Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

兔子模型中的跨胸超声心动图检查

Published: June 1, 2019 doi: 10.3791/59457
* These authors contributed equally

Summary

在这里,我们一步一步地描述在兔子模型中执行超声心动图的详细协议。我们展示了如何正确获取不同的超声心动图视图和成像平面,以及人类和兽医患者常用的临床超声心动图系统中可用的不同成像模式。

Abstract

大型动物模型,如兔子,对临床前转化研究很有价值。与人类和其他大型动物模型(如狗和猪)相比,兔子的心脏电生理学相似。然而,与其他大型动物模型相比,兔子模型具有较低的维护成本的额外优势。使用超声心动图对心脏功能进行纵向评估,如果实施得当,是临床前评估心力衰竭新疗法的有用方法,减少喷射分数(例如心脏再生)。正确使用这种非侵入性工具需要按照国际准则实施标准化检查协议。在这里,我们一步一步地描述由兽医心脏病学家监督在兔子模型中进行超声心动图的详细方案,并演示如何正确获取不同的超声心动图视图和成像平面,以及临床超声心动图系统中常用的临床成像模式,用于人类和兽医患者。

Introduction

大型动物模型中心脏功能的纵向评估是一种强有力的研究方法,通常用于评估治疗缺血性和非缺血性心肌病的新疗法的效果。在可用于临床前研究的几种心血管成像技术中,超声心动图因其非侵入性和可移植性特性而得到广泛应用。在有经验的手,超声心动图也是一个非常可重复的成像技术,研究心脏解剖学以及收缩和舒张功能的心脏。

大型临床前动物模型,如猪、狗和兔子,对于临床前转化研究1、2、3至关重要。事实上,新疗法(如心脏再生医学)在心肌病设置中的潜在益处需要在大型临床前模型中进行广泛的假说测试,然后才能考虑供人类使用2、4.与其他大型临床前模型相比,兔子模型具有一些优点,包括维护成本低,与小鼠和大鼠相媲美。然而,与小鼠和大鼠相比,Ca+2运输系统和心脏电生理学在兔子中与人类相似,其他大型动物模型(如狗和猪)相似,从而增加了兔子的转化潜力。型号1,5.因此,兔子作为一种大型的实验前临床模型,在临床前转化研究中具有独特的成本平衡和可重复性。

兔子在使用人类和兽医患者常用的临床超声装置进行超声成像的可维护性方面,具有额外的优势,从而充分利用了谐波成像和最先进的技术。技术。为此,首选频率相对较高(高达 12 MHz)的扇区传感器(也称为相位阵列),例如新生儿/儿科心脏病学中使用的传感器。在兔子临床前模型中的超声心动图检查允许使用现代超声心动图单元(例如连续波多普勒(CWD)中的多种视图和不同模式,对收缩和舒张功能进行完整评估,脉冲波多普勒(PWD)和组织多普勒成像(TDI)。

回声心动图是一种依赖于操作员的技术,因此需要根据国际准则对该技术进行广泛的培训和核心知识。通过视频的可视化,可以促进此培训的一部分,并详细解释如何获得不同的超声心动图视图。实现高超声心动图成像能力,以及开发标准化协议和正确技术,对于尽量减少操作员的影响和生成可靠的定量数据至关重要,因为需要严格科研。

对于兔子和其他大型动物模型用于超声心动图的系统和实验室设置,有必要考虑一些注意事项。对于心脏功能的标准跨胸超声心动图评估,超声系统必须包括以下模式:二维模式(B模式或2D)、运动模式(M模式)、彩色多普勒以及CWD、PWD和TDI。此外,该机器应安装完整的心脏分析和测量软件,以及足够的内部硬盘空间,以存储足够的高质量数字静止图像和视频循环,以便离线分析。有些系统使用线性阵列传感器;然而,为了获得最佳心脏成像效果,具有小扫描头直径的相控阵扇区传感器是首选,因为这些传感器允许超声波更容易通过狭窄的闭周空间。对于兔子,我们使用相对较高的频率传感器(高达12 MHz)。动物的成像位置对于获得高质量的图像至关重要。因此,建议在超声心动图检查期间获得所有标准成像平面的左右侧侧卧位。为此,建议使用与胸部心脏区域重合的切口的桌子(图1A)。此凹槽表便于传感器进入将扫描的胸部区域,因此允许操作员手保持动物最佳扫描位置的自由流动。将动物置于横向卧位位置会导致心脏向传感器下降和肺升高,并通过体间空间拓宽超声波光束的进入窗口,从而改善整体成像质量 (图 1A)超声心动图检查应以盲视方式进行,并遵循美国兽医内科学院心电图委员会和美国回声心电图学会/欧洲心血管成像协会6,7,8

我们的科学团队的一部分与兽医教学医院的心脏病服务有关,该医院每天为兽医患者(如狗和猫)提供服务,并为此接受兽医心脏病学和超声心动图,及其不同的成像模式,以及在成像不同尺寸的动物患者和胸腔符合这种技术的丰富经验。此外,我们通常使用超声心动图在兔子模型引起的心肌病9心脏功能的纵向评估。在这里,我们描述了一个逐步的超声心动图方案,用于在大型临床前模型(如兔子)中使用临床超声单元评估心脏功能。该协议适用于当前的国际准则8,并包括基于我们在临床和实验环境中的经验的实用建议。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

此处所述的实验由西班牙穆尔西亚大学伦理研究委员会批准,并根据欧盟委员会指令 2010/63/EU 进行。所述步骤是在标准操作协议下执行的,这些规程是工作计划的一部分,并非完全为了拍摄本文附带的视频而执行。

1. 准备兔子

  1. 在继续之前,首先在同一注射器中注射氯胺酮(10毫克/千克)与麦地胺(200微克/千克)的均质组合,对动物进行麻醉,这将减轻兔子手术的压力。
    注:使用麻醉还可以以可预测的方式降低心率,从而减少个体间变异性,并具有提高整体成像质量的额外好处。如视频所示,用手术毯盖住头部,以帮助在麻醉注射过程中保持动物的镇定。
    1. 通过确认存在肌肉松弛、无苍白反射、皮面运动和嗅探,验证动物在10-20分钟内是否完全麻醉。后两个体征(下颌运动和嗅觉)的存在,反过来又是麻醉深度降低的最早迹象。即使很少需要,如果预期需要长时间的延迟才能完成程序,也应考虑重新剂量(例如,初始麻醉剂量组合的一半)。
      注意:虽然动物在注射后的第一个+5分钟内会迅速入睡,但建议在尝试操纵动物之前,允许麻醉的深层。这种延迟将避免困扰兔子,否则可能会产生心动过速,并在超声心动图检查(例如线心检查)期间对某些参数的成像准确性和可重现性产生不利影响。
    2. 一旦动物被麻醉,使用剪发器从胸部的皮肤去除头发。从颈线下方开始,继续到左右忧郁症区域的水平,以及中间线的亚西波地区(图1B)。
    3. 右前肢内脸的1-3厘米2,以及左右后肢的中庭区域(图1B)。
  2. 将兔子放在热毯或加热垫上以避免手术过程中体温过低,在电极上涂上合适的导电凝胶,并将其放置在四肢的被扫描区域。用胶带固定电极。
  3. 验证系统屏幕上是否显示正确的心电图信号;通常同时进行1引线心电图追踪,足以在整个超声心动图研究中同步监测心律(图1A图1C)。
    注:除了心率外,还监测呼吸速率和温度。呼吸速率可以通过超声心动图像中胸腔运动的发生率进行目视监测,而温度应通过直肠探头进行监测。这些参数应在开始时、然后每 10 分钟和过程结束时进行监控。兔子在麻醉过程中不会呕吐10,11;因此,在超声心动图检查之前,不经常建议禁食兔子。

Figure 1
图 1.准备和定位兔子的超声心动图。(A) 具有切口的表,与要成像的心脏区域重合。(B) 从胸部取下头发。(C) 连接心电图电极以监测心脏.(D) 在进行超前超声心动图检查时,操作人员的定位。请点击此处查看此图的较大版本。

2. 心脏的截面长轴(护身符)视图

  1. 要获得心脏的腰形长轴 (PSLAX) 视图,将兔子置于右侧侧卧位位置,用手术胶带将前肢伸出远离胸腔(图 1A图 1C)。
    1. 为了达到最佳的成像质量,保持胸腔区域的皮肤尽可能平坦,以增加穿透力,提高整体成像质量,同时对动物进行成像非常重要。为此,用一只手握住前肢远离胸腔,同时使用自由手识别任何皮肤褶皱和口袋,从上到下将这些褶皱平平,并将任何皮肤折叠从胸部移向兔子的侧和背部。这对年长和较大的兔子尤其重要,因为兔子的皮肤过多和皮下脂肪组织会降低图像质量。
      注:胸部的心脏区域应位于表格的切口部分。然而,请记住,在这个位置,腹部有一个自然倾向,向切口移动,并产生一个积极的压力,取代心脏颅骨,然后干扰良好的超声心动图成像。为了防止这种情况,腹部完全放在桌子上是很重要的,为了达到这个目的,通过温和的按摩将腹部器官轻轻地移向动物的胆小区域(图1A图1C)是很有用的。
  2. 对于超声心动图成像,用右手握住传感器,同时用左手操作超声心动图系统的控制,如图1D所示。
    1. 为了保持良好的皮肤接触,将未稀释的乙醇涂到皮肤上,然后将足够的超声波传输凝胶涂抹到传感器的头部。
  3. 接下来,将传感器与右半截面的皮肤紧密定位,在第二至第三个间质空间的水平上,距离右半截线约 1-3 厘米,传感器方向标记指向动物的右肩,相对于中线大约 30° 的角度 (图2A)。这应该产生心脏正确 PSLAX 的图像(请参阅代表性结果)。
  4. 在屏幕上显示 2D 心脏图像后,下一步是调整超声波单元控制以获得最佳图像。主要有:
    1. 深度和缩放控件:使用这些控件优化感兴趣区域。图像的深度必须足够,以便在每个图像上可以看到心脏结构。使用缩放工具更好地评估感兴趣的结构,例如阀门和传单的完整性。
    2. 总增益和时间增益补偿(即,实时获得不同深度的增益设置):控制灰度和手动增益,以尽量减少背景噪声并最大化心脏结构的划定。这些参数在兔子中尤其重要,因为心室心肌的回波性较差。
    3. 动态范围或压缩:使用此控件可调整图像显示的灰色阴影数。设置动态范围,使血库变暗,组织明亮。这将导致更好的心内边界定义,这对获得左心室体积非常重要。
    4. 扇区宽度:从宽扇区(90°)开始检查,并在心脏概述后,如果特定区域需要更好地成像,请减小扇区宽度。减小扇区大小通过提高帧速率来提高时间分辨率。当使用 2D 超声心动图指导多普勒检查时,这一点尤其重要。
  5. 为了在成像兔子的同时保持传感器的位置,并减轻操作者疲劳,使用食指将手固定在动物的桌子或胸部,而其他手指则握住传感器(图2A)。
  6. 在正确的 PSLAX 视图中获取心脏的两个主要成像平面。
    1. 找到一个成像平面,它纵向分割心脏,并可以识别心脏的所有四个腔室(两个心室和两个心室);此外,当使用宽视野时,心的顶点也应出现在图像左侧(请参阅"代表结果"部分)。
    2. 相对于成本空间以及超声束的颅角和多索文拉角执行传感器的细微运动,如扫描、摇动和旋转,以获得半截面长轴视图的其他成像平面(图 2A,B。在其他成像平面中,可以识别左心室流出轨迹 (LVOT) 和主动脉(参见代表性结果)。
  7. 图像方向:请注意,心底将位于扇区图像的右侧。
  8. 获得适当的成像平面后,使用 B 模式评估心脏的整体功能,并使用彩色多普勒评估所有瓣膜的血流以及中间隔膜 (IVS) 的完整性。
    注: 始终保存不同视图和平面的图像,以便进行离线分析。

Figure 2
图 2.如何获得PSLAX的心脏视图。(A- B)定位传感器以获取心脏 PSLAX 视图的两个不同平面(请参阅文本中的说明)。请点击此处查看此图的较大版本。

3. 心脏的半轴短轴视图

  1. 传感器在胸部的同一位置,同时显示一个对齐良好的PSLAX,对传感器进行约90°(图3A)的逆时针旋转,以获得右半身短轴(PSSAX)视图。这一次,传感器方向标记应指向兔子的左肩。
    注:为帮助在旋转传感器时将传感器保持在胸部的相同位置,请使用左手从传感器的电源线执行旋转,如图3B所示。
  2. 在半轴短轴视图中,通过沿心脏轴扫描传感器获得三个成像平面:中心室、斜面阀和高基,肺动脉 (PA) 和主动脉瓣 (AoV) 在视图中。
    1. 在心室中成像平面中,在心形肌肉和弦肌腱水平(图 3C)处分割心脏,在图像底部显示右心室 (RV) 和左心室 (LV)(参见代表性结果)。
    2. 使用 B 模式评估 LV 的径向和圆周收缩和松弛,并检查区域壁运动异常。
    3. 使用 M 模式,在轨迹球的帮助下,将光标实时移动在 2D 图像上,然后将光标放置在 LV 的中间,在两个毛骨肌肉之间,垂直于 IVS 和左心室自由壁 (FW) (图 3C)。在屏幕上显示 M 模式图像后,存储图像以进行离线分析。在心率较高的兔子中,使用较高的扫描速度在心脏周期(例如,150 mm/sec)更好地分离心脏事件。
    4. 通过将传感器扫向头方区域(图3D),获得斜面阀(MV)平面。使用 B 模式和 M 模式评估 MV 传单的完整性和动性。将光标沿LV中间放置,垂直于IVS(图3E),以获取有关MV相对于IVS的偏移的详细信息。
    5. 进一步扫描传感器,在高基级(也称为 AoV 平面)处产生成像平面;图 3F - H),其中可以识别 AoV 及其传单、右心室流出轨迹 (RVOT)、PA 和左右耳塞 (LA)(参见代表性结果)。
    6. 图像方向:请注意,PA 将位于扇区图像的右侧。
    7. 要完全可视化 PA 及其分叉,请使用更大的血管,有时,传感器的颅位位(一个闭周空间)。
    8. 使用 B 模式评估这些结构的大小和形状(例如,充血性心力衰竭时左心房大小增加),并使用彩色多普勒和 PWD 在 PV 级别记录血流(流出)的速度,将样本体积置于略低于打开光伏传单(图3G)。最后,使用 M 模式,将光标沿 AoV 和 LA 放置 (图 3H)。
  3. 使用以下主要控件和调整来获得足够的颜色流多普勒图像:
    1. 由于颜色扇区位于感兴趣区域,请尽可能减小色段和血流方向之间的角度。
    2. 色扇宽度:调整这个阀区,以提高帧速率,改善色流信息。
    3. 基线和脉冲重复频率 (PRF):调整色条和 PRF 上的基线,以允许显示更高的速度。颜色条顶部和底部的数字表示颜色混叠发生之前的最大可检测速度。
      注: 与光谱脉冲多普勒相比,混叠在颜色流处理中更为频繁,因为分配了一部分脉冲来获取横截面图像,从而损害了色流多普勒信息。
    4. 颜色增益:首先,将其增加到刚刚开始创建背景杂色的程度,然后降低到优化颜色流成像的级别。
  4. 使用以下主要控件获得足够的光谱多普勒图像:
    1. 光标位置:使这个平行于血流方向;至少,保持在一个角度 < 30°。
    2. 门位置:它是光标行中与采样站点对应的标记。将其放在主动脉和肺瓣膜之后,放在耳欲使瓣膜瓣膜的传单提示处。
    3. 浇口大小:使用最小设置,但获取小回流流除外。
    4. 基线:根据血流的方向选择基线。当血液流向传感器(例如肺和主动脉流动)时,或当血液流向传感器时(例如,眼膜瓣流),将其放在顶部。
    5. 比例:根据血流速度选择这个,通常比获得的速度高25%。
    6. 多普勒增益:用它来增强多普勒信号。增加增益,直到显示颜色。
    7. 多普勒信号的着色:当多普勒光谱较弱时使用洋红色,因为它使速度更锐利。
    8. 壁滤波器:用它来减少心脏壁产生的低频噪声量。
    9. 扫描速度:使用更高的扫描速度,以方便时间测量。

Figure 3
图 3.如何获取 PSSAX 视图及其不同的成像平面。(A) 传感器的位置,以获得在毛细管肌肉水平上的 PSSAX 视图。(B) 演示从 PSLAX 视图切换到 PSSAX 视图时,左手的作用有助于旋转传感器。(C) M 模式光标在 PSSAX 视图的毛细管肌肉平面中的位置。(D) 传感器的位置,以获得线瓣阀平面上心脏的PSSAX视图。(E) M 模式光标在 PSSAX 视图的 MV 平面中的位置。(F) 传感器的位置,以获得在PSSAX视图中的AV平面。(G) 显示彩色多普勒和 PWD 样本体积的定位,以评估 PV 的流出。(H) M 模式光标在 PSSAX 视图的 AoV 平面中的位置。LV = 左心室;RV = 右心室;FW = LV 自由壁;AoV = 主动脉阀;RVOT = 右心室流出轨道;PV = 肺瓣膜;PA = 肺动脉;洛杉矶 = 左中庭;RA = 右中庭。请点击此处查看此图的较大版本。

4. 心形四室视图

  1. 要获得 Apical 4 腔 (AP4C) 视图,将兔子置于左侧侧卧位位置,通过手术胶带将前肢伸离胸腔区域(图 4A)。以与上述类似方式保持胸部皮肤扁平(步骤 2.1.1)。胸部的心脏区域应位于桌子的切口部分。同样,通过温和的按摩,腹部在移动腹部器官后,应在桌子上得到很好的支撑。
  2. 将超声波凝胶涂到传感器上,然后通过表中的切口进入心脏,并将其与左半目肌的皮肤紧密地放置,在具有中胸线的4-5间质空间的水平上,传感器方向标记指向兔子的背部(在左肩骨的方向) (图 4B)。这样,传感器与心脏顶点正交,超声波束定向到心脏底部。
    1. 如有必要,如有必要,将传感器向上移动一个成本空间,直到第 4 个成本间空间(通常称为"窗口购物")。
    2. 到达适当的间质空间(可能因兔子的大小和/或年龄而异),观察心脏从顶点到心脏底部的图像,这是典型的心脏形状,可以看到所有四个腔室,左侧和右侧图像顶部和脑后室的分心室(参见图4C、D和代表性结果)。
    3. 图像方向:请注意,LV 将位于扇区图像的右侧。
  3. 避免在此视图中提前缩短顶点,以便心脏的典型 AP4C 视图应给出具有 IVS 中间的 LV 的子弹形图像(图 4CD )。如果顶点为圆角,则 LV 可能会缩短;因此,向下移动传感器一个成本空间和/或传感器的倾斜。
    1. 使用 B 模式检查区域壁运动异常,并具有 LV 函数的全局视图。使用彩色多普勒评估三角阀的流量,并使用 PWD 并将样本体积定位在 MV 传单提示的水平上,以获得 MV 流入光谱的图像(图 4C)。
    2. 使用 TDI 模式并将样品体积放置在斜面阀环的隔膜和侧边(图 4D)。
    3. 使用 M 模式并将光标与横向 MV 环形对齐,以获得斜面环形平面收缩偏移 (MAPSE)。将图像存储在每种模式下,以便离线分析心脏功能。

Figure 4
图 4.如何获取心脏的 AP4C 和 AP5C 视图。(A) 兔子在左侧侧侧下放置,以观察心脏的 AP4C 视图。(B) 传感器的位置,以获得心脏的 AP4C 视图。(C) 在 MV 传单提示处定位样本量,以评估 MV 流入。(D) 用于 TDI 分析 MV 环形侧心肌速度的样本体积的位置。(E) 传感器的位置,以获得心脏的 AP5C 视图。(F) 用于 PWD 分析整个 AoV 流出的样本体积的位置。LV = 左心室;RV = 右心室;MV = 斜面阀;洛杉矶 = 左中庭;RA = 右中庭;AoV® 主动脉阀。请点击此处查看此图的较大版本。

5. 心形5室视图

  1. 从传感器在与 AP4C 视图中相同的位置开始,执行柔和的倾斜(图 4E),直到 LVOT 和 AoV 进入视野,这是心脏的 apical 5 室视图 (AP5C)(参见代表性结果)。
  2. 使用 B 模式评估 LVOT、AoV 传单的移动以及 LV 型腔大小和功能。
  3. 使用彩色多普勒模式评估整个AoV的流出,并使用PWD通过将样品量定位在AoV的正后面来评估该阀的流量(图4F)。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

心脏的半轴长轴视图

图 5A显示了右侧 PSLAX 视图的成像平面,其中心脏的 4 个腔室清晰区分。在此视图中,您可以识别右心室 (RV)、三头气门 (TV)、IVS、LV、FW 以及斜面阀 (MV)。当顶点在此视图中图像左侧清晰可见且 LV 未缩短时,可以使用磁盘的双平面方法(修改辛普森的规则)准确估计 LV 体积,如图5B,C8 所示,为了精度,应该与 AP4C 视图中的 LV 体积的类似测量相结合,特别是当使用的兔子模型出现壁运动异常时。图 5D显示了右侧 PSLAX 的另一个成像平面,其中 LVOT 和主动脉 (Ao) 也出现在其中。用于精确测量 LVOT 的卡钳的位置也如图5D所示。

Figure 5
图 5.在PSLAX心脏视图中获得的成像平面。(A) 显示心脏4个腔室的成像平面.(B) 端舒张和 (C) 结束收缩图像,演示辛普森分析 LV. (D) 成像平面的方法,其中 LVOT 和主动脉在心脏 PSLAX 视图中出现。LV = 左心室;RV = 右心室;IVS = 中间的隔膜;奥 = 大塔;LVOT = 左心室流出轨道;洛杉矶 = 左中庭;RA = 右中庭;MV = 斜面阀;电视 + 三头气门;FW = LV 的自由壁;PC = 心包。请点击此处查看此图的较大版本。

心脏的半轴短轴视图

图6A中,显示了心脏在毛细管肌肉和和弦肌腱平面水平上的正确PSSAX视图。在此视图中可以识别 RV、IVS、LV 和 FW,以及前向 (AL) 和后侧 (PM) 毛细管肌肉 (图 6A)。在此视图中,区域跟踪工具用于测量端面 (CAd) (图 6B) 和端圆 (CA) (图 6C) 中的圆周面积,这允许使用公式:

CSA_CAd-CAs/CAd=100。

图 6D显示了 PSSAX 中 M 模式跟踪的示例,其中还演示了对 LV 结构的不同测量的卡钳位置,前缘到前缘。这些测量值提供有关 LV 结构尺寸的有用信息。因此,从三个连续心跳中测量 LV 端舒张直径 (LVD) 和 LV 端收缩直径 (LVD) 允许使用以下公式计算 LV 缩短分数 (%SF):

SF%= LVDd-LVD/LVD

以及使用 Teichholz 公式的 LV 收缩和舒张卷 (LVVd、 LVV):

(7°(LVD)3//(2.4+LVD)

LV 弹出分数 (LVEF (%)随后根据公式 LVEF®(LVVd-LVV)/(LVVd=100)计算。

在 PSSAX 视图中的 MV 平面水平处的 M 模式跟踪如图6E所示,其中还显示了用于测量斜线阀的 E 点到分离 (EPSS) 的卡钳的位置。图 6F显示了 AoV 平面水平心脏的 PSSAX 视图示例,其中演示了用于测量主动脉根直径 (AoD) 的卡钳的位置以及左心房尺寸 (LAD)。

图6G显示了使用彩色多普勒和脉冲波多普勒的PV流出分析示例。注意带有彩色多普勒的光伏的蓝色流出,这表明观察到的流量正在远离传感器。图 6H显示了如何量化 PV (PEP PV) 的弹出前周期以及使用体积时间积分 (VTI) 的 PV 流出的示例。

Figure 6
图 6.在 PSSAX 视图中获取的成像平面。(A) 在毛细管肌肉平面处的 PSSAX 视图的代表性图像。(B) 结束舒张和 (C) 结束心内边界收缩跟踪,以测量总 CSA。(D) 在 PSSAX 视图中在毛细管肌肉水平上获得的 M 模式跟踪。(E) 在 MV 级别 PSSAX 视图中获取的 M 模式跟踪示例。(F) 在 AV 平面上具有代表性的 PSSAX 的 2D 图像(G) 彩色多普勒引导 PWD 跟踪 PV 流出。(H) 使用从 PV 流出获得的 PWD 信号演示 VTI 跟踪。LV = 左心室;RV = 右心室;IVS = 中间的隔膜;FW = LV 的自由壁;AL = 前侧毛细管肌肉;PM = 后皮毛细管肌肉;LVDd = 端膜的左心室直径;LVD = 左心室直径在末端;PC = 心包;EPSS = 电子点到分离分离;AoD = 主动脉根直径;LAD = 左心房尺寸;MV = 斜面阀;电视 + 三头气门;PEP PV = 肺瓣的喷射前期;ET PV = 肺瓣的弹出时间;VTI PV = 肺瓣的体积时间积分。请点击此处查看此图的较大版本。

Apical 4 室视图

在 AP4C 视图中使用颜色多普勒的 MV 流入示例如图7A所示。请注意 MV 流入的主要红色,指示流量正向传感器移动。因此,描述和了解血液如何流过心脏结构的有用助记器是首字母缩写BART(蓝色离开,红色对传感器)。使用 PWD,可以评估 MV 流入频谱,如图7B所示,其中早期 (E) 和后期 (A) 填充波在直径期间很容易区分。图7C图7D分别显示了TDI在侧壁和隔膜壁上评估的MV环状的心肌组织速度示例。收缩组分用 S 波表示,而 E' 和 A' 波对应于直径早期加注 (E') 和晚填充 (A') 组分期间斜面阀环状的心肌运动。

五室视图

图 7E显示了位于 LVOT 上的彩色多普勒示例,该图位于 5 室视图中。请注意,与上述 BART 助记符一致,观察到的蓝色表示血流正在远离传感器。图 7F显示了如何使用 PWD 信号对 AoV 流出进行量化的示例,以评估 AoV 的 VTI、收缩弹出时间 (ET) 和 AoV (PEP AoV) 的弹出前周期。

Figure 7
图 7.AP4C 和 AP5C 视图。(A) AP4C 视图中颜色多普勒的示例。(B) 在 AP4C 中 MV 流入的 PWD 信号的代表性图像,其中 E 波对应于早期舒张填充,A 对应于在隔膜期间心房收缩组件。(C-D)在 AP4C 视图中使用 TDI 从 MV 环形的侧 (C) 和隔膜 (D) 段获得的心肌速度信号的代表性图像。S 对应于 systole,而 E' 对应于早期填充阶段,A' 对应于在直径期间后期填充阶段。(E) 在 AP5C 视图中从 AoV 获得的颜色多普勒信号示例。(F) 使用从 AoV 流出获得的 PWD 信号演示 VTI 跟踪。AoV = 主动脉阀;VTI = 卷时间积分;PEP = 喷射前期;ET = 弹出时间。请点击此处查看此图的较大版本。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

我们描述了一个在兔子的心脏功能参数的超声心动图检查协议,代表一个大型临床前模型1,2,3。本文所述的逐步方法应视为指导,通过对超声心动图基本原则的补充研究和超声成像的基本知识,将帮助研究人员通过实践和互补和专家指导,在相对较短的时间内提供高质量的数据。

使用此处描述的超声心动图协议,有几个关键步骤可以提高结果的价值和可重复性。首先,确保胸部的皮肤无发和清洁;为此,我们建议在应用超声波凝胶之前,用乙醇清洁皮肤,以去除多余的天然皮肤油脂。其次,虽然可以图像胸部在一个苏平的位置,肺倾向于膨胀和减少已经难以成像胸壁与较差的回显性,因此,兔子的左或右卧位位置和传感器的应用胸腔通过专用的成像表的切口切口是提高整体成像质量的最佳方法。然后,操作超声系统的研究人员应花费一些时间创建具有优化成像设置的心脏成像预设,这对于提高所有视图的整体成像质量至关重要,并且将来也会缩短您的成像时间成像会话。考虑到兔子胸部成像不良,要掌握的一些最重要的控制设置是总增益和时间增益补偿(参见步骤2.4.2)。系统化,始终有条不紊地进行超声心动图检查也很重要。为此,养成以相同顺序获取所有成像视图和成像平面的习惯,可以避免在进行研究时丢失重要信息。此外,在成像分析期间,建议在采集的图像中至少连续三个心脏周期中执行每种模式的所有测量。最后,在成像和离线分析期间使观察者失明对于避免偏倚和增加转化医学结果的价值非常重要。考虑到上述所有因素,以及根据现行准则7、8应用成像和分析原则,将确保使用纵向研究的可重复性在大型动物模型(如兔子)中,通过超声心动图评估心脏功能。

鉴于不同年龄的兔子的体型和脂肪成分的变异性以及特定的实验设置,需要改变该技术,例如传感器的细微运动(例如,扫地、旋转)成本空间,以达到所需的成像平面。因此,此处描述的协议必须解释为一个起点,应适应涉及此技术的研究项目的特定目标。

虽然临床超声心动图系统在大多数研究中心广泛可用,但本文描述的技术存在一些局限性。事实上,从超声心动图研究获得的图像质量在很大程度上取决于超声波机器的精密度和技术、操作者的技能与专业知识以及患者个体特征。引言中描述了超声波设备必须满足的最低技术特性。因此,设备不足(例如线性阵列传感器)构成了在兔子模型中使用超声心动图技术的基本限制。此外,超声心动图技术及其结果受到操作者的强烈影响。因此,如果操作员缺乏足够的经验和实际培训,可能会极大地限制获得适当质量的标准化图像。同样,缺乏经验的操作员在获得测量时也可能出错,即使测量是在技术质量优良的超声心动图图像上执行的。此外,如上所述,一些限制是兔子模型固有的,如年龄,更具体地说,通过超声心动图研究的兔子的大小和身体脂肪组成。根据我们的经验,重达2.5公斤的幼兔具有低皮下和胸内脂肪沉积。这个型板阶段提供了最好的声学窗口,并提供更清晰和更清晰的超声心动图图像和很少的人工制品。随着体型和身体脂肪成分的增加,超声心动图研究的质量和准确性变得有限,在这种情况下,操作者的技能最终将对实现最佳成像起到根本作用。

我们目前使用超声心动图在兔子模型的心脏功能诱导的性心肌病诱导的性心肌病,并测试干细胞疗法的这个情况9,12,13。此处描述的技术也可用于涉及缺血症或瓣膜性心脏病的其他临床前研究。

另一种心血管成像技术是心脏磁共振(CMR),其主要优点是更好的心内膜-心肌定义,这转化为对LV体积和收缩功能14的更准确估计。然而,CMR 受到其高成本和缺乏便携性的限制,因此在大多数研究中心的可用性有限。同样,CMR在舒张功能分析方面性能相对较差,因此使超声心动图成为心脏收缩和舒张功能纵向评价的更好整体选择。

根据我们的经验,本文所述协议中使用的麻醉制度是安全的,并取得了可重复的结果,而不会因麻醉引起的心肌功能出现显著抑郁。然而,重要的是要标准化每个实验室的麻醉制度,以确保您的特定实验设置可重现的结果。诱导麻醉后,在有经验的手超声心动图检查可以在15分钟内完成。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

这项工作部分得到了以下国家的支持:塞内卡基金会、西班牙穆尔西亚大学(JT)和联合王国雷丁大学(中央供资)。资助者在研究设计、数据收集和分析、决定出版或编写手稿方面没有任何作用。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Bluesensor Medicotest 13BY1062 Disposable adhesive ECG lectrodes
Domtor (Medetomidine) Esteve CN 570686.3 Veterinary prescription is necessary
HD11 XE Ultrasound System Philips 10670267 Echocardiography system.
Heating Pad Solac CT8632
Imalgene (Ketamine) Merial RN 9767 Veterinary prescription is necessary
Omnifix-F 1 ml syringe Braun 9161406V
S12-4 Philips B01YgG 4-12 MHz phase array transducer
Ultrasound Transmision Gel (Aquasone) Parker laboratories Inc. N 01-08

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Pogwizd, S. M., Bers, D. M. Rabbit models of heart disease. Drug Discovery Today Disease Models. 5, 185-193 (2008).
  2. Gandolfi, F., et al. Large animal models for cardiac stem cell therapies. Theriogenology. 75, 1416-1425 (2011).
  3. Harding, J., Roberts, R. M., Mirochnitchenko, O. Large animal models for stem cell therapy. Stem Cell Research & Therapy. 4, 23 (2013).
  4. Chong, J. J., Murry, C. E. Cardiac regeneration using pluripotent stem cells--progression to large animal models. Stem Cell Research. 13, 654-665 (2014).
  5. Del, M. F., Mynett, J. R., Sugden, P. H., Poole-Wilson, P. A., Harding, S. E. Subcellular mechanism of the species difference in the contractile response of ventricular myocytes to endothelin-1. Cardioscience. 4, 185-191 (1993).
  6. Sahn, D. J., DeMaria, A., Kisslo, J., Weyman, A. Recommendations regarding quantitation in M-mode echocardiography: results of a survey of echocardiographic measurements. Circulation. 58, 1072-1083 (1978).
  7. Thomas, W. P., et al. Recommendations for standards in transthoracic two-dimensional echocardiography in the dog and cat. Echocardiography Committee of the Specialty of Cardiology, American College of Veterinary Internal Medicine. Journal of Veterinary Internal Medicine. 7, 247-252 (1993).
  8. Lang, R. M., et al. Recommendations for cardiac chamber quantification by echocardiography in adults: an update from the American Society of Echocardiography and the European Association of Cardiovascular Imaging. European Heart Journal Cardiovascular Imaging. 16, 233-270 (2015).
  9. Talavera, J., et al. An Upgrade on the Rabbit Model of Anthracycline-Induced Cardiomyopathy: Shorter Protocol, Reduced Mortality, and Higher Incidence of Overt Dilated Cardiomyopathy. BioMed Research International. 2015, 465342 (2015).
  10. Borkowski, R., Karas, A. Z. Sedation and anesthesia of pet rabbits. Clinical Techniques in Small Animal Practice. 14, 44-49 (1999).
  11. Cantwell, S. L. Ferret, rabbit and rodent anesthesia. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 4, 169-191 (2001).
  12. Giraldo, A., et al. Percutaneous intramyocardial injection of amniotic membrane-derived mesenchymal stem cells improves ventricular function and survival in non-ischaemic cardiomyopathy in rabbits. European Heart Journal. 36, 149 (2015).
  13. Giraldo, A., et al. Allogeneic amniotic membrane-derived mesenchymal stem cell therapy is cardioprotective, restores myocardial function, and improves survival in a model of anthracycline-induced cardiomyopathy. European Journal of Heart Failure. 19, 594 (2017).
  14. Bellenger, N. G., et al. Comparison of left ventricular ejection fraction and volumes in heart failure by echocardiography, radionuclide ventriculography and cardiovascular magnetic resonance; are they interchangeable? European Heart Journal. 21, 1387-1396 (2000).
  15. Flachskampf, F. A., et al. Cardiac Imaging to Evaluate Left Ventricular Diastolic Function. Journal of the American College of Cardiology Cardiovascular Imaging. 8, 1071-1093 (2015).

Tags

医学 问题 148 动物模型 心脏成像 超声心动图 脉冲波多普勒 组织多普勒成像 超声波.
兔子模型中的跨胸超声心动图检查
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Giraldo, A., Talavera López,More

Giraldo, A., Talavera López, J., Brooks, G., Fernández-del-Palacio, M. J. Transthoracic Echocardiographic Examination in the Rabbit Model. J. Vis. Exp. (148), e59457, doi:10.3791/59457 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter