Name: Gentransfer an sich entwickelnden Maus Innenohr In Vivo Die Elektroporation (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 22 min 2 s
Description: Lernen Sie Gentransfer im sich entwickelnden Maus-Innenohr mittels in utero Elektroporation. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Genfunktionen während der Hörorganentwicklung.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Wir bedanken uns bei Humana Press für die Erlaubnis, die Mikroinjektion Pipette Herstellung Figur, die ursprünglich auf Seite 130 der Verweis 11 erschienen zu veröffentlichen; Larry Dlugas und Steven Wong, OHSU Abteilung Pädagogische Kommunikation, für die Videografie; Larry Dlugas für Video-Design und-Bearbeitung; Adam M. O &#39;Quinn, Senior Designer, Trion / Envirco für die Gestaltung unserer kundenspezifischen horizontale Laminarströmungshaube und Les Goldsmith für die Bereitstellung der technischen schematische; Monterroso Victor, MW, MS, PhD und Tom Chatkupt, DVM, OHSU Abteilung für Vergleichende Medizin, zur Orientierung mit unseren Tierpflege-Protokoll, chirurgische Techniken, und eine prophylaktische Therapie Analgesie; Marcel Perret-Gentil, DVM, MS, für die gemeinsame Nutzung seiner Handzettel auf tierärztliche Nahttechniken; Edward Porsov, MS, für die Gestaltung unserer Adobe Premiere Pro Video-Mikroskopie Computer-Arbeitsplatz, und Leah und Weiß Jonas Hinckley von LNS Captioning (Portland, OR). Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse aus dem National Institute on Taubheit und anderen, unterstütztr Communication Disorders: DC-und DC-008595 R01 R01 008.595-04S2 (JB) und P30 DC005983 (Oregon Hearing Research Center Core-Grant, Peter Gillespie, Principal Investigator).

1. Ventralen Laparotomie <ol><li> Anesthetize einen Damm, dessen Embryonen sind an embryonalen Tag 11,5 (E11.5; Uhr am Tag ein Vaginalpfropf erkannt wird ist Tag 0,5 der Embryonalentwicklung) durch intraperitoneale Injektion von Natrium-Pentobarbital Narkose-Lösung (7,5 ul pro Gramm Körpergewicht). Arbeiten Anästhesielösung: 180 ul 50 mg / ml Pentobarbital-Natrium-Lösung; 100 L absolutem Ethanol; 320 ul von 65 mg / ml wässrige Magnesiumsulfat (moduliert Uterustonus) und 400 ul Propylenglykol (Fahrzeug mischbar mit wässrigen und organischen Komponenten). </li><li> Beurteilen Sie die Vollständigkeit der Narkose durch die Durchführung Schmerzreize Tests: Squeeze Pfote; Schwanz Prise; und Blink-Reaktion auf die Wange und Tasthaare Touch. Bewerben sterile Augensalbe auf die Hornhaut. </li><li> Rasieren Sie die Bauch-Fell auf dem suprapubischen Bereich um den Brustkorb mit einer Schere und einem feinen Sägeblatt (Oster # 40 Klinge). Desinfizieren Sie den Bauch mit 70% Ethanol, 10% Povidon-Iod (Betadine), eineRunde 70% Ethanol, sequentiell. Bewegen Sie die Maus Bauch nach unten auf einem sterilen Tuch und dann auf einem Heizkissen oder warme Platte (37 ° C) für 2-5 Minuten eingestellt. </li><li> Inzision der Bauchhaut in der ventralen Mittellinie mit Ball-bestückte Schere. Verlängern Sie die Inzision für 10-14 mm. Identifizieren Sie die Linea alba, eine avaskuläre, weiß Bindegewebe Band entlang der ventralen Mittellinie der Bauchwand. Inzision der Linea alba mit Kugel gekippt Schere und erweitern den Schnitt 10-14 mm. Unmittelbar bewässern den Bauch mit vorgewärmtem (37 ° C) Ringer-Laktat-Lösung. </li><li> Externalisieren die beiden Hörner des Uterus mit Ring Zange ohne übermäßigen Druck auf den Nidationsstellen. Spülen Sie die ausgelagerten Uterushörner mit vorgewärmtem, Ringer-Laktat-Lösung. </li></ol> 2. Transuterine Mikroinjektion <ol><li> Fertigen Sie ein dickwandiges, Borosilikatglas Kapillare Mikroinjektion Pipette mit den folgenden Merkmalen: 12-16 μm Außendurchmesser und eine 20-Grad-Schräge. Auf einer Sutter P-97 Pipette Abzieher mit kleinen Kasten Filament, verwenden Sie das folgende Programm: Wärme = Rampe Test plus 3 Einheiten; Druck = 200; ziehen = 0; Geschwindigkeit = 46; Zeit = 100). Mit dem Sutter BV-10 Beveler, verwenden Sie den 104C (Gold) Schleifscheibe mit großem Durchmesser für Pipetten. Resuspendieren Expressionsplasmid bei 3-4 g / ul in Calcium-freier phosphatgepufferter Salzlösung (pH 7,2-7,4). In kristallinen schnell grün zu dem konzentrierten DNA, vorsichtig vortexen für 30 Sekunden, und Spin bei 10.000 g für 10 Sekunden. Die minimale Menge an schnell grün erforderlich ist, um visuell verfolgen die Wirksamkeit der Injektion wird empirisch bestimmt. Verfüllen die abgeschrägte Pipette mit dem DNA / schnell grüne Lösung. Verbinden des geladenen Mikroinjektion Pipette auf die Pipettenhalter der Injektor (Picospritzer mit&gt; 99% reinem Stickstoff als Quellengas). </li><li> Durchleuchten die Gebärmutter mit geringer Intensität, Halogenlicht, um den Embryo in seinem Implantationsstelle zu visualisieren. Identifizieren Sie den BEATing Herz, Gehirn Vesikel, Gliedmaßenknospen, im Entstehen begriffenen 4. Ventrikel des Hinterhirn und Auge. Spülen des Uterus alle 2 Minuten mit vorgewärmtem, Ringer-Laktat-Lösung, um die Hydratisierung zu halten. Drücken Sie vorsichtig auf die Gebärmutter, um den Embryo neu zu orientieren und Identifizierung der anatomischen Landmarken oben erwähnt. </li><li> Orient der Embryo, um den primären Kopf Vene, deren vordere und hintere Äste flankieren den mesenchymalen Gebiet, in dem die otocyst wohnt identifizieren. Die otocyst selbst kann nicht durch Durchleuchtung des Uterus werden. Die otocyst in der Mitte zwischen den vorderen und hinteren Äste der primären Kopf Vene, die, zusammen mit dem Hauptstamm der Vene, bilden die Form der Pfosten oder Torpfosten auf einem American-Football-Feld befindet. Die otocyst in der Mitte zwischen den Pfosten. </li><li> Legen Sie die Injektionspipette durch die Gebärmutter in einer Bahn im Einklang mit dem mutmaßlichen Ort der otocyst. Impuls die Mikroinjektorkopfs einmal nach dem Durchlaufen der uteruns zur Visualisierung der Tracer-Farbstoff und die ungefähre die Position der Pipettenspitze. Schieben Sie die Pipette unter Mikrometer-Steuerung und Puls wieder in die Tiefe zu beurteilen. Weiter voranzutreiben Sie die Pipette in die seitliche Kopf Mesenchym und Puls wiederholt. Erfolgreiche otocyst Targeting wird zeigen, die sich verjüngende Form des Ductus endolymphaticus dorsal und der Jakobsmuschel-Form der Apsis. Lassen Sie den Druck auf die Gebärmutter, entfernen Sie die Pipette aus dem Embryo / Gebärmutter in einer Bewegung, und sofort bewässern die Gebärmutter mit vorgewärmtem, Ringer-Laktat-Lösung. </li></ol> 3. In vivo Elektroporation <ol><li> Spülen Sie die Gebärmutter mit Ringer-Laktat-Lösung. Frisch aufgetragen Ringer-Laktat-Lösung ist notwendig, um elektrisch zu koppeln, die Paddel-Stil Elektroden in die Gebärmutter. Befeuchten Sie die Wolfram-Oberflächen der Elektroden mit Ringer-Laktat. Zentrum des eingespritzten otocyst in dem Weg der Elektroden. Sanft komprimieren die Gebärmutter mit der Elektroporation paddles. Die Kathode ist in Kontakt mit der Uteruswand quer zur injiziert otocyst und die Anode in Kontakt mit der Uteruswand benachbart zu der injizierten otocyst. Lösen Sie eine Rechteckimpuls Zug mit dem Fußpedal-Schalter auf der Elektroporator. Die Elektroporation Parameter sind: 5, 50 ms Pulse bei 43 Volt pro Puls und einer 950 ms Zwischenpulsverzögerung. Unmittelbar bewässern die Gebärmutter nach der Impulsfolge wird ausgeliefert. Notieren Sie die aktuelle Lieferung an das Gewebe: 60-100 mAmps ist ausreichend, um epithelialen Vorläuferzellen otic transfizieren. Injizieren und elektroporieren 4-6, E11.5 Embryonen pro Muttertier. </li><li> Durchführen einer zweiten, unabhängigen transuterine Mikroinjektion von wässrigen fluoreszierenden Dextran (Alexa Fluor 488, wenn der Ausdruck Plasmid codiert ein rot fluoreszierendes Protein oder Alex Fluor 594, wenn das Expressionsplasmid kodiert für ein grün fluoreszierendes Protein) in der 4. Ventrikels dieser Embryonen, deren innere Ohren genau gespritzt und mindestens 60 mAmps von Strom pro Puls war deangeliefert bei der Elektroporation. Das fluoreszierende Dextran wird bei der Geburt nachweisbar im Hinterhirn und ermöglichen die Auswahl der Jungtiere, deren innere Ohren wurden während der Embryogenese manipuliert (siehe 3.5). </li><li> Spülen Sie die Uterushörner mit Ringer-Laktat. Setzen Sie die Uterushörner in die Bauchhöhle. Spülen Sie die Gebärmutterhöhle mit 2-4 ml vorgewärmtem, Ringer-Laktat-Lösung und damit der Überlauf abfließen aus dem Inzisionsstelle auf den sterilen Tuch. Ersetzen Sie die Drapierungen bei trockenen, sterilen Material. Nähen Sie die Bauchdecke mit einer nicht schneidenden Nadel und einem resorbierbaren Nahtmaterial 6-0. Wir bevorzugen eine Vorstich, Sperren jede zweite Masche, sowohl für die Bauchdecke und die Haut. </li><li> Trocknen Sie die Dämme &#39;Fell und zu verwalten, eine nicht-steroidale Entzündungshemmer wie Meloxicam durch subkutane Injektion. Bringen Sie den Damm auf die vorgewärmten Erholung Käfig auf einem sterilen Tuch. Überwachen und Aufzeichnen der Dämme &#39;Atmung, Inzisionsstelle Durchgängigkeit und Vagina für blutigen Ausfluss. Blutungen sind rawieder, aber wenn vorhanden und unvermindert, einschläfern den Damm, während sie noch unter Narkose. Notieren Sie sich die Zeit, sie wieder zu sich und versucht, ambulate. Bringen Sie den Damm auf die Maus Kolonie, als sie Anzeichen für Essen und Trinken zeigt, und hat damit begonnen, Nest zu bauen. Normalerweise passiert dies innerhalb von 12 Stunden. </li><li> Bei der Geburt (postnatalen Tag 0), setzen Sie das Flash-Hinterhirn Bereich jeder Welpe im Wurf, den fluoreszierenden Dextran mit einem stereofluorescence Binokular mit einem GFP-oder Texas Red-Filter erkennt nach Bedarf. Zurück zur säugenden Mutter nur jene Welpen, die Rautenhirn Kennzeichnung anzuzeigen. </li></ol> 4. Repräsentative Ergebnisse <img src="/files/ftp_upload/3653/3653fig1.jpg" alt="1" /> Abbildung 1. Elektroporation vermittelte Gentransfer in die Entwicklung von Cochlea. Die E11.5 otocyst wurde mit einem Expressionsplasmids Enhanced Green Fluorescent Protein (EGFP) und elektroporierten injiziert (Puls train-Parameter: fünf, 43-Volt-Impulsen bei 50 ms / 950 ms Puls-und Puls-Verzögerung). A) ein Vertreter des Innenohrs von einer postnatalen Tag 6 (P6), deren Welpen otocyst wurde injiziert und bei E11.5 elektroporiert demonstrieren EGFP-Expression von der Basis durch die Mitte Windung der Cochlea. Die laterale Wand der Cochlea wurde aus der Mitte und der Spitze wiederum nur entfernt. E11.5 Vorfahren, die Anlass zu der Spitze wurden nicht transfiziert. B) Immunfärbung Whole mount in der Cochlea (A) mit dem Haar-Zell-Marker, zeigt Myosin 7a (MYO7A), dass EGFP-Expression folgt die Flugbahn des Corti-Organ und wird grob an die Haarzelle tragenden Sinnesepithel lokalisiert. C) einem Vertreter des Innenohrs von einem Embryo, dessen E18.5 otocyst wurde injiziert und bei E11.5 elektroporiert. Die Laser-Projektion zeigt konfokale EGFP-Expression in MYO7A-positiven sensorischen Haarzellen. D) konfokalen Laser-Projektion des Cochlea-Sinnesepithel aus dem E18.5 Corti-Organ anzeigt EGFP expression in der inneren Haarzellen (IHC), äußeren Haarzellen (OHC), innere phalangial Zellen (IPC), Pfeiler-Zellen (PC) und Deiters &#39;Zellen (DC). Der Balken in (B) gilt für (A).

<ol><li>Gillespie, P. G., Muller, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+by+hair+cells%3A+models%2C+molecules%2C+and+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction by hair cells: models, molecules, and mechanisms.</a> Cell. 139, 33-44 (2009).</li>
<li>Bok, J., Chang, W., Wu, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterning+and+morphogenesis+of+the+vertebrate+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Patterning and morphogenesis of the vertebrate inner ear.</a> Int. J. Dev. Biol. 51, 521-533 (2007).</li>
<li>Kelley, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+cell+fate+in+the+sensory+epithelia+of+the+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Regulation of cell fate in the sensory epithelia of the inner ear.</a> Nat. Rev. Neurosci. 7, 837-849 (2006).</li>
<li>Ohyama, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BMP+signaling+is+necessary+for+patterning+the+sensory+and+nonsensory+regions+of+the+developing+mammalian+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">BMP signaling is necessary for patterning the sensory and nonsensory regions of the developing mammalian cochlea.</a> J. Neurosci. 30, 15044-15051 (2010).</li>
<li>Pan, W., Jin, Y., Stanger, B., Kiernan, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Notch+signaling+is+required+for+the+generation+of+hair+cells+and+supporting+cells+in+the+mammalian+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Notch signaling is required for the generation of hair cells and supporting cells in the mammalian inner ear.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 15798-15803 (2010).</li>
<li>Gubbels, S. P., Woessner, D. W., Mitchell, J. C., Ricci, A. J., Brigande, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+auditory+hair+cells+produced+in+the+mammalian+cochlea+by+in+utero+gene+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Functional auditory hair cells produced in the mammalian cochlea by in utero gene transfer.</a> Nature. 455, 537-541 (2008).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , 8th edn, The National Academy Press. (2010).</li>
<li>Matsuda, T., Cepko, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+expression+of+transgenes+introduced+by+in+vivo+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Controlled expression of transgenes introduced by in vivo electroporation.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 1027-1032 (2007).</li>
<li>Chen, C., Smye, S. W., Robinson, M. P., Evans, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+electroporation+theories%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Med.+Biol.+Eng.+Comput%22%5BJournal%5D)">Membrane electroporation theories: a review.</a> Med. Biol. Eng. Comput. 44, 5-14 (2006).</li>
<li>Saito, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+electroporation+in+the+embryonic+mouse+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">In vivo electroporation in the embryonic mouse central nervous system.</a> Nat. Protoc. 1, 1552-1558 (2006).</li>
<li>Brigande, J. V., Gubbels, S. P., Woessner, D. W., Jungwirth, J. J., Bresee, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroporation-mediated+gene+transfer+to+the+developing+mouse+inner+ear%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Electroporation-mediated gene transfer to the developing mouse inner ear.</a> Methods Mol. Biol. 493, 125-139 (2009).</li>
<li>Morsli, H., Choo, D., Ryan, A., Johnson, R., Wu, D. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+mouse+inner+ear+and+origin+of+its+sensory+organs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Development of the mouse inner ear and origin of its sensory organs.</a> J. Neurosci. 18, 3327-3335 (1998).</li>
<li>Sher, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+embryonic+and+postnatal+development+of+the+inner+ear+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Acta.+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">The embryonic and postnatal development of the inner ear of the mouse.</a> Acta. Otolaryngol. , Suppl 285. 1-77 (1971).</li>
<li>Sheffield, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+vector+tropism+for+supporting+cells+in+the+developing+murine+cochlea%5BTitle%5D)+AND+%22Hear+Res%22%5BJournal%5D)">Viral vector tropism for supporting cells in the developing murine cochlea.</a> Hear Res. 277, 28-36 (2011).</li>
<li>Bedrosian, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+delivery+of+recombinant+viruses+to+the+fetal+murine+cochlea%3A+transduction+characteristics+and+long-term+effects+on+auditory+function%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">In vivo delivery of recombinant viruses to the fetal murine cochlea: transduction characteristics and long-term effects on auditory function.</a> Mol. Ther. 14, 328-335 (2006).</li>
<li>Reisinger, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+the+functional+equivalence+of+otoferlin+and+synaptotagmin+1+in+exocytosis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Probing the functional equivalence of otoferlin and synaptotagmin 1 in exocytosis.</a> J. Neurosci. 31, 4886-4895 (2011).</li>
<li>Magnani, E., Bartling, L., Hake, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+Gateway+to+MultiSite+Gateway+in+one+recombination+event%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">From Gateway to MultiSite Gateway in one recombination event.</a> BMC Mol. Biol. 7, 46(2006).</li>
<li>Perret-Gentil, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPerret-Gentil%2C+M+%22Principles+of+Veterinary+Suturing%22">Principles of Veterinary Suturing</a>. , The University of Texas at San Antonio. Forthcoming.</li>
<li>Oesterle, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aOesterle%2C+A+%22P-1000+%26+P-97+Pipette+Cookbook%22">P-1000 & P-97 Pipette Cookbook</a>. , Sutter. (2011).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Gentransfer in sich entwickelnden Maus Innenohr: Das Innenohr der Maus entwickelt sich aus der Ohrplakode während der ersten Woche der Einnistung Entwicklung 12,13. Von embryonalen Tag 9,5 (E9.5) hat die Plakode eingestülpt und verwandelte sich in einem mit Flüssigkeit gefüllten Vesikel genannt otocyst 2. Otic Vorstufen in der Blase führen zu den sensorischen und nichtsinnlichen Zellen innerhalb des reifen Innenohr sowie die Neuronen, die mechanisch empfindlichen Haarzellen innervi...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td><td> Kommentare </td></tr><tr><td> Micro Sterilisieren Gehäuse </td><td> Roboz </td><td> RS-9900a </td><td> 8X8.5X1.25 Zoll </td></tr><tr><td> Kugel-bestückte Schere </td><td> Fine Science Tools </td><td> 14109-09 </td><td></td></tr><tr><td> Ring Zange </td><td> Fine Science Tools </td><td> 11106-09 </td><td> 4,8 mm ID/6mm OD </td></tr><tr><td> Adson Pinzette </td><td> Fine Science Tools </td><td> 11027-12 </td><td></td></tr><tr><td> Nadeltreiber </td><td> Fine Science Tools </td><td> 12502-12 </td><td></td></tr><tr><td> Allergie Spritzentablett </td><td> Becton Dickison </td><td> 305536 </td><td></td></tr><tr><td> Suture 6-0 </td><td> Syneture </td><td> GL-889 </td><td> 0,7 metrischen Magen-Darm-Naht </td></tr><tr><td> Ringer-Lactat-Injektion USP </td><td> Baxter </td><td> 2B2323 </td><td></td></tr><tr><td> Schnell grün </td><td> Sigma Aldrich </td><td> F7258 </td><td></td></tr><tr><td> Borosilikatglas Kapillare </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 30-0053 </td><td></td></tr><tr><td> Nembutal Natriumlösung </td><td> OVATION Pharmaceuticals Inc. </td><td> NDC 67386-501-52 </td><td></td></tr><tr><td> MgSO4.7H2O </td><td> Fisher Scientific </td><td> M63-500 </td><td></td></tr><tr><td> Propylenglykol </td><td> Fisher Scientific </td><td> P355-1 </td><td></td></tr><tr><td> Ethanol </td><td> Sigma Aldrich </td><td> E7023-500 </td><td></td></tr><tr><td> Meloxicam </td><td> Boehringer Ingeheim </td><td> NADA 141-219 </td><td></td></tr><tr><td> Feinpipettenziehvorrichtung </td><td> Sutter Instruments </td><td> P-97 </td><td> FB255B Box Filament; konsultieren Pipette Kochbuch von Sutter Instrumente </td></tr><tr><td> Mikroelektroden Beveler </td><td> Sutter Instruments </td><td> BV-10 </td><td> 104C Abschrägung Festplatte für große Pipetten, konsultieren Sie in der Bedienungsanleitung Anfasen Theorie </td></tr><tr><td> Mikropipette Halter </td><td> Warner Instruments </td><td> MP-S15T </td><td> Für 1,5 mm Außendurchmesser Pipette und weiblichen Druckanschluss für Picospritzer Schlauch. </td></tr><tr><td> Pinzetten-Stil Elektrode </td><td> Protech International Inc. </td><td> CUY650P5 </td><td> 5 mm Außendurchmesser </td></tr><tr><td> Square Wave Electroporator </td><td> Protech International Inc. </td><td> CUY21EDIT </td><td> Footpedal empfohlenen </td></tr><tr><td> PICOSPRITZER III </td><td> Parker Hannifin </td><td> 051-0500-900 </td><td> Footpedal empfohlenen </td></tr><tr><td> Manuelle Steuerung Mikromanipulator </td><td> Harvard Apparatus </td><td> 640056 </td><td></td></tr><tr><td> Horizontale Laminar-Flow Sterilbank </td><td> Envirco </td><td></td><td> Kundenspezifische Modifikationen an LF 630-10554. Siehe ergänzende Informationen für schematische Kapuze. </td></tr><tr><td> Leica stereofluorescence Sezieren microcope mit Lumencor Sola Light Engine </td><td> Bartels und Stout und Lumencor </td><td> MZ10F mit Lumencor Sola Light Engine </td><td> Footpedals die MZ10F zu konzentrieren und die Sola Light Engine auslösen werden empfohlen </td></tr><tr><td> Alexa Fluor 594 Dextran </td><td> Invitrogen </td><td> D22913 </td><td> 10mg/ml, wässrigen </td></tr><tr><td> Alexa Fluor 488 Dextran </td><td> Invitrogen </td><td> D22910 </td><td> 10mg/ml, wässrigen </td></tr><tr><td> Enviro-dri </td><td> Shepherd Sonstige PapERS </td><td></td><td> <a href="http://www.ssponline.com" target="_blank">www.ssponline.com</a> </td></tr></tbody></table>

gentransfer an sich entwickelnden maus innenohr<em&gt; in vivo</em&gt; die elektroporation

Gene Transfer to the Developing Mouse Inner Ear by In Vivo Electroporation

Die Säugetier-Innenohr hat 6 verschiedene Sinnesepithelien: 3 Cristae in den Ampullen der Bogengänge; Maculae im Utriculus und Sacculus, und das Corti-Organ in der Coiled Cochlea. Die Cristae und Maculae enthalten vestibulären Haarzellen, die mechanische Reize, um die besonderen Sinn für Ausgewogenheit dienstbar, während auditiven Haarzellen im Corti-Organ die primären Wandler für Hörgeräte sind ein transduzieren. Zellschicksals Spezifikation in diesen Sinnesepithelien und Morphogenese der Bogengänge und Hörschnecke finden während der zweiten Woche der Schwangerschaft in der Maus und sind weitgehend vor der Geburt 2,3 abgeschlossen. Entwicklungsstudien der Maus Innenohr werden routinemäßig von der Ernte transgenen Embryonen bei unterschiedlichen embryonalen oder postnatalen Stadien, um Einblick in die molekularen Grundlagen der zellulären und / oder morphologische Phänotypen gewinnen 4,5 durchgeführt. Wir vermuten, dass Gen-Transfer in die Entwicklungsländer Maus Innenohr in utero &lt;/ Em&gt; im Rahmen der Gewinn-und Verlust-of-function-Studien stellt einen kostenlosen Zugang zur traditionellen Maus-Transgenese für die Abfrage der genetischen Mechanismen, die Säugetier-Innenohr Entwicklung 6. Das experimentelle Paradigma zur Gen Fehlexpression Studien im sich entwickelnden Maus Innenohr führen demonstriert hier löst sich in drei Schritten: 1) ventrale Laparotomie; 2) transuterine Mikroinjektion, und 3) in vivo Elektroporation. Ventralen Laparotomie ist eine Maus Überleben chirurgische Technik, die Externalisierung der Gebärmutter ermöglicht, experimentelle Zugang zu den implantierten Embryonen 7 zu gewinnen. Transuterine Mikroinjektion ist die Verwendung von abgeschrägten, Glaskapillare Mikropipetten Expressionsplasmid in das Lumen des Ohr-Vesikel oder otocyst einzuführen. In-vivo-Elektroporation die Anwendung von Rechteckwellen, direkte Stromimpulse an Expressionsplasmid in Vorläuferzellen 8-10 anzutreiben. 11. Maus experimentellen embryologischen Techniken kann schwierig sein, von Prosa zu lernen und Standbilder allein. In der vorliegenden Arbeit zeigen wir, die 3 Schritte in der Gen-Transfer Verfahren. Die meisten kritisch, setzen wir digitale Video-Mikroskopie genau zeigen, wie man: 1) zu identifizieren Embryo Orientierung in utero, 2) neu zu orientieren Embryonen für die gezielte Injektionen an den otocyst; 3) microinject DNA mit Tracer-Farbstoff-Lösung in die otocyst gemischt an embryonalen Tag 11,5 und 12,5; 4) elektroporieren des eingespritzten otocyst und 5) Label elektroporiert Embryonen für postnatale Auswahl bei der Geburt. Wir bieten repräsentative Beispiele von erfolgreich transfizierten Innenohr; eine bildliche Anleitung zu den häufigsten Ursachen von otocyst Misstargeting; diskutieren, wie man gemeinsame methodische Fehler zu vermeiden; und Gegenwart Leitlinien für ein Schreiben in utero gEn-Transfer-Protokoll Tierpflege.

Die Maus ist eine Innenohr-derived Plakode Sinnesorgan, dessen Entwicklungs-Programm wird während der Schwangerschaft erarbeitet. Wir definieren ein<em&gt; In der Gebärmutter</em&gt; Gentransfer-Technik, bestehend aus drei Schritten: Maus ventralen Laparotomie, transuterine Mikroinjektion, und<em&gt; In-vivo-</em&gt; Elektroporation. Wir nutzen digitale Video-Mikroskopie, um die kritischen experimentellen embryologischen Techniken zu demonstrieren.

Gentransfer an sich entwickelnden Maus Innenohr<em&gt; In Vivo</em&gt; Die Elektroporation

Das Innenohr von Säugetieren besitzt sechs verschiedene sensorische Epithelien: drei Cristae in den Ampullen der Bogengänge; Maculae im Utriculus und Sacculus sowie ...

Jane wechselte zum Entwicklungsmodell des Innenohrs der Maus mittels In-vivo-Elektroporation von Ling Wang, Han Jang und John Burgandy, Oregon Hearing Research Center, Oregon Health and Science University. Okay. Mein Name ist John Burgandy. Mein Labor befindet sich am Oregon Hearing Research Center der Oregon Health and Science University.Mein Name ist Ang. Ich bin ein Poster in Johns Labor. Ich bin auch Ang in Johns Labor als wissenschaftliche Hilfskraft.Unsere Darstellung gliedert sich in vier Teile. Der erste ist die ventrale Laparotomie. Wir zeigen die Natriumpentobarbital-basierte Anästhesie, wie die Angemessenheit der Anästhesie überprüft wird, den Hornhautschutz, die Vorbereitung des Operationsgebiets, das Desinfektionsprotokoll für die Überlebenschirurgie an Mäusen, den chirurgischen Bereich, den ventralen medianen Hautschnitt und den Schnitt durch die Bauchwand sowie die Externierung der Uterushörner.Teil zwei ist die transuterine Mikroinjektion. Wir demonstrieren die Durchlichtbeleuchtung des Embryos, die Umorientierung des Embryos, die Mikroinjektion, die Herstellung von Pipetten und die Mikroinjektion in den Otis am embryonalen Tag 11,5 und am embryonalen Tag 12,5. Teil

gene-transfer-to-developing-mouse-inner-ear-vivo

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

In Utero intraventrikuläre Injektion und Elektroporation von E15 muriner Embryonen

Eine Methode, um Morpholinos direkt liefern in der Zebrafisch otocyst bei 24hpf entwickelt worden. Mit Mikroinjektion von Morpholinos in das Lumen des otic Vesikel und Elektroporation, um das Eindringen Effekt, konnten wir die Wirkung von Morpholinos auf das Gehirn zu umgehen und erhalten Wirkungen, die spezifisch an das Innenohr.

Direkte Lieferung von MIF Morpholinos Into the Zebrafisch Otocyst durch Injektion und Elektroporation Beeinflusst Inner Ear Entwicklung

Die Transfektion von Maus retinalen Ganglienzellen durch In vivo Elektroporation

Eine Methode für die Einbeziehung von Plasmid-DNA in murinen Zellen der Netzhaut zum Zwecke der Durchführung entweder gewinnen oder Verlust der Funktion...

In-vivo-Elektroporation von Entwicklung Maus Retina

Ein Gentransfer-Methode in den Entwicklungsländern Gehirn der Maus ist mit einer einzigartigen chirurgischen Verfahren und spezielle Form der Elektroden beschrieben. Diese einzigartige Technik erlaubt die Transfektion von Plasmid-DNA zeitlich und räumlich, was viele Neurowissenschaftler in das Studium der Entwicklung des Gehirns wird die Beihilfe.

Maus in Utero Elektroporation: Kontrollierte Spatiotemporal Gene Transefection

Quelle: Denaxa, M., el al., Transplantation of Chemogenetically Engineered Cortical Interneuron Progenitors into Early Postnatal Mouse Brains. J. Vis. Exp. (2019)Dieses Video zeigt das Verfahren zur Injektion eines Plasmidvektors, der das interessierende Gen trägt, in Interneuron-Vorläuferzellen in einem embryonalen Hirnschnitt, gefolgt von einer Elektroporation für den Plasmideintritt und die Genexpression. Diese modifizierten Vorläuferzellen können später zur Behandlung von Hirnerkrankungen...

Agarose-eingebetteter Elektroporations-unterstützter Gentransfer in kortikalen Interneuronen-Vorläuferzellen der Maus

Wir stellen eine Methode vor, die die Isolierung und Kultur von Cochlea-Explantaten aus embryonalen Maus-Innenohren beschreibt.  Wir demonstrieren auch eine Methode für den Gentransfer in Cochlea-Explantate mittels Rechteck-Elektroporation. Die In-vitro-Explantatkultur in Verbindung mit der Gentransfertechnik ermöglicht es den Forschern, die Auswirkungen einer Veränderung der Genexpression während der Entwicklung zu untersuchen.

Kultur von embryonalen Maus Cochlear Explantate und Gentransfer durch Elektroporation

Das Hörorgan vermittelt das Hören. Hier stellen wir eine modifizierte In-Ovo-Mikroelektroporationsmethode vor, die für die Untersuchung der Proliferation und Differenzierung von Vorläuferzellen im sich entwickelnden Hühner-Hörorgan optimiert ist.

Gentransfer in das Huhn Hörorgan von<em&gt; In Ovo</em&gt; Micro-Elektroporation

In dieser Studie beschreiben wir den hinteren Semicircular Kanal-Ansatz als eine zuverlässige Methode für Innenohr-gen Lieferung bei neugeborenen Mäusen. Wir zeigen, dass gen-Lieferung durch den hinteren Semicircular Kanal in der Lage, das gesamte Innenohr durchspülen.

Posterior Semicircular Canal Ansatz für Innenohr-gen Lieferung in Neugeborenen Maus

Hier beschreiben wir Canalostomy Verfahren die lokale Medikamentenabgabe in das innere Ohr von Erwachsenen und Neugeborenen Mäusen durch den Semicircular Kanal mit minimalschaden Hör- und vestibulären Funktion ermöglicht. Diese Methode kann verwendet werden, virale Vektoren, Pharma und kleine Moleküle in das Innenohr Maus impfen.

Canalostomy als ein chirurgisches Vorgehen zu Local Drug Delivery in das innere Ohr von Erwachsenen und Neugeborenen Mäusen

Das Küken ist ein kostengünstiger, zugänglicher und weit verbreiteter Modellorganismus für eine Vielzahl von Studien. Hier wird eine Reihe von Protokollen detailliert beschrieben, um die molekularen Mechanismen zu verstehen, die der Entwicklung und Regeneration des Vogelinnenohrs zugrunde liegen.

In Ovo und Ex Ovo Methoden zur Untersuchung der Entwicklung des Vogelinnenohrs

Lernen Sie Gentransfer im sich entwickelnden Maus-Innenohr mittels in utero Elektroporation. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Genfunktionen während der Hörorganentwicklung.

Gentransfer an sich entwickelnden Maus Innenohr

Weitere Videos entdecken