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Mikrobiologie
0 Ansichten • 2:44 Min. • September 26th, 2025
Beginnen Sie mit Agarplatten, die Kolonien von Wildtyp- und mutierten Stämmen von Streptomyces coelicolor, einem filamentösen Bodenbakterium, enthalten.
Legen Sie ein steriles Deckglas über einen Bereich mit dichtem Koloniewachstum, in dem die Luftfilamente, d. h. Filamente, die sich über die Kolonieoberfläche erstrecken, deutlich sichtbar sind.
Drücken Sie vorsichtig auf das Deckglas, um die Luftfilamente und die zugehörigen Sporen auf die Deckglasoberfläche zu übertragen.
Nehmen Sie anschließend einen Objektträger mit Eindeckmedium und montieren Sie das Deckglas mit der Zellseite nach unten, um die bakteriellen Strukturen zu erhalten.
Legen Sie den Objektträger auf einen Mikroskoptisch, geben Sie einen Tropfen Immersionsöl auf das Deckglas und richten Sie das Objektiv aus.
Erfassen Sie mit Hilfe der Phasenkontrastmikroskopie Bilder der Luftfilamente sowohl von Wildtyp- als auch von mutierten Stämmen.
Wildtyp-Filamente weisen gleichmäßig große, regelmäßig verteilte Sporen auf.
Im Gegensatz dazu weisen mutierte Stämme Defekte wie pralle Filamente, unregelmäßige Sporen oder lysierte Sporen auf, was phänotypische Unterschiede in der Entwicklung zwischen dem Wildtyp und den Mutanten zeigt.
Um ein Deckglaslifting von Bakterienwachstum vorzubereiten, verwenden Sie eine sterile Pinzette, um ein steriles Deckglas aufzunehmen, und legen Sie das Deckglas auf eine MS-Agarplatte, wo das Bakterienwachstum dicht ist. Drücken Sie mit einer Pinzette vorsichtig auf die Rückseite des Deckglases, um eine ausreichende Übertragung von Bakteriensporen und Hautmyzel zu gewährleisten. Nehmen Sie das Deckglas von der Platte und legen Sie es in einem 45-Grad-Winkel mit dem Zellmaterial auf die Oberfläche eines Objektträgers, der einen 15-Mikroliter-Tropfen 50 % Glycerin enthält.
Lassen Sie das Deckglas auf das Glycerin fallen, wodurch die Luftblasen reduziert werden. Um die Phasenkontrastmikroskopie in verschiedenen Zeitintervallen durchzuführen, legen Sie den vorbereiteten Objektträger auf den Mikroskoptisch und geben Sie einen Tropfen Immersionsöl in die Mitte des Deckglases. Drehen Sie das 100-fach-Phasenobjektiv an Ort und Stelle, und stellen Sie den Kondensatorrevolver auf die richtige Phaseneinstellung ein.
Sobald die Objektivlinse mit dem Öl in Kontakt gekommen ist, verwenden Sie nur den Feineinstellknopf, um das Bild zu fokussieren. Untersuchen Sie mehrere Sichtfelder, um auffällige und konsistente Unterschiede zwischen mutierten Stämmen und dem Wildtyp zu erkennen. Wie die Fähigkeit, Sporen zu bilden, die Größe und Form der Sporen und die Gesamtzahl der Sporen.
Diese Studie untersucht die Entwicklungsdifferenzen zwischen Wildtyp- und Mutantenstämmen von Streptomyces coelicolor mittels Phasenkontrastmikroskopie. Die Methodik beinhaltet das Übertragen von Luftfilamenten und Sporen auf Deckgläser für eine detaillierte Abbildung und Analyse.
Mittels Phasenkontrastmikroskopie lassen sich morphologische Phänotypen in fadenförmigen Bakterien direkt visualisieren, wodurch die Validierung von Zielstrukturen in einem frühen Stadium unterstützt wird, indem genetische Störungen mit beobachtbaren Entwicklungsdefekten verknüpft werden. Diese Methode bietet eine kostengünstige, hochauflösende Möglichkeit, die Genauigkeit der Sporenformation – einen Indikator für zelluläre Differenzierung und Stressantwortwege, die für die antimikrobielle Wirkstoffentwicklung relevant sind – zu bewerten. Durch die Quantifizierung der phänotypischen Penetranz in Mutantenstämmen können F&E-Teams die Risiken bezüglich ihrer Zielhypothesen verringern, bevor sie in aufwändige Screening-Kampagnen investieren.
Diese Methode passt in frühe Entdeckungsworkflows, bei denen nach einer genetischen Störung eine phänotypische Bewertung erfolgt, um Zielstrukturen für die Identifizierung von Hits und die Optimierung von Leitverbindungen in Programmen zur Antibiotika-Entdeckung zu priorisieren.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026