JoVE Encyclopedia of Experiments
Mikrobiologie
0 Ansichten • 3:12 Min. • March 31st, 2026
Beginnen Sie mit zwei Platten, die C. elegans-Würmer enthalten, die grünes fluoreszierendes Protein, markiert SKN-1, exprimieren, einen Transkriptionsfaktor, der im Darmzytoplasma lokalisiert ist. Diese Würmer enthalten außerdem intestinale Lipofuscin-Granulate, die Autofluoreszenz zeigen.
Eine Platte ist mit nicht-pathogenen Bakterien als Kontrollgruppe besetzt, die andere mit pathogenen Bakterien als Testgruppe.
In der Testgruppe induziert das vom Erreger produzierte Wasserstoffperoxid oxidativen Stress, was die SKN-1-Translokation in die Darmkerne auslöst.
In der Kontrollgruppe bleibt der Großteil von SKN-1 diffus im Zytoplasma verteilt.
Wasche jede Platte mit einem Puffer und überfülle die Würmer in Röhren.
Zentrifuge, um die Würmer zu trennen und den Puffer zu entfernen.
Fügen Sie ein Medium mit Natriumazid hinzu, um sie zu betäuben.
Die Würmer auf Agarose-Pads montieren, Deckfolien platzieren und unter einem Fluoreszenzmikroskop beobachten. Verwenden Sie Autofluoreszenz, um die Kerngrenzen zu visualisieren.
Ein starkes nukleäres SKN-1-Signal im Test im Vergleich zum diffusen zytoplasmatischen Signal in Kontrollen weist auf eine nukleare Relokalisierung hin und bestätigt pathogeninduzierten oxidativen Stress.
Mit einer Pipette geben Sie etwa 100 L4-Larven zu jeder THY-Streptokokken-Saat- und NGM-E.coli-Samenplatten . Verwenden Sie drei Platten pro Bakterienstamm.
Inkubieren Sie die Platten 2 bis 3 Stunden bei 25 Grad Celsius. Anschließend entferne die Platten aus dem Inkubator. Wasche sie mit M9W und sammle die Würmer in 15-Milliliter-Kegelröhren.
Waschen Sie die Würmer dreimal wie zuvor im Zentrifugalschritt. Entferne den Großteil des M9W durch Aspiration. Und fügen Sie 500 Mikroliter M9W mit 2 millimolaren Natriumazid oder Tetramisolhydrochlorid zum Wurmpellet zur Betäubung hinzu.
Inkubieren Sie das Rohr mit Wurmpellets bei Zimmertemperatur für 15 Minuten. Dann geben Sie 15 Mikroliter der Wurmsuspension auf ein vorbereitetes Agarose-Pad. Unter einem Fluoreszenzmikroskop visualisieren Sie die Lokalisierung von SKN-1 mithilfe von FITC- und DAPI-Filtern.
Bildwürmer mit 10- und 20-facher Vergrößerung. Bewerten Sie die Würmer basierend auf drei Lokalisierungsstufen; niedrige Lokalisation, bei der keine nukleare Lokalisation beobachtet wird, mittlere Lokalisation, mit SKN-1 BCGFP im vorderen oder hinteren Teil des Wurms, und hohe Lokalisation, bei der die nukleäre Lokalisierung von SKN-1 BCGFP in allen Darmzellen beobachtet wird.
Dieses Protokoll zeigt, wie man oxidativen Stress, der durch Pathogene in C. elegans induziert wird, mittels Verfolgung der Lokalisation von GFP-markiertem SKN-1 sichtbar macht. Das Verständnis dieses Prozesses ist entscheidend für die Untersuchung zellulärer Reaktionen auf oxidativen Stress in Modellorganismen.
Diese Methode ermöglicht die direkte Visualisierung von pathogeninduzierten oxidativen Stressantworten in einem genetisch zugänglichen Modell und unterstützt die Validierung von Zielstrukturen in frühen Entwicklungsstadien, indem mikrobielle Virulenzfaktoren mit Wirtsstresswegen verknüpft werden. Die quantitative Bewertung der nukleären Translokation von Transkriptionsfaktoren liefert einen mechanistischen Endpunkt zur Absicherung von Hypothesen über Wirt-Pathogen-Interaktionen und Mechanismen oxidativer Schädigungen. Sie bietet ein skalierbares, reproduzierbares System zur Untersuchung von Substanzen oder genetischen Modulatoren, die Stressantwortwege beeinflussen, die für Modelle entzündlicher Erkrankungen relevant sind.
Die Methode fügt sich in den Entdeckungsprozess von der Testung von Zielhypothesen über die mechanistische Validierung bis hin zur präklinischen Priorisierung ein, insbesondere für Signalwege, die oxidativen Stress und Entgiftungsreaktionen beinhalten.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026