升的一对一混合。
在评估下一节中描述的基线聚集后,将孵育管置于室温下的慢管旋转器中。为了评估聚集,在基线和 60 分钟后再次,从孵育管中吸取 40 μL 移液到带电的显微镜载玻片上。将细胞添加到微量离心管中后,应尽快进行基线采集。
在绿色和红色通道的荧光下对载玻片进行成像。对于每张幻灯片,在一个焦平面上捕获三个不同视野的图像。用目标蛋白、目标突变蛋白或目标配体转染 HEK-293T 细胞,并与荧光蛋白共转染。
将表达目标蛋白的细胞群与表达目标配体的细胞群混合,并在 60 分钟后评估聚集。在绿色和红色通道中捕获的图像叠加中,聚集显示为黄色点。细胞不表达任何突触配体的条件显示最小的聚集。
此外,当两个群体中只有一个表达突触配体时,表现出最小的聚集。当两个细胞群表达不相容的粘附分子时,未表现出聚集。具有相容粘附分子的条件在孵育 60 分钟后表现出明显的聚集。
令人惊讶的是,目标突变蛋白比野生型蛋白表现出明显更多的聚集,这表明点突变增强了蛋白质结合能力。许多粘附分子的突变通常与神经发育、神经精神和成瘾障碍有关。通过这种技术,人们可以筛选疾病相关点突变对反式相互作用的影响。
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本研究提出了一种优化的协议,用于在HEK-293T细胞中通过荧光显微镜法快速且半定量地测量反式配体-受体相互作用。该方法允许量化与神经生物学相关的蛋白质粘附相互作用,并可能适用于其他研究领域。