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通过免疫印迹优化非洲 爪蟾 卵母细胞和胚胎中的蛋白质分析
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JoVE Journal Biochemistry
Optimized Analysis of Proteins from Xenopus Oocytes and Embryos by Immunoblotting

通过免疫印迹优化非洲 爪蟾 卵母细胞和胚胎中的蛋白质分析

Full Text
618 Views
09:32 min
September 19, 2025

DOI: 10.3791/69139-v

Charlotte R. Kanzler1, Michael D. Sheets1

1Department of Biomolecular Chemistry,University of Wisconsin School of Medicine and Public Health

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

本文描述了一种通过免疫印迹分析非洲 爪蟾 卵母细胞和胚胎蛋白质的方案。描述了收集步骤,然后是与样品处理、SDS-PAGE、转移、抗体染色和成像相对应的步骤。该协议强调研究具有内源性抗体和针对蛋白质亲和标签的抗体的翻译调节蛋白复合物。

在动物的一生中,硫酸盐的决定不断发生,从而促进成年有机体的正常发育和健康。这些决定取决于指硫酸盐调节剂的特定蛋白质。我们研究的目标是找到控制这些关键调节因子合成的机制。

除了提供免疫印迹和非洲爪蟾卵母细胞和胚胎的详细概述外,我们的方案还深入了解了该模式生物常见的挑战,例如抗体采购。通过深入研究双尾 C 的结合和抑制机制,我们的研究有助于建立比较其他转化调节剂的信息基础。要开始处理细胞进行免疫印迹,请在每个胚胎或卵母细胞中加入 10 微升冷冻细胞裂解缓冲液,用双去离子水稀释至一倍浓度。

使用微杵,在冰上均质样品。将试管放入台式离心机中,在4摄氏度下以5, 000g旋转样品10分钟,以沉淀碎屑,包括蛋黄和不溶性色素。将上清液转移到干净的 1.5 毫升管中,确保沉淀在转移过程中不会受到干扰。

向收集的上清液中加入等体积的两倍Laemmli样品缓冲液,并补充有5%体积重量的2-巯基乙醇。将混合物在 95 至 100 摄氏度下加热 10 分钟,使蛋白质变性。现在,从包装中取出 4% 至 12% 的 bis-tris SDS 预制凝胶,并撕下凝胶底部的贴纸。

将凝胶插入缓冲坝对面的电极组件中,并将整个组件放入垂直电泳槽中。然后,用Tris-MOPS-SDS运行缓冲液填充电极组件和罐底。轻轻地将凝胶梳和移液器运行缓冲液取出到孔中,以消除气泡并平衡缓冲液。

现在,将 5 微升预染色的蛋白质标准品加载到第一个孔中,将每个制备的样品 10 微升加载到剩余孔中。将盖子放在电泳槽上并将其连接到电源。然后,将电压设置为 200 伏以启动电泳。

一旦样品缓冲液染料正面离开凝胶,就停止电泳。在电泳完成之前,开始在转印夹中组装转印夹层。在玻璃烤盘中装满冷冻转印缓冲液,并在组装过程中将所有转印材料浸入该缓冲液中。

将转印夹放入盘中,黑色的一半靠在底部,白色的一半朝上,夹子向左打开。将一两块纤维海绵平放在转印夹的黑色一半上。将两张 0.35 毫米纤维素色谱纸切割成一定尺寸后,将一张放在海绵上。

电泳完成后,从电泳槽中取出凝胶。使用凝胶盒打开杆,小心地撬开凝胶板,同时确保凝胶保持附着在一侧。使用凝胶释放剂从凝胶顶部修剪孔。

将仍附着在塑料盒的一半上的凝胶放在滤纸上,然后取出剩余的半盒,使凝胶保持平放在纸上。接下来,切割一块 0.45 微米的硝酸纤维素膜以匹配凝胶的尺寸。从保护纸上取下膜,在转印缓冲液中短暂润湿,然后小心地将其放在凝胶顶部。

然后,在硝酸纤维素膜上铺上第二张滤纸。使用滚筒轻轻但牢固地压出所有气泡。在滤纸顶部堆叠一两个额外的纤维海绵以完成三明治。

关闭转印盒并将其夹紧以密封组装好的三明治。然后,将封闭的转印夹层插入转印芯中,夹子朝上,并确保夹子的黑色面朝向芯的黑色面。将转印芯放入电泳槽中。

在水箱中加入冰袋和搅拌棒,确保搅拌棒可以自由旋转。用冷冻的转移缓冲液填充罐,直到设备完全浸没,然后将盖子固定在顶部。将设备连接到电源,匹配电极颜色,并将条件设置为 100 伏,搅拌棒旋转一小时。

转移完成后,小心地打开盒并拆卸三明治。取下硝酸纤维素膜并标记与凝胶接触的一侧。然后,将硝化纤维素膜放入一个小容器中,使其平放在底部。

用丽春红染色剂完全覆盖膜,然后在摇杆上轻轻摇晃 5 到 10 分钟。倒入丽春红染色剂后,用双去离子水冲洗膜数次,直到去除多余的染色剂并且蛋白质条带在泳道中可见。然后,如图所示执行膜封闭、抗体孵育和洗涤步骤。

二抗孵育和洗涤完成后,膜就可以进行成像了。在黑暗的房间里,打开胶片显影剂并让它预热。剪下两块足够大的保鲜膜,以完全覆盖膜。

使用镊子,将硝酸纤维素膜面朝上放在第一个正方形的保鲜膜上。在 1.5 毫升试管中,混合等体积的增强型化学发光鲁米诺和增强剂试剂。然后,使用大约一毫升的混合物覆盖大多数膜。

使用保鲜膜轻轻纵膜,确保整个表面均匀涂覆并孵育一分钟。然后,用镊子抓住膜并轻轻抖掉液体,去除多余的ECL试剂。将膜面朝上放在第二个正方形的保鲜膜上,将其松散地折叠在膜上,然后将膜牢固地粘在放射自显影盒中。

接下来,按照所示步骤在暗室中使用放射自显影胶片对膜进行成像。实现所需的蛋白质可视化后,将显影膜与夜光标记对齐,并将它们用作指南,将预染色的蛋白质标准品标记在膜上的位置。成像完成后,小心地从保鲜膜上取下膜并将其浸入 TBSTW 中以洗掉残留的 ECL 试剂。

膜的丽春红染色证实了成功的蛋白质转移。在卵母细胞样本中未检测到内源性 B1 蛋白,但在第 7 期和第 10.5 期胚胎样本中以约 107 千道尔顿的浓度清晰检测到。使用 Bicc1 抗体在所有阶段的注射样品中检测到较小的 70 k0 千道尔顿蛋白条带,表明 HA-Bicc1 C 端融合成功表达。

HA 抗体仅在注射样品中检测到相同的 70 千道尔顿条带,证实了 Bicc1 抗体对融合蛋白的特异性。使用 CNOT1 抗体在所有样品中检测到两个高分子量条带,分别约为 250 和 270 千道尔顿。在所有样本中都检测到 54 千道尔顿 DDX6 蛋白的表达,但在 10.5 期胚胎中明显降低。

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