24. Dezember 2009
Seit James Thomson et al eine Technik entwickelt, im Jahr 1998 zu isolieren und zu wachsen hES in Kultur, haben Einfrieren von Zellen für die spätere Verwendung und Auftauen und Ausbau von Zellen aus einem gefrorenen Lager zu wichtigen Verfahren in der Routine-hES-Zell-Kultur durchgeführt. Da hES-Zellen sehr empfindlich auf die Belastungen von Einfrieren und Auftauen sind, ist besondere Sorgfalt. Hier zeigen wir die richtige Technik für die schnelle Auftauen hES-Zellen aus flüssigem Stickstoff Aktien, Plattieren sie auf embryonalen Feeder-Zellen, und langsam Einfrieren für die langfristige Lagerung.
Hallo, ich bin Leah Kent von STEM Gen. Heute zeigen wir Ihnen, wie man humane embryonale Stammzellen auftaut und einfriert. Beginnen wir also.
Um humane embryonale Stammzellen aufzutauen, wird ein Kryoröhrchen aus flüssigem Stickstoff entnommen und schnell aufgetaut. In einem Wasserbad von 37 Grad Celsius wird die Zellsuspension vom Kryoröhrchen in ein kegelförmiges Reagenzglas überführt, mit menschlichem ES-Zellkulturmedium verdünnt und zentrifugiert. Um ein kleines Zellpellet zu bilden, wird das Überstand entfernt und das Zellpellet im Reagenzglas mit frischem menschlichem ES-Zellkulturmedium resuspendiert, bevor es auf eine Vertiefung einer sechswelligen Zellkulturschale ausgesät wird, die zuvor mit einer bestrahlten Maus-Füttererschicht beschichtet wurde.
Ein Tag vor dem Auftauen menschlicher ES-Zellen eine Feeder-Schicht aus bestrahlten murinen embryonalen Fibroblasten oder Mes in Meth-Kultur in einem Brunnen einer mit Gelatine beschichteten 6-Loch-Gewebekulturplatte ansäen. Die Platte über Nacht bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid inkubieren.
Um einen effizienten und erfolgreichen Auftauvorgang sicherzustellen, stellen Sie sicher, dass sämtliche erforderlichen Geräte und Reagenzien bereitstehen, bevor Sie den menschlichen ESL aus dem flüssigen Stickstoff entnehmen. Entnehmen Sie mithilfe einer Metallzange ein kryogenes Gefäß mit menschlichem E ESL aus dem flüssigen Stickstoff-Lagertank.
Rollen Sie das Gefäß zwischen den behandschuhten Händen drei bis fünf Sekunden lang. Um den Frost zu entfernen, notieren Sie die Informationen auf dem Etikett des Gefäßes mit Metallpinzette. Tauchen Sie das Gefäß in ein 37 °C warmes Wasserbad ein.
Schwenken Sie das Gefäß vorsichtig und überprüfen Sie häufig, aber kurz, den Auftauvorgang, indem Sie das Gefäß gegen das Licht halten, um die Größe des Eiskristalls zu beobachten. Tauchen Sie den Verschluss des Gefäßes nicht in das Wasserbad ein, da dies die Zellen kontaminieren könnte.
Wenn nur noch ein kleiner Eiskristall vorhanden ist, tauchen Sie das Gefäß in Ethanol, um es in einem sterilen Sicherheitswerkbank zu sterilisieren, und überführen Sie den Inhalt des kryogenen Gefäßes direkt auf den Boden eines 15-Milliliter-Konischgefäße. Fügen Sie langsam vier Milliliter menschliches ES-Zellkulturmedium dem Gefäß hinzu.
Schwenken Sie das Röhrchen vorsichtig, um die Zellen kontinuierlich zu mischen, während das neue Medium dem Röhrchen zugegeben wird. Zentrifugieren Sie die humanen E-Zellen fünf Minuten lang bei 200 ×g, während sich die Zellen in der Zentrifuge befinden. Entnehmen Sie die zuvor vorbereitete Meth-Fütterer-Platte aus dem 37 °C-Inkubator und beschriften Sie sie mit den entsprechenden Informationen für humane ESL-Zellen, wie Zelllinie, Passagenummer und Auftau-Datum.
Aspirieren Sie das Kulturmedium der MEFs und geben Sie einen Milliliter PBS in die Vertiefung. Bringen Sie das pelletierte humane E ESL zurück in den biologischen Sicherheitswerkbank und aspirieren Sie vorsichtig den Überstand. Achten Sie darauf, das Zellpellet nicht zu aspirieren, entfernen Sie jedoch so viel Überstand wie möglich, da diese Lösung DMSO aus dem Einfriermedium.Resus. enthält.
Suspendieren Sie das Pellet vorsichtig, indem Sie 2,5 Milliliter humanen ESL-Kulturmedium hinzufügen. Entfernen Sie mit einer 5-Milliliter-Glaspipette durch dreimaliges bis viermaliges Auf- und Abpipettieren das PBS vom MEF-Fütterungszellager. Geben Sie dann langsam und vollständig alle 2,5 Milliliter der humanen ES-Zellsuspension in die vorbereitete Vertiefung der 6-Loch-Platte.
Stellen Sie die Platte in den 37 Grad Celsius warmen Inkubator und schieben Sie die Platte vorsichtig von vorne nach hinten sowie von Seite zu Seite, um die Zellen gleichmäßig in der Vertiefung zu verteilen. Um zu verhindern, dass sich die Kolonien in der Mitte konzentrieren. Drehen Sie die Platte nicht im Kreis.
Lassen Sie die Zellen am Tag nach dem Auftauen über Nacht bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid anheften. Entfernen Sie das Medium mit eventuell vorhandenen schwebenden Zellen und geben Sie 2,5 Milliliter frisches humanes ES-Zellkulturmedium in die Vertiefung.
Inkubieren Sie die Platten über Nacht bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid und setzen Sie die Kultivierung fort, bis die Kolonien zur Passage bereit sind. Das Einfrierprotokoll für humane ES-Zellen beginnt mit gesunden, mittelgroßen Kolonien humaner ES-Zellen, die in einer Sechs-Well-Platte kultiviert wurden. Nach der Inkubation der Kultur mit dem Enzym Collagenase IV werden die Kolonien mit einer 5-Milliliter-Glaspipette abgeschabt, in einem kegelförmigen Röhrchen gesammelt und centrifugiert, um ein lockeres Zellpellet zu bilden.
Nach dem Absaugen des Überstandes wird das Zellpellet resuspendiert. Zunächst in menschlichem ES-Zellkulturmedium und anschließend mit zwei x Kryokonservierungsmedium verdünnt. Die Zellen werden gleichmäßig in Aliquots zu je einem Milliliter verteilt und in kryogenen Gefäßen eingefroren.
Während sich die Zellen in der Zentrifuge befinden, beschriften Sie die kryogenen Gefäße innerhalb des Sicherheitswerks mit der Passagenummer der Zelllinie und dem Einfrierdatum. Die typische Dichte zum Einfrieren menschlicher ES-Zellen beträgt eine Vertiefung von Zellen aus einer sechswelligen Platte pro kryogenem Gefäß. Nachdem die menschlichen ES-Zellen zentrifugiert wurden, bringen Sie das Reagenzglas zurück in den biologischen Sicherheitswerkschrank.
Aspirieren Sie den Überstand aus dem Röhrchen. Achten Sie darauf, das locker gepackte Zellpellet nicht zu stören. Suspendieren Sie das Zellpellet mit der geeigneten Menge an menschlicher ESL-Kultur.
Geben Sie 0,5 Milliliter menschlicher ESL-Kulturmedium pro kryogenem Vial. Seien Sie sehr vorsichtig beim Pipettieren, da menschliche ES-Zellen besser überleben, wenn sie in relativ großen Koloniestücken eingefroren werden. Fügen Sie langsam unter vorsichtigem Schütteln des Röhrchens die entsprechende Menge zweifach konzentriertes menschliches ES-Zell-Einfriermedium zu den Zellen hinzu.
Nachdem das Einfriermedium hinzugefügt wurde, indem die Lösung äußerst vorsichtig ein- bis zweimal schnell, aber sanft pipettiert wird, fügen Sie vorsichtig ein Milliliter der Zellsuspension zu jeder Kryoröhre hinzu. Überführen Sie die Röhrchen in einen Isopropanol-Einfrierbehälter und stellen Sie sie über Nacht in einen Gefrierschrank bei minus 80 Grad Celsius. Die Zellen gefrieren im Isopropanol-Einfrierbehälter am folgenden Tag mit einer Geschwindigkeit von einem Grad Celsius pro Minute.
Überführen Sie die gefrorenen Vials mithilfe einer Metallzange schnell in einen flüssigen Stickstofflagerbehälter. Am ersten Tag nach der Einbringung können kleine Kolonien von menschlichen ES-Zellen durchscheinend erscheinen und unter dem Mikroskop schwer zu erkennen sein. Da neu eingefrorene humane eESL dazu neigen, sich relativ langsam zu proliferieren.
Sie können einige Tage in der Kultur benötigen, um sich als etablierte Kolonien zu zeigen. Wir haben Ihnen gerade gezeigt, wie man humane embryonale Stammzellkulturen auftaut und einfriert. Das war's also.
Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihren Experimenten.
In diesem Artikel werden die korrekten Techniken zum Auftauen und Einfrieren menschlicher embryonaler Stammzellen (hES-Zellen) gezeigt. Dabei wird auf die Bedeutung einer sorgfältigen Handhabung während dieser Prozesse hingewiesen, um die Zellviabilität und eine erfolgreiche Kultur sicherzustellen.
Die zuverlässige Kryokonservierung und Wiederherstellung menschlicher embryonaler Stammzellen bildet die Grundlage für die Aufrechterhaltung pluripotenter Zellbanken in der regenerativen Medizin und bei Arbeitsabläufen zur Krankheitsmodellierung. Die korrekte Technik minimiert den Verlust der Vitalität während der Einfrier- und Auftauzyklen, fördert eine konsistente experimentelle Reproduzierbarkeit und verringert den Zellverlust bei der frühen Zielvalidierung. Diese Verfahren ermöglichen die Langzeitlagerung und den bedarfsgerechten Zugriff auf genetisch stabile hES-Zelllinien für nachgeschaltete Screening- und mechanistische Untersuchungen.
Die Kryokonservierung ist in den Entdeckungsprozess integriert, indem sie die Einlagerung von Zelllinien zwischen den Phasen der Zielvalidierung, Assay-Entwicklung und präklinischen Bewertung ermöglicht und so die genetische Integrität für Längsschnittstudien bewahrt.