Name: Intraduktale Injektion von LPS als Maus-Modell der Mastitis: Signaling Visualisierte über einen NF-kappaB Reporter Transgene (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: Lernen Sie die intraduktale LPS-Injektion zur Modellierung von Mastitis bei laktierenden Mäusen. Diese Methode ermöglicht die Visualisierung und Quantifizierung der NF-κB-Aktivität mittels Biolumineszenz-Bildgebung.

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Diese Arbeit wurde vom NIH CA113734 verliehen F Yull und dem Department of Veterans Affairs (TS Blackwell) finanziert.

Alle Tierversuche wurden von der Vanderbilt University Institutional Animal Care und Use Committee genehmigt. Ein. Herstellung transgener Mäuse <ol><li> Weibliche Mäuse, positiv für die NGL (N F-KB-G FP-L uciferase) Reporter-Transgen (zuvor beschriebene 1) sind für dieses Verfahren verwendet. Wenn Weibchen mindestens 6 Wochen alt sind, paaren sie mit einem FVB Wildtyp männlich. Harem Zucht verwendet werden (bis zu 4 Weibchen in einem Käfig mit 1 Mann) werden. (Achtung: FVB Stamm-Mäuse wurden für die vorliegende Studie verwendet Dunkler Stamm-Mäuse wie C57Bl6 können ebenfalls verwendet werden, aber diese Mäuse müssen vor der Bebilderung rasiert werden.). </li><li> Ab 15 Tage post-Paarung, überprüfen Sie die Weibchen regelmäßig auf Anzeichen einer Schwangerschaft (große, hervorstehende Umfang). Jede Frau muss getrennt einmal schwanger werden und das Männchen aus der Zucht Käfig entfernt werden, sobald das letzte Weibchen schwanger wird. </li><li> Sehen Sie sich die getrennten Weibchen eind beachten Sie das Datum der Geburt, wenn ein Wurf erscheint. Ein Wurf von mindestens 6 Welpen ist für eine angemessene Stillzeit erforderlich. Acht Tage nach der Geburt des Wurfes, mit dem Protokoll (siehe Abbildung 1 für eine Zeitachse schematisch) fortzufahren. </li></ol> 2. Vorbereitung zur Injektion <ol><li> Lösen Sie die E. coli LPS in PBS auf eine Endkonzentration von 0,1 ug / ul. 50 ul dieser Lösung oder insgesamt 5 ug, wird in die Brustdrüse injiziert werden. Vorbereiten einer zweiten Röhre von PBS allein für die Steuerung Injektion verwendet werden. </li><li> Set-up ein Binokular und Isofluran Anästhesiegeräten. Ein Nasenkegel Vorrichtung sollte der Stufe des Binokular wo die Maus gestellt werden gesichert werden. Eine gute Lichtquelle sollte, ob aus dem Anwendungsbereich selbst oder von zusätzlichen Scheinwerfern ebenfalls hergestellt werden. </li><li> Sobald das Set-up abgeschlossen ist, starten Sie die Isofluran-Maschine und Luftströmung. </li></ol> 3. Intraduktalen Injektion von LPS <ol><li> Legen Sie die kurze Nadel Spritze mit 50 ul der LPS-Lösung. Setzen Sie diese beiseite. </li><li> Anesthetize der Maus, indem zuerst die Weibchen in einer Isofluran gefüllten Kasten und dann noch einmal Atmung verlangsamt injiziert werden, verschieben sie auf die Bühne und platzieren ihre Nase in der Nase-Membran. Verwenden Sie einen Zeh Prise zu bestätigen, dass die Maus ist vollständig betäubt. Überwachen der Maus die Atmung während des gesamten Verfahrens und stellen Sie die Isofluran entsprechend an. Der Käfig mit dem Wurf von Welpen, dass die Weibchen aus getroffen wurde sorgfältig eingestellt werden beiseite, bis der Damm nach der Prozedur zurückgegeben werden können. </li><li> Verwenden Sie einen kleinen Tropfen von 70% Ethanol, um das Fell flach und zu visualisieren die Brustwarze an der rechten # 4 inguinal Milchdrüse auf die Maus Unterbauch. </li><li> Fokussieren Sie das Sezieren Spielraum für eine optimale Sicht auf die Brustwarze. Vorsichtig verwenden eine Reihe von feinen Pinzette weiter ziehen die Brustwarze von der Haut weg, aber nicht gewaltsam öffnen oder zu verletzen die Brustwarze in keiner Weise. DieZange sollte niemals straff gespannt werden gemeinsam beim Manipulieren des Gewebes, sondern verwendet einen leichten Halt, die die minimale Menge von Stress erfordert auf der Brustwarze. </li><li> Verwenden Sie die Zange in der linken Hand sanft halten die Brustwarze in Kraft. Langsam bringen die vorinstallierte Spritze in das Sichtfeld mit der rechten Hand. Die Spritze ist so gehalten, daß keine Neupositionierung zu treten, um den Inhalt zu injizieren aufweist. </li><li> Sobald die Spritze ist in Sicht, sorgfältig zielen auf die kleinen duktalen Öffnung im Zentrum der Brustwarze, und legen Sie die Spritze. </li><li> Ohne Neupositionierung der Hand, spritzen den Inhalt der Spritze und entfernen Sie die Nadel aus der Brustwarze. </li><li> Legen Sie eine zweite Spritze mit 50 ul PBS zur Kontrolle Injektion. Positionieren Sie die Maus auf der Bühne und für die beste Ansicht der linken # 4 inguinal Brustdrüse Nippel auf der anderen Seite der Maus Unterbauch. Wiederholen Sie die Schritte von 3,4 bis 3,7 mit der PBS-geladenen Spritze. </li><li> Sobald beide Injektionen sind komplete, einzustellen Anästhesie und bewegen Sie die Maus auf eine Erholung Käfig. Überwachen Sie den weiblichen um sicherzustellen, dass sie mobilen innerhalb von 5 min wird. Lassen Sie die Maus, um bei der Verwertung Käfig für 1 Stunde bleiben. Nach 1 Stunde der Erholung, legen Sie die Frauen zurück in den Käfig mit ihrem Wurf von Welpen. Mäuse sollten in regelmäßigen Abständen für 6 Stunden nach der Injektion überwacht werden, bevor die Bildgebung. In unserer Erfahrung, wurden keine nachteiligen Folgen in beiden die weibliche oder die Welpen in der Zeit zwischen Injektion und Bildgebung festgestellt. Allerdings, wenn Anzeichen von Leiden in der weiblichen eingehalten werden (z. B. gekrümmte Haltung, Beißen oder Bewachung der Injektionsstelle, allgemeine Lethargie) oder den Welpen (keine Bewegung, bläuliche Farbe der Haut) sollte das Experiment abgebrochen werden. </li></ol> 4. Bioluminescent Imaging zu visualisieren NF-kappaB Aktivität <ol><li> Sobald Mäusen haben die Bildgebung Anlage transportiert wurde, beginnen die bildgebenden Verfahren, indem Sie die Software und die Initialisierung der Maschine. Schalten Sie den istoflurane Maschine und Luftstrom, so dass die Narkose wird sowohl an der Box und der Abbildungskammer fließt. </li><li> Legen Sie die Maus unter Isofluran-Narkose in der klaren Anästhesie-Box. Sobald Atmung verlangsamt hat, verwenden Sie einen Zeh Prise zu bestätigen, dass die Maus ist vollständig betäubt. Dann injizieren 100 ul Luciferinsubstrat in der Maus durch retro-orbitale Einspritzung 5 mit einer sterilen Spritze. </li><li> Sofortüberweisung die Maus an die Bildgebung Kammer und legen ihre Nase unter der Isofluran Nasenkegel dort angesiedelt. Die Maus sollte in Rückenlage. Sichern Sie jeden Fuß auf die Bühne mit Klebeband. </li><li> Eingang die entsprechenden Einstellungen der Software, um sowohl IVIS ein weißes Licht fotografischen Bild und ein Bild der biolumineszenten Aktivität. Die Belichtungszeit sollte 10 sec sein. Erwerben Sie das Bild. </li><li> Nachdem die Bilder erworben wurden, ermöglichen die Maus zu erholen und dann legen Sie sie zurück in den Käfig mit ihren Welpen und überwachen regelmäßig. </li><li> Die fotografische und lumineszierendeBilder werden automatisch überlagert und angezeigt auf dem Bildschirm, wie in 2. Analysieren der erfassten Bilder, indem Region von Interesse oder &quot;ROI&quot; Kreisen gleicher Größe über jede Seite der Mäuse Unterleib (eine über das PBS-injiziert Drüse und eine über der LPS-Injektion Drüse). Stellen Sie das Auslesen Photonen. Eine Reihe sollte angezeigt, die den Lumineszenz innerhalb jeder ROI nachgewiesen (siehe Abbildung 2B). Verwenden Sie diese Nummer in der statistischen Analyse. </li><li> Um die optimale Bild anzuzeigen, weiter anpassen die Schwelle von Signal angezeigt. Dies ändert nicht die gesamte Lumineszenz Auslesen, sondern ermöglicht es Ihnen, Hintergrund-Signal zu entfernen und zu visualisieren die Unterschiede zwischen der Kontroll-und LPS-behandelten Drüse. Verringern der Menge der Lumineszenz angezeigt, bis der PBS-injiziert Drüse frei von Hintergrund-Signal ist. Dies sollte nun die erhöhte Signal in der LPS-behandelten Verschraubung noch erkennbar in dem Bild, wie in 2 gesehen. </li><li> Additional Analyse, einschließlich Protein-und RNA-Assays, mit Brustgewebe aus dem weiblichen post-mortem 6 gesammelt abgeschlossen sein. </li></ol> 5. Repräsentative Ergebnisse Auf interpretierbare Ergebnisse dieser Methoden erhalten, muss LPS (oder PBS) nur in die Milchgänge infundiert werden, so dass das angrenzende Gewebe ungestört. Injektion in das subkutane Gewebe um die Brustwarze wird bei Entzündungen aufgrund einer Verletzung statt der simulierten Infektion führen. Injektion von Trypanblau-Farbstoff in PBS verdünnt ist hilfreich, wenn das Erlernen der Technik. 3A zeigt einen erfolgreich injiziert Verschraubung mit 100 ul Trypanblau in PBS infundiert. Wie gezeigt, sollte nur der duktalen Baum mit der injizierten Lösung gefüllt werden, und es sollte keine Bolus sein an der Injektionsstelle. A &quot;Bolus&quot; in diesem Zusammenhang ist ein Aufbau der injizierten Flüssigkeit an der Brustwarze oder in dem Gewebe um die Brustwarze ohne Infusion in den duktalen Baum. Dies ist sheigenen in 3B. Bitte beachten Sie, dass die Praxis Injektionen in 3 gezeigt in einem weiblichen wurden am Tag 21 der Laktation abgeschlossen. Auf dem Höhepunkt der Stillzeit (Tag 8-10, in welchem ​​Stadium LPS injiziert unter Verwendung der aktuellen Protokoll) ist Milch reichlich vorhanden und es ist schwierig, die Kanäle zu visualisieren und zu bestimmen, ob die Injektion korrekt beendet wurde. Daher sind späteren Zeitpunkten in der Laktation besser für die Praxis Injektionen. Erfolgreiche Injektion von LPS in die Milchgänge führt zu einer erhöhten NF-kappaB Aktivität innerhalb der Drüse. Dies sollte in der Reportersonde Maus auf IVIS Bildgebung ersichtlich, und der LPS-Injektion Drüse sollte wesentlich höhere Luciferaseaktivität (gemessen durch Photonenzählung) als der PBS-injizierten Drüse haben, wie in 2 gezeigt (im Durchschnitt, liest der LPS Drüse 200% des PBS-Steuerungs-Signal). Ein statistisch signifikanter Anstieg der Lumineszenz innerhalb der LPS-behandelten Drüsen Layoutared zur kontralateralen Kontrolle wurde zwar der Fertigstellung einer Gruppe von 4 Mäusen 4 erreicht. Eine weitere Studie hat auch intraduktalen Mamma Injektion von E. genutzt coli oder LPS in NF-kappaB-Reporter transgenics. Ähnlich wie bei unserer eigenen Arbeit, sah diese Autoren eine signifikante Erhöhung der Reporter-Aktivität 6 Stunden nach E. coli-Injektion 2. Bitte beachten Sie, aufgrund konstitutive NF-KB-Aktivität im Gehirn und anderen abdominellen Organen, die Köpfe und Bäuche unserer Reportermäuse zeigen durchwegs ein Signal, wenn abgebildet, auch an der Basislinie vor jeglicher Manipulation. Somit sollte dieses Signal im Hinblick auf diesem Experiment ignoriert. Eine offensichtliche Signal sollte innerhalb der LPS-Injektion Brustdrüse, nachdem das Bild ausgelesen wird eingestellt, um Hintergrundlumineszenz im PBS Drüse minimieren bleiben. 2 zeigt Bilder mit der Hintergrund vermindert. Erfolglose Injektion der Drüse wirdhöchstwahrscheinlich zu Schäden an der Brustwarze. Dies führt dazu, spitz, Haut-Level-Entzündung, die offensichtlich sein wird bei der Bildgebung. Diese Art der Verwundung Signal wird sehr stark sein und beschränkt sich auf die Brustwarze, wo der Schaden eingetreten ist, nicht ausgehen in der Drüse, als nach einem erfolgreichen LPS-Injektion in die Kanäle zu sehen. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/4030/4030fig1.jpg" /> Abbildung 1. Schematische Darstellung der Vorgehensweise. <img alt="Abbildung 2" src="/files/ftp_upload/4030/4030fig2.jpg" /> Abbildung 2. Repräsentative Ergebnisse aus IVIS biolumineszierenden Bildgebung. (A) aufgenommenen Bildes mit Hintergrund verringert und enthüllt erhöhte Luciferaseaktivität in der LPS-injizierten Drüse. (B) Bild von A mit region of interest Quantifizierungen hinzugefügt. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4030/4030fig2large.jpg" target="_blank">Klicken Sie hier für eine größere Abbildung zu sehen</a> . <img alt = &quot;Abbildung 3&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/4030/4030fig3.jpg&quot; /&gt; Abbildung 3 Praxis Injektion:.. Brustdrüse mit Farbstoff über intraduktalen eingespritzt Um die Genauigkeit der Zustellung über den Nippel zu testen, eine Maus am Tag 21 der Laktation wurde mit 100 ul Trypanblau-Farbstoff injiziert, verdünnt in PBS. Nach Opfers, wurde die Drüse zur Visualisierung ausgesetzt. (A) Injektion erfolgreich und (B) Farbstoff-Bolus an der Brustwarze.

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</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Hier eine transgene NF-KB-Reporter Maus und ein optimiertes Modell zu Injektionstechnik Mastitis nutzen, Entzündung des Brustgewebes am häufigsten durch bakterielle Infektion verursacht. Der wichtigste Schritt in diesem Verfahren ist die intraduktalen Injektion selbst. In der Praxis ist es in der Regel zeigen, ob der intraduktalen Injektion erfolgreich war. Die Injektion der Substanzen (LPS oder PBS) sollen sich Fluid und es sollte wenig bis keinen Widerstand als die Spritze geleert wird. Di...

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td><td> Kommentare </td></tr><tr><td> Lipopolysaccharid aus Escherichia coli (LPS) </td><td> Sigma </td><td> L 2880 </td><td> Serotyp 055: B5 </td></tr><tr><td> PBS </td><td> Mediatech, Inc. </td><td> 46-013-CM </td><td></td></tr><tr><td> 31 Gauge Insulinspritze </td><td> Becton Dickinson </td><td> 328438 </td><td> Kurze Nadel </td></tr><tr><td> Zange </td><td> World Precision Instruments </td><td> 15908 </td><td></td></tr><tr><td> Binokular </td><td> Leica </td><td> M3Z </td><td></td></tr><tr><td> Terrell Isofluran, USP </td><td> MINRAD Inc. für Rx Elite </td><td> NDC 66794-011-25 </td><td></td></tr><tr><td> IVIS 200 Imaging-System &lt;/ Td&gt; <td> Caliper (ehemals Xenogen) </td><td> N / A </td><td></td></tr><tr><td> Spritze zur Injektion Luciferin </td><td> Becton Dickinson </td><td> 309597 </td><td> 1cc; 26G5 / 8 </td></tr><tr><td> D-Luciferin Firefly, Natriumsalz Monohydrat (Luciferin-Substrat) </td><td> Biosynth Chemie und Biologie </td><td> L-8240 </td><td> Verdünnt auf 10 mg / ml </td></tr></tbody></table>

intraduktale injektion von lps als maus-modell der mastitis: signaling visualisierte über einen nf-kappab reporter transgene

Intraductal Injection of LPS as a Mouse Model of Mastitis: Signaling Visualized via an NF-&kappa;B Reporter Transgenic

Tiermodelle von Krankheiten sind, um konsequent zu studieren Stadien der Krankheitsprogression und die damit verbundenen Mechanismen, und schließlich, als prä-klinischen Modellen Interventionen zu testen notwendig. Bei diesen Verfahren beschreiben wir eine Technik, bei der Lipopolysaccharid (LPS) in der laktierenden Milchdrüse der Maus über den Nippel, effektiv Mastitis Modellierung oder Entzündung, der Drüse eingespritzt wird. Diese simulierte Infektion führt zu einer erhöhten nuclear factor kappa B (NF-kappaB) Signalisierung, wie visualisiert durch Biolumineszenz Bildgebung eines NF-kappaB Luciferase-Reporter Maus 1. Unser oberstes Ziel bei der Entwicklung dieser Methoden war, um die Entzündung mit Mastitis in der laktierenden Drüse, die oft auch Rötungen, Schwellungen und Immunzellen Infiltration 2,3 assoziiert zu studieren. Daher konnten wir sehr bewusst, dass Einschnitt oder jede Art von verwundeten der Haut, den Nippel oder die Drüse, um die LPS konnte einzuführennicht in unserem Verfahren verwendet werden, da der Ansatz eher verwirren würden die Ausleseschaltung von Entzündungen. Wir wollten eine straight-forward-Methode, die nicht verlangen, speziell angefertigten handgezeichneten Pipetten oder den Einsatz von Mikromanipulatoren diese spezielle Werkzeuge in Position zu halten. Somit haben wir festgestellt, einen handelsüblichen Insulin-Spritze zu verwenden und die Mittel in den Kanal mammary eines intakten Nippel injizieren. Diese Methode war erfolgreich und erlaubte uns, die Entzündung mit LPS-Injektion verbundenen ohne zusätzliche Effekte durch den Prozess der Injektion überlagert studieren. Zusätzlich hat dieses Verfahren auch eine NF-kappaB-Luciferase Reporter transgene Maus und biolumineszierende Bildgebungstechnologie verwendet werden, um visuell anzuzeigen und quantitativ erhöht NF-KB Signalisierung innerhalb des LPS-injizierten Verschraubung 4. Diese Methoden sind von Interesse für Wissenschaftler aus vielen Disziplinen, die wollen Modell Krankheit innerhalb der laktierenden Brustdrüse, wie letztlich die Technikhier beschriebenen könnten zur Injektion einer Reihe von Stoffen genutzt werden, und ist nicht nur auf LPS begrenzt.

Hier beschrieben ist ein Verfahren, bei dem Lipopolysaccharid in der laktierenden Milchdrüse der Maus über den Nippel, um Mastitis zu simulieren, ein Zustand, üblicherweise durch bakterielle Infektion verursacht wird injiziert. Lipopolysaccharide Injektion führt zu einer erhöhten nuclear factor kappa B (NF-kappaB) Signaltechnik, visualisiert durch Biolumineszenz Bildgebung eines NF-kappaB Luciferase-Reporter-Maus.

Intraduktale Injektion von LPS als Maus-Modell der Mastitis: Signaling Visualisierte über einen NF-kappaB Reporter Transgene

Tiermodelle für menschliche Erkrankungen sind notwendig, um die Stadien der Krankheitsprogression und die damit verbundenen Mechanismen präzise zu untersuchen und letztendlich als ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, Mastitis oder Entzündungen der Mammar drüse zu untersuchen und genauer gesagt die NF-Kary-Aktivität innerhalb einer entzündeten, laktierenden Drüse sichtbar zu machen und zu quantifizieren. Dies wird erreicht, indem zunächst ein weibliches NF-kappaB-Reporter-Transgen mit einem männlichen Wildtyp gekreuzt wird. Acht Tage nach der Geburt der Nachkommen wird Lipopolysaccharid mittels einer Injektionstechnik in die laktierende Drüse des Weibchens eingeführt, wodurch der Injektionsort sechs Stunden nach der Injektion nicht vollständig beschädigt wird.Der Maus wird eine biolumineszente Bildgebung durchgeführt, um die Luciferase-Aktivität in der Brustdrüse nachzuweisen. Letztendlich können die Ergebnisse eine signifikante NF-κB-Aktivität in den mit LPS behandelten Drüsen mittels der intraduktalen Injektionsmethode in Kombination mit biolumineszenter Bildgebung zeigen. Der Hauptvorteil unseres Ansatzes im Vergleich zu anderen Methoden der intraduktalen Injektion besteht darin, dass die Injektionsstelle in keiner Weise beschädigt wird.Dies ist äußerst wichtig, wenn Sie die mit der LPS-Injektion assoziierte Entzündung untersuchen möchten, da jeglicher Schaden an der Injektionsstelle oder an der Brustwarze diese Analyse überlagern und verfälschen würde. Für diesen Eingriff werden weibliche Mäuse verwendet, die positiv für das NGL-Reporter-Transgen sind. Ein. Die Weibchen sind mindestens sechs Wochen alt.Züchten Sie sie mit einem FVB-Wildtyp-Männchen durch Har und Zucht 15 Tage nach der Paarung. Beginnen Sie, die Weibchen regelmäßig auf Anzeichen einer Trächtigkeit zu überprüfen, insbesondere auf eine stark vergrößerte Körpermitte. Trennen Sie trächtige Weibchen in eigene Käfige ab, und sobald das letzte Weibchen trächtig ist, entfernen Sie das Männchen aus dem Zuchtkäfig.Ein Wurf mit mindestens sechs Welpen ist für eine ausreichende Laktation erforderlich. Acht Tage nach der Geburt eines solchen Wurfes. Setzen Sie das Protokoll fort.Der anspruchsvollste Teil des Verfahrens ist die eigentliche Einleitungsinjektion. Sichere Hände und viel Übung sind hilfreich, doch können immer Probleme auftreten. Halten Sie am Tag der Injektion mehrere Mäuse bereit, um den Erfolg sicherzustellen.Vermischen Sie zunächst lipopolysaccharid, das aus E. coli stammt, mit PBS, um eine Endkonzentration von 0,1 Mikrogramm pro Mikroliter zu erhalten. In die Brustdrüse werden 50 Mikroliter dieser LPS-Lösung injiziert. Bereiten Sie eine zweite Röhrchen mit reinem PBS vor, das als Kontrollinjektion verwendet wird.Neben dem Objekttisch des Auflichtmikroskops befestigen Sie eine Nasenkonusvorrichtung zur Anästhesiegabe. Stellen Sie bei Bedarf mit zusätzlichen Scheinwerfern eine helle Beleuchtung des Objekttischs bereit.Sobald die Präparationsanordnung bereit ist, starten Sie die Isoflurananlage und die Luftzufuhr. Befüllen Sie danach eine 31-Gauge-Insulinspritze mit 50 Mikrolitern der LPS-Lösung und legen Sie die Spritze beiseite, um Injektionen zu üben. Verwenden Sie Triamblaufarbstoff, der in PBS verdünnt ist, um die Ergebnisse sichtbar zu machen.Anästhesieren Sie anschließend die Maus, die injiziert werden soll, sobald ihre Atmung verlangsamt hat. Legen Sie sie auf den Halter und führen Sie über die Nasenkappe Iso-Fluoran zu. Verwenden Sie eine Zwickprobe, um die vollständige Anästhesie während des gesamten Verfahrens zu bestätigen.Überwachen Sie das Atemmuster der Maus. Passen Sie kontinuierlich die Isofluran-Konzentration an, um eine stabile Atmung aufrechtzuerhalten. Verwenden Sie einen kleinen Tropfen 70%igen Ethanol, um das Fell am ventralen Bauchbereich des Tieres zu glätten, und lokalisieren Sie die Brustwarzen.Suchen Sie mit einer feinen Pinzette in der nicht-dominanten Hand die Brustwarze der rechten vierten inguinalen Brustdrüse am Unterbauch. Ziehen Sie die Brustwarze vorsichtig von der Haut weg. Die Pinzette sollte niemals fest zugeklemmt werden.Es sollte nur ein leichter Halt am Nippel in der dominanten Hand ausgeübt werden. Bringen Sie die vorgefüllte Spritze in das Sichtfeld und halten Sie sie so, dass keine Nachjustierung erforderlich ist, um ihren Inhalt zu injizieren. Zielen Sie vorsichtig mit der Nadel auf die kleine, ductile Öffnung in der Mitte des Nippels.Führen Sie ungefähr ein Viertel der Nadel in den Ausführungsgang ein, ohne die Position zu verändern. Injizieren Sie den Inhalt der Spritze über einen Zeitraum von drei bis fünf Sekunden. Ziehen Sie die Nadel anschließend vorsichtig aus der Brustwarze heraus.Laden Sie eine zweite Spritze mit 50 Mikrofreisetzungen von PBS und wiederholen Sie das Verfahren links am vierten inguinalen Mamillenfortsatz. Verwenden Sie dabei die PBS-Kontrolle. Sobald beide Injektionen abgeschlossen sind, beenden Sie die Anästhesie und bringen die Maus in einen Erholungskäfig.Das Weibchen sollte sich innerhalb von fünf Minuten bewegen. Nach einer Stunde sollte es in den Heimkäfig mit seinen Puffs zurückgebracht werden. Die Maus sollte sechs Stunden nach der Injektion abgebildet werden.Währenddessen die Maus überwachen, falls Anzeichen von Belastung beobachtet werden. Das Experiment abbrechen und die Mäuse in der Bildgebungseinrichtung euthanisieren. Vorbereiten, um das Weibchen mit Isofluran zu anästhesieren.Stellen Sie sicher, dass die Anästhesie sowohl zur Box als auch zur Bildgebungskammer fließt. Legen Sie die Maus unter Isofluran-Anästhesie in die durchsichtige Anästhesiebox. Sobald die Atmung verlangsamt ist, verwenden Sie einen Pinzettengriff, um zu bestätigen, dass die Maus vollständig anästhesiert ist.Injizieren Sie anschließend retroorbital 100 Mikroliter Lucifer-Substrat über eine 26-Gauge-Nadel. Überführen Sie die Maus unmittelbar nach der Injektion in die Bildgebungskammer und befestigen Sie die Nasenkappe, die Isofluran liefert. Platzieren Sie die Maus in Rückenlage und sichern Sie jedes Bein mit schwarzer opaker Tape auf dem Objektträger. Geben Sie die entsprechenden Einstellungen in der IVIS-Software ein, um sowohl ein photographisches Bild im Weißlicht als auch ein Bild der Biolumineszenzaktivität aufzunehmen. Die Belichtungszeit sollte 10 Sekunden betragen, sobald die Bilder aufgenommen wurden. Wenden Sie denselben Wiederherstellungsprotokoll an, wie es für die Zeit nach der Injektion beschrieben wurde.Die fotografischen und lumineszenten Bilder werden automatisch überlagert und auf dem Bildschirm angezeigt. Analysieren Sie die aufgenommenen Bilder, indem Sie kreisförmige Regionen von Interesse (ROI) gleicher Größe über jede Seite des unteren Bauchbereichs der Maus platzieren – eine über der mit PBS injizierten Drüse und eine über der mit LPS injizierten Drüse.Stellen Sie die Anzeige auf Photonen ein. Es sollte eine Zahl angezeigt werden, die die Lumineszenz angibt, die in jeder ROI detektiert wurde. Verwenden Sie diese Zahl in der statistischen Analyse, um das optimale Bild darzustellen. Passen Sie außerdem die Schwelle des angezeigten Signals weiter an.Dies verändert die Gesamtlumineszenz nicht, ermöglicht jedoch die Entfernung des Hintergrundsignals, wenn die PBS-injizierte Drüse frei von Hintergrundsignal ist. Das erhöhte Signal in der mit LPS behandelten Drüse sollte auf dem Bild deutlich sichtbar sein. Injektionen wurden am 21. Tag der Laktation durchgeführt, zu einem Zeitpunkt mit geringerer Milchproduktion, sodass der Erfolg einer Injektion leicht durch Triangulablau-Färbung sichtbar gemacht werden kann. Bei erfolgreich injizierten Milchdrüsen wurde ausschließlich der ductale Baum mit Lösung gefüllt; bei einer erfolglosen Injektion kam es zu einer Ansammlung von Flüssigkeit an der Brustwarze oder im umgebenden Gewebe.Eine erfolgreiche Injektion von LPS in die Milchgänge am achten Tag führte zu einer erhöhten NF κB-Aktivität in der Drüse aufgrund konstitutiver NF κB-Aktivität im Gehirn und anderen Bauchorganen. Es bestand ein konstanter Grundsignalwert vor jeder Manipulation. Die Luciferase-Aktivität war in der mit LPS behandelten Drüse im Vergleich zur mit PBS behandelten Drüse bei einer Gruppe von vier Mäusen deutlich höher. Ein statistisch signifikanter Anstieg der Lumineszenz in den mit LPS behandelten Drüsen wurde gemessen. Diese Methode kann Einblicke in die Entzündung der Brustdrüse liefern. Sie kann außerdem auf andere Forschungsbereiche wie die Krebsforschung angewendet werden.Sie können Krebszellen oder Karzinogene direkt in den Milchgang injizieren.

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Medizin

Quelle: Radulovic, K., et al. Injektionen von Lipopolysaccharid in Mäuse, um das Eindringen mikrobieller Produkte nach dem Durchbruch der Darmbarriere nachzuahmen. J. Vis. Exp. (2018)Dieses Video demonstriert ein Schritt-für-Schritt-Verfahren zur intraperitonealen Injektion von Lipopolysaccharid (LPS) in Mäuse, um systemische Entzündungen zu induzieren.

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