2025年7月11日
本方案描述了一种经济高效的方法,用于纯化、扩增和表征小鼠来源的高度均一的骨髓间充质干细胞(BMSCs)。该方法有助于获得大量具有高增殖和分化潜能的BMSCs,可支持小鼠模型研究并推动临床前研究的进展。
我们的研究提供了一种低成本的方法,用于纯化和扩增均一的小鼠骨髓间充质干细胞。该方法有助于研究人员获得足量的高质量细胞,这些细胞具有较强的增殖和分化能力。骨髓干细胞研究中的一个关键挑战是建立一种简单且高效的骨髓间充质干细胞分离方案。本方法通过避免干扰,使骨髓间充质干细胞实现侧向生长。该方法采用第三代传代,不添加外源性生长因子,并保留造血细胞以支持干细胞的健康与功能。
[指导教师] 首先,将已处死的小鼠浸入75%乙醇中5分钟。使用无菌解剖剪,在后肢跟腱附近做一个约1厘米长的切口。然后,在后肢周围做环形切口,暴露远端胫骨。从切口处向上朝髋部方向剥离皮肤,以去除双侧后肢的皮肤。沿髂骨剪开,使股骨头与髋骨分离。使用无菌手术刀,尽可能去除胫骨和腓骨上的肌腱和肌肉,以便后续冲洗操作。将清理干净的骨骼放回含有2%青霉素和链霉素的PBS培养皿中,然后转移至无菌操作台。取一个50毫升注射器,安装随注射器附带的针头。用20毫升α-MEM培养基充满注射器,然后更换为1毫升注射器所配的针头。在无菌操作台内,用剪刀剪去分离后的股骨或胫骨的两端。将针头插入骨的切割端,将骨髓冲洗至含有完全α-MEM培养基的100毫米细胞培养皿中。持续冲洗,直至骨骼明显变苍白,表明骨髓已成功提取。使用1毫升移液器枪头反复吹打40次,以分散任何细胞团块。接着,将细胞悬液通过40微米细胞滤网过滤至50毫升离心管中,以去除碎片、组织残渣及未分散的团块。用完全α-MEM培养基将总体积调至15毫升,并将过滤后的细胞悬液转移至100毫米培养皿中。双手持皿,轻轻以“8”字形摇晃15次,使细胞均匀分布于皿内。最后,将培养皿置于37°C、5%二氧化碳培养箱中,培养5天。该图展示了骨髓基质细胞从初始提取到第三代传代培养过程中的形态学演变。新鲜提取的骨髓细胞主要为单核细胞,视野中可见散在的脂滴。培养至第5天时,开始出现纺锤形细胞,融合度达到约60%至80%,到第7天时细胞密度进一步增加。从第一代到第三代,骨髓基质细胞保持纺锤形或梭形形态,形成清晰的单层结构,集落相互连接,未见细胞质颗粒化或核碎裂等凋亡迹象。流式细胞术证实,CD29、CD44和Sca-1在骨髓基质细胞中高表达,而内皮细胞和造血细胞谱系标志物CD31和CD45的表达可忽略不计。标志物定量分析进一步证实,与CD31和CD45相比,CD29、CD44和Sca-1的表达水平显著升高。
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本研究介绍了一种从小鼠骨髓中纯化和扩增高度均一的骨髓间充质干细胞(BMSCs)的经济有效方法。该方案不仅简化了分离流程,还增强了所获得BMSCs的增殖与分化能力,推动了利用小鼠模型开展的临床前研究。
稳定纯化和扩增同质的小鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs)对于临床前模型构建和转化医学研究至关重要。本实验方案可稳定获得高质量且表型经过验证的BMSCs,支持早期发现阶段的可靠靶点验证和机制性风险排除。标准化的BMSC操作流程可降低生物学变异,提高研发项目中的预测可信度。
该方案整合了早期发现与临床前模型开发的接口,为先导化合物的鉴定和转化研究奠定了基础。