Name: Schnelle und effiziente Erzeugung von Neuronen aus menschlichen pluripotenten Stammzellen in einem Multititre Platte Format (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-05T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 27 s
Description: Erfahren Sie eine schnelle Methode zur Differenzierung menschlicher pluripotenter Stammzellen in Neuronen im Multititer-Plattenformat. Dieses Protokoll ermöglicht kontrollierte, effiziente Neuronengenerierung für die Neurowissenschaft.

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Diese Arbeit wurde von der Max-Planck-Gesellschaft finanziert.

Ein. Vorbereitung der Matrigel-beschichteten Platten und Medien <ol><li> Herstellung von Matrigel-beschichteten Platten Matrigel wurde gefunden, ein bevorzugtes Substrat für die Befestigung von differenzierenden EBs sein und fördert auch die effiziente Auswachsen von Neuronen aus diesen 10. <ol><li> Thaw 10 ml Matrigel über Nacht auf Eis. </li><li> Am nächsten Tag, verdünnen das geleeartige Matrigel mit zwei Volumina eiskaltem DMEM/F-12 und bereiten Aliquots von 1 ml in vorgekühlte 15 ml konischen Röhrchen, die bei -20 ° C werden </li><li> Entscheiden Sie auf einem Teller-Format für die neuronale Differenzierung. Zum Beispiel, als Ausgangspunkt, empfehlen wir eine erste Runde der Differenzierung in einer 12-Well-Format durchzuführen. Pre-cool vier 12-Well-Platten bei 4 ° C. Lösen Sie ein Aliquot der gefrorenen Matrigel durch Zugabe von 9 ml vorgekühlte DMEM/F-12 durch Auf-und Abpipettieren, bis alle vorverdünnte Matrigel wurde aufgetaut und gelöst, gefolgt. </li><li> Dann, Übertragen Sie den Inhalt in ein neues 50-ml-Tube mit 15 ml DMEM/F-12 auf Eis (final Matrigel Verdünnung: 1:75). Dann fügen Sie 0,5 ml verdünntem Matrigel in jede Vertiefung der vorgekühlten 12-Well-Platten. Wickeln Platten mit Parafilm und stehen lassen über Nacht bei RT. </li><li> Am nächsten Tag übertragen Platten auf 4 ° C. Beschichteten Platten können für mehrere Wochen vor der Verwendung gelagert werden. </li></ol></li><li> Medien </li></ol> EB Bildung Medium (~ 15 ml benötigt, um die Differenzierung in einem 96-Well-Platte durchzuführen - siehe Tabelle 1 und Schema in Abbildung 2): DMEM/F-12 mit 0,4% (PVA) 1x N2 1x B27 0,05% BSA 20 ng / ml FGF2 10 uM Y-27632 1x PenStrepGln Differenzierungsmedium (~ 30 ml benötigt, um die Differenzierung in einer 96-Well-Platte durchzuführen, gefolgt von Neuron-Bildung in einem Matrigel-beschichteten 12-Well-Platte, siehe Tabelle 1): DMEM/F-12 1x N2 <br/&gt; 1x B27 0,05% BSA 0,5 uM PD0325901 15 uM SB431542 0,5 uM Dorsomorphin 1x PenStrepGln 2. Erzwungene EB Formation <ol><li> Wachsen hPSCs unter Ihrem bevorzugten Feeder-freien Bedingungen. Wir verwenden MEF-konditioniertes Medium auf Matrigel-beschichteten 6-Loch-Platten 15. Allerdings sollten andere Kultur Systemen wie selbstgemacht oder kommerziell definierten Medien auch funktionieren. Zum Zeitpunkt des Startens eines Differenzierung Experiment sollte hPSCs sein subkonfluente und aktiv wachsen. </li><li> Mechanisch entfernen spontan differenziert Kolonien mit einer sterilen Kunststoff-Pipettenspitze unter einem Stereomikroskop. </li><li> Waschen verbleibenden undifferenzierte Kolonien mit PBS, und verdauen, um einzelne Zellen mit Accutase mit 1X Y-27632. Pellet einzelnen Zellen durch Zentrifugation bei 200 × g für 2 Minuten, in einem kleinen Volumen von EB Bildung Medium und bestimmen Zelltiter unter Verwendung eines Hämozytometers resuspendieren. </li><li> Fügen Sie ein Aliquot von Zellendie restlichen EB Bildung Medium in einem Titer zwischen 40.000 und 80.000 Zellen pro ml führen. </li><li> Mit einer Mehrkanalpipette, dann 100 ul pro Well einer 96V-Bodenplatte, was 4.000 bis 8.000 Zellen pro Vertiefung. Spin 96-Well-Platte in einem Swing-out Platte Zentrifuge bei 400 xg für 1 min zu sammeln Zellen am Boden der Wells und Transfer zum Zellkulturbrutschrank. EBs über Nacht bilden, wie in Abbildung 1 dargestellt. </li></ol> 3. Neuroektoderms Induction <ol><li> Am nächsten Tag (Tag 0), sammeln EBs aus 96V Platte unter einem Stereomikroskop und Transfer in einem kleinen Volumen in einen 3,5 cm bakterielle Schale mit 2 ml Differenzierungsmedium. Vorsichtig geschwenkt, das Gericht für einige Sekunden, um die EBs waschen. </li><li> Fügen Sie 100 ul der Differenzierung Medium pro Vertiefung einer ultra-low-Anlage U-96-Well-Platte. Unter einem Stereomikroskop, Transfer EBs in kleinen Mengen aus dem Abspülen in die 96U-Brunnen (ein EB pro wirll). Ort 96U Platte in Zellkulturbrutschrank für 4 Tage Neuroektoderms Bildung zu ermöglichen. </li></ol> 4. Neuron Formation <ol><li> Am Tag 4, bereiten ein Abspülen wie in Schritt 3,1 und zusätzlich ersetzen DMEM/F-12 in einer vorgewärmten Matrigel-beschichteten 12-Well-Platte durch Differenzierung Medium (1 ml pro Vertiefung). </li><li> Plating von EBs <ol><li> Collect EBs aus 96U Platte, wäscht diesen wie oben, und sorgfältig Saatgut sie nacheinander in die Vertiefungen der Matrigel-beschichteten 12-Well-Platte (ungefähr 8 EBs pro Well): EBs gleichermaßen sollte innerhalb der Vertiefungen zu verteilen, damit ungestörte Auswuchs ermöglichen Neuronen in den nächsten Tagen (siehe &quot;Tag 5&quot; in Abbildung 2). </li><li> Vor der Übertragung der 12-Well-Platte wieder in den Inkubator, ermöglichen EBs lose ca. 10 min bei RT befestigen. Dann transferieren Sie 12-Well-Platte auf Zellkulturbrutschrank. Neuronen wachsen aus dem plattierten EBs in radialer Weise innerhalb der nächsten 4 Tage, wie shown in Abbildung 2 (&quot;Tag 8&quot; Bild rechts). </li></ol></li></ol> 5. Neuron Formation als Monoschichten <ol><li> Als Alternative zu den Schritten des Punktes 4), am Tag 4 der Prozedur, sammeln EBs in eine 3,5 cm bakteriellen Schale, enthaltend 2 ml Differenzierungsmedium, dann übertragen EBs in einem kleinen Volumen zu einem PBS-enthaltenden Schale und dann in andere Schale mit Accutase. </li><li> Lassen verdauen, um einzelne Zellen, Zentrifuge bei 200 × g für 2 Minuten, in einem kleinen Volumen von Differenzierungsmedium resuspendiert und bestimmen Zelltiter unter Verwendung eines Hämozytometers. Passen Titer zu 1-2x10 6 Zellen pro ml unter Verwendung Differenzierungsmedium (ohne Y-27632). </li><li> Platte Zellen in vorgewärmten Matrigel-beschichteten 12-Well-Platte (1 ml pro Vertiefung), und Transfer zum Zellkulturbrutschrank. Neuron Formation als Monolayer wurde zwischen Tag 7 bis 8 (3C) beobachtet. Es sollte jedoch angemerkt werden, dass diese Variante der Monoschichtdas Verfahren wird nicht vollständig mit Bezug auf das Überleben von Zellen und am meisten geeigneten Substrat optimiert. </li></ol>

<ol><li>Thomson, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+derived+from+human+blastocysts%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts.</a> Science. 282, 1145-1147 (1998).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131, 861-872 (2007).</li>
<li>Koch, P., Opitz, T., Steinbeck, J. A., Ladewig, J., Brustle, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rosette-type%2C+self-renewing+human+ES+cell-derived+neural+stem+cell+with+potential+for+in+vitro+instruction+and+synaptic+integration%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A rosette-type, self-renewing human ES cell-derived neural stem cell with potential for in vitro instruction and synaptic integration.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 3225-3230 (2009).</li>
<li>Chambers, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+neural+conversion+of+human+ES+and+iPS+cells+by+dual+inhibition+of+SMAD+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling.</a> Nat. Biotechnol. 27, 275-280 (2009).</li>
<li>Lee, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+directed+differentiation+of+neural+crest+stem+cells+derived+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Isolation and directed differentiation of neural crest stem cells derived from human embryonic stem cells.</a> Nat. Biotechnol. 25, 1468-1475 (2007).</li>
<li>Li, X. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specification+of+motoneurons+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Specification of motoneurons from human embryonic stem cells.</a> Nat. Biotechnol. 23, 215-221 (2005).</li>
<li>Pera, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+human+embryonic+stem+cell+differentiation+by+BMP-2+and+its+antagonist+noggin%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Regulation of human embryonic stem cell differentiation by BMP-2 and its antagonist noggin.</a> J. Cell Sci. 117, 1269-1280 (2004).</li>
<li>Smith, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+Activin%2FNodal+signaling+promotes+specification+of+human+embryonic+stem+cells+into+neuroectoderm%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Inhibition of Activin/Nodal signaling promotes specification of human embryonic stem cells into neuroectoderm.</a> Dev. Biol. 313, 107-117 (2008).</li>
<li>Greber, B., Lehrach, H., Adjaye, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+early+fate+decisions+in+human+ES+cells+by+distinct+states+of+TGFbeta+pathway+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Control of early fate decisions in human ES cells by distinct states of TGFbeta pathway activity.</a> Stem Cells Dev. 17, 1065-1077 (2008).</li>
<li>Greber, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF+signalling+inhibits+neural+induction+in+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">FGF signalling inhibits neural induction in human embryonic stem cells.</a> EMBO J. 30, 4874-4884 (2011).</li>
<li>Anderson, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Familial+dysautonomia+is+caused+by+mutations+of+the+IKAP+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Hum.+Genet%22%5BJournal%5D)">Familial dysautonomia is caused by mutations of the IKAP gene.</a> Am. J. Hum. Genet. 68, 753-758 (2001).</li>
<li>Lee, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modelling+pathogenesis+and+treatment+of+familial+dysautonomia+using+patient-specific+iPSCs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Modelling pathogenesis and treatment of familial dysautonomia using patient-specific iPSCs.</a> Nature. 461, 402-406 (2009).</li>
<li>Burridge, P. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+human+embryonic+stem+cell+embryoid+body+homogeneity+and+cardiomyocyte+differentiation+from+a+novel+V-96+plate+aggregation+system+highlights+interline+variability%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Improved human embryonic stem cell embryoid body homogeneity and cardiomyocyte differentiation from a novel V-96 plate aggregation system highlights interline variability.</a> Stem Cells. 25, 929-938 (2007).</li>
<li>Watanabe, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+ROCK+inhibitor+permits+survival+of+dissociated+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">A ROCK inhibitor permits survival of dissociated human embryonic stem cells.</a> Nat. Biotechnol. 25, 681-686 (2007).</li>
<li>Xu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeder-free+growth+of+undifferentiated+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Feeder-free growth of undifferentiated human embryonic stem cells.</a> Nat. Biotechnol. 19, 971-974 (2001).</li>
<li>Burridge, P. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+universal+system+for+highly+efficient+cardiac+differentiation+of+human+induced+pluripotent+stem+cells+that+eliminates+interline+variability%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A universal system for highly efficient cardiac differentiation of human induced pluripotent stem cells that eliminates interline variability.</a> PLoS One. 6, e18293(2011).</li>
</ol>

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Die meisten Differenzierungsprotokolle mit EB-Bildung aus hPSCs, einschließlich unserer bereits veröffentlichten Verfahren 10, auf manuelle oder Enzym-gestützte Ernte hESCs als Aggregate, was unweigerlich zu Heterogenität in EB Größen basieren. Diese Tatsache führt zu Schwankungen in der Differenzierung Effizienz mit einigen Zelllinien, wodurch systematische Untersuchungen schwierig, insbesondere bei einem mittleren Durchsatz Maßstab. Darüber hinaus ist die manuelle Dissektion arbeitsintensive die selbst komp...

hPSCs, bestehend aus Embryonen gewonnenen humanen embryonalen Stammzellen (hES) und induzierten pluripotenten Stammzellen (hiPSCs) sind pluripotent Bedeutung, dass sie sich zu verschiedenen Zelllinien in vitro 1-2 geben. Zahlreiche differenzierte Zelltypen wurden aus hES-Zellen bisher abgeleitet, unterstützen die Vorstellung, dass diese Zellen wertvolle Werkzeuge für die wissenschaftliche Forschung und zellbasierte Screening-Ansätze zu präsentieren und versprechen für zellbasierte Therapeutika. Protokolle für neuronale Differenzierung hESCs sind üblicherweise kompliziert und zeitaufwendig, da sie oft beim ersten induzierenden gesamten Neuronalen Schicksal, durch manuelle Trennung von neuralen Vorläuferzellen und anschließender terminaler Differenzierung zu einem gegebenen Neuron interessierenden Art 3-6 gefolgt basieren. In mancher Hinsicht ist diese Komplexität nicht überraschend und unvermeidlich, daß solche state-of-the-art gerichteten Differenzierung Protokolle schrittweise neigen zu imitieren frühen menschlichen Entwicklung, seit M.h ist in sich außerordentlich komplex. Auf der anderen Seite, kann es zum Teil auch Ausdruck unserer mangelnden Verständnis der zugrunde liegenden molekularen Prozesse, die sich in der Differenzierung Protokolle, die noch weit davon entfernt, vollständig optimiert. Im Hinblick auf die Umwandlung von undifferenzierten hPSCs in Neuroektoderms, Pera et al. festgestellt, dass Unterdrückung von BMP / SMAD1/5/8 Signalisierung neuralen Induktion von hESCs 7 erhöht. Darüber hinaus hat die Inaktivierung von SMAD2 / 3 Signalisierung gezeigt, Neuroektoderms Formation 8 fördern. Dementsprechend neigt kombiniert Inaktivierung dieser beiden Signalwege zu einer effizienteren neuronalen Induktion hPSCs 4,9 führen. Vor kurzem haben wir gezeigt, dass ein Drittel Signalweg, FGF / ERK als starker Repressor der frühesten Schritte neuroektodermalen Engagement in hESCs dient. Umgekehrt führen gleichzeitiger Unterdrückung von all diesen drei Wegen in der Nähe homogene Umwandlung von hES-Zellen in Neuroektoderms mitin nur vier Tagen 10. Anschließend wurde hocheffiziente terminalen Differenzierung in funktionale Nervenzellen innerhalb von acht Tagen beobachtet. Die Neuronen erhalten wurden wahrscheinlich sensorischen Neuronen des peripheren Nervensystems, die zum Teil erklären könnte ihre rasche Ableitung 10 sein. Defekte in sensorischen Neuronen Wartung eine Ursache bestimmter menschlicher Erkrankungen wie familiäre dysautonomia 11 betrachtet. Zur Modellierung solcher Krankheiten auf hiPSC Technologie 12 basiert, für weitere funktionelle Charakterisierung sowie zur aufgebracht Zwecke nicht erforderlich ist, eine bestimmte Art von Neuronen, kann diese Differenzierung Verfahren stellen eine brauchbare Basis. Allerdings führte die Differenzierungsstrategie ursprünglich beteiligt Bildung von embryonalen Körper (EBs) von Klumpen von HES Kolonien 10 eingesetzt, und diese in einem ganz Grad der Heterogenität bezüglich EB Größen und schien auch Neuron Bildung Effizienz in irgendeiner ce kompromittierenll Linien. Darüber hinaus aufgrund der Heterogenität in EB Größen erschien die Fähigkeit, systematisch zu testen Auswirkungen von zusätzlichen Wachstumsfaktoren oder kleine Moleküle während und nach Bildung Neuron etwas verwechselt werden. In diesem Bericht haben wir unsere bisherigen Verfahren zu einem mittleren Durchsatz-kompatibel, gezwungen, Aggregation-basierte Technik, um EBs in einem sehr size-kontrollierte Weise erzeugen, wie auch in anderen Zusammenhängen 13 dargestellt. Anschließend wird die EBs in V-förmige Vertiefungen von 96-Well-Platten wurden mit U-förmigen ultra-low attachment 96-Well-Platten transferiert erzeugt, um Neuroektoderms Formation in Suspension einzuleiten. Vier Tage später konnte die EBs aus was zu ausdifferenzierten Neuronen bei hohem Wirkungsgrad und Homogenität beschichtet werden. Alternativ wurden Tag-4 EBs in einzelne Zellen dissoziiert und als solche, die Folge niedriger Dichte Monoschichten der menschlichen Neuronen überzogen. Coherent Ergebnisse wurden bisher mit zwei unabhängig de erhaltenrived hES-Zelllinien, HuES6 und NCl3. Als Voraussetzung war erfolgreich EB Bildung strikt abhängig von der Verwendung eines synthetischen Polymer, Polyvinylalkohol (PVA), zusammen mit ROCK Inhibitor Y-27632 bekannten HES Überleben 13-14 fördern. Als ein Ergebnis gebildet Homogenität der EBs in 96-V-Platten wurde im wesentlichen gegenüber Bildung von EBs als Masse Kulturen auf zufällige Spaltung Techniken verbessert. Dieses System stellt somit eine deutlich verbesserte Plattform für Neuroektoderms Formation in Suspensionskultur, die von hoch kontrollierten Neuron Formation unter adhärenten Bedingungen.

<table border="1"><tbody><tr><td> Name des Reagenzes </td><td> Firma </td><td> Katalog-Nummer </td><td> Kommentare </td></tr><tr><td> Matrigel HC </td><td> Becton Dickinson </td><td> 354263 </td><td> Siehe Text für Details über den Umgang mit </td></tr><tr><td> DMEM/F-12 </td><td> Life Technologies </td><td> 21331-020 </td><td></td></tr><tr><td> Poly (vinylalkohol) </td><td> Sigma </td><td> 363170 </td><td> Man löst in 0,4% in DMEM/F-12 Verwendung einer Ultraschall Wasserbad / Überhitzung / können bei 4 ° C aufbewahrt werden für mehrere Wochen </td></tr><tr><td> N2 Supplement </td><td> Life Technologies </td><td> 17502-048 </td><td> 100X, wie gefrorenen Aliquots speichern </td></tr><tr><td> B27 Supplement </td><td> Life Technologies </td><td> 12587-010 </td><td> 50X, speichern als gefrorene Aliquots </td></tr><tr><td> Rinderserumalbumin </td><td> Sigma </td><td> A1595 </td><td> 10% = 500X, speichern als gefrorene Aliquots </td></tr><tr><td> L-Glutamin mit Penicillin / Streptomycin </td><td> PAA </td><td> P11-013 </td><td> Oder gleichwertig </td></tr><tr><td> FGF2 </td><td> Peprotech </td><td> 100-18B </td><td> Lösen sich bei 10 ug / ml in 0,1% BSA / PBS = 1000X, speichern als gefrorene Aliquots </td></tr><tr><td> ROCK-Inhibitor Y-27632 </td><td> abcamBiochemicals </td><td> Asc-129 </td><td> Lösen sich bei 10 mM in DMSO = 1000X, speichern als gefrorene Aliquots </td></tr><tr><td> PBS </td><td> PAA </td><td> H15-002 </td><td> Oder gleichwertig </td></tr><tr><td> Accutase </td><td> PAA </td><td> L11-007 </td><td></td></tr><tr><td> 96-well V-Bodenplatten </td><td> Nunc </td><td> 277143 </td><td></td></tr><tr><td> PD0325901 </td><td> Axon Medchem </td><td> Axon 1408 </td><td> Lösen bei 0,5 mM in DMSO = 1000X, speichern als gefrorene Aliquots </td></tr><tr><td> SB431542 </td><td> abcamBiochemicals </td><td> Asc-163 </td><td> lösen sich bei 15 mM in DMSO = 1000X, speichern als gefrorene Aliquots </td></tr><tr><td> Dorsomorphin </td><td> Santa Cruz </td><td> sc-200.689 </td><td> lösen sich bei 0,5 mM in DMSO = 1000X, speichern als gefrorene Aliquots </td></tr><tr><td> 96-well U-Boden ultra-low Befestigungsplatten </td><td> Corning </td><td> 7007 </td><td></td></tr><tr><td> beta-III Tubulin Antikörper (Maus) </td><td> Sigma </td><td> T8660 </td><td> Einsatz bei 1:1000 </td></tr><tr><td> beta-III Tubulin Antikörper (Kaninchen) </td><td> Covance </td><td> PRB-435P </td><td> Einsatz bei 1:2000 </td></tr><tr><td> BRN3A (POU4F1) Antikörper </td><td> Santa Cruz </td><td> sc-8429 </td><td> Einsatz bei 1:500 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Tabelle 1. &lt;/ Strong&gt; Spezifische Reagenzien und Geräte. </td></tr></tbody></table>

schnelle und effiziente erzeugung von neuronen aus menschlichen pluripotenten stammzellen in einem multititre platte format

Rapid and Efficient Generation of Neurons from Human Pluripotent Stem Cells in a Multititre Plate Format

Bestehenden Protokollen zur Erzeugung von Neuronen aus menschlichen pluripotenten Stammzellen (hPSCs) sind oft langwierig, da sie mehrstufige Verfahren, die die Isolierung und Expansion von neuralen Vorläuferzellen, vor terminalen Differenzierung. Im Vergleich zu diesen zeitraubenden Ansätze haben wir kürzlich festgestellt, dass kombinierte Hemmung von drei Signalwege, TGFβ/SMAD2, BMP/SMAD1 und FGF / ERK, rasche Induktion Neuroektoderms fördert aus hPSCs, durch sofortige Differenzierung in funktionelle Neuronen gefolgt. Hier haben wir unser Verfahren eine neuartige multititre Plattenformat angepasst, den weiteren Ausbau ihrer Reproduzierbarkeit und kompatibel zu machen mit mittel-Throughput-Anwendungen. Es umfasst vier Tagen Neuroektoderms Formation in schwimmenden Kugeln (Embryoid Bodies), um weitere vier Tagen Differenzierung zu Neuronen unter adhärenten Bedingungen. Die meisten Zellen mit diesem Protokoll erhalten scheinen bipolaren sensorischen Neuronen sein. Außerdemdas Verfahren ist sehr leistungsfähig, erfordert keine besondere fachlichen Fähigkeiten, und basiert auf einer einfachen chemisch definierten Medium mit kosteneffizienten niedermolekularen Wirkstoffen. Aufgrund dieser Eigenschaften kann das Verfahren als eine nützliche Plattform für die weitere funktionelle Untersuchungen sowie für zellbasierte Screening-Ansätze erfordern menschlichen sensorischen Neuronen oder Nervenzellen jeglicher Art dienen.

In unserem letzten Bericht im Einklang mit vielen anderen, konnte EBs aus hPSCs einfach durch Replattierung Aggregate auf Routine Aufspaltung hPSCs in Low-attachment Gerichte 10 erzeugt werden. Dies führt in der Regel eine breite Verteilung der resultierenden EB Größen (1C, oben). Ein weiteres Problem, das sich daraus ist, dass EBs in Suspension gehalten, um Aggregation neigen miteinander, was zu einem noch höheren Heterogenität EB Größen. Um diese Probleme zu umgehen, haben wir daher versuch...

Protokolle für die neuronale Differenzierung von pluripotenten menschlichen Stammzellen (hPSCs) sind oft zeitaufwendig und erfordern erhebliche Zellkultur Fähigkeiten. Hier haben wir ein kleines Molekül-basierte Differenzierung Verfahren zu einem multititre Plattenformat angepasst, die eine einfache, schnelle und effiziente Erzeugung von menschlichen Nervenzellen in einer kontrollierten Art und Weise.

Schnelle und effiziente Erzeugung von Neuronen aus menschlichen pluripotenten Stammzellen in einem Multititre Platte Format

Bestehende Protokolle zur Generierung von Neuronen aus humanen pluripotenten Stammzellen (hPSCs) sind häufig mühsam, da es sich um mehrstufige Verfahren handelt ...

Das übergeordnete Ziel des folgenden Experiments besteht darin, humane pluripotente Stammzellen oder H PSCs in Neuronen zu differenzieren, und zwar mithilfe eines Multi-Titerplattenformats. Dies wird erreicht, indem eine Einzelzell-Suspension von H PSCs gewonnen und in V-Boden-96-Well-Platten ausplattiert wird, um über Nacht Embryoidkörper oder EBS zu bilden.Anschließend werden die EBs in U-förmige Ultra-Low-Attachment-Platten mit Differenzierungsmedium überführt, um die Bildung von Neuroektoderm zu induzieren. Danach werden die EBs auf mit Matrigel beschichtete Schalen ausplattiert, um das Auswachsen von Neuronen zu fördern. Ergebnisse können ab etwa Tag acht mittels Immunfluoreszenz erzielt werden, die das Vorhandensein typischer neuronaler Marker zeigen.Färbeprotokolle zur Differenzierung menschlicher pluripotenter Stammzellen in Neuronen sind oft kompliziert und mühsam. Zufälligerweise stießen wir auf ein äußerst einfaches Verfahren, um Neuronen aus menschlichen pluripotenten Stammzellen herzustellen.Aus technischer Sicht liegt der Hauptvorteil dieser Methode gegenüber bestehenden Verfahren in ihrer einfachen Durchführung, Schnelligkeit und Kosteneffizienz. Gleichzeitig wird Dr

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Biologie

Wir haben ein Protokoll zur Induktion von Neuroblasten direkt von pluripotenten humanen embryonalen Stammzellen unter bestimmten Bedingungen mit kleinen Molekülen, die Ableitung von einem großen Angebot an humanen neuronalen Vorläuferzellen und neuronalen Zelltypen in sich entwickelnden ZNS für neuronale Reparatur ermöglicht gepflegt eingerichtet.

Effiziente Ableitung von humanen neuronalen Vorläuferzellen und Neuronen aus pluripotenten humanen embryonalen Stammzellen mit Small Molecule Induction

Hier zeigen wir, ein einfaches und effektives Protokoll für die Herstellung von menschlichen IPSCs 3-4 ml peripheres Blut unter Verwendung eines einzigen lentiviralen Vektors Umprogrammierung. Reprogrammierung von leicht verfügbaren Blutkörperchen verspricht die Nutzung von iPS-Technologie, indem sie Zugang zu einem breiteren Forschungsgemeinschaft beschleunigen.

Generation of Human induzierten pluripotenten Stammzellen aus dem peripheren Blut mit dem STEMCCA Lentivirusvektor

Das Video zeigt eine Methode zur Ablösung und Wiedereinpflanzung von menschlichen pluripotenten Stammzellen unter Verwendung eines milden proteolytischen Enzyms. Nach der Filtration und Zentrifugation werden die Neuronen zur Inkubation auf einer beschichteten Multiwell-Platte neu plattiert, um die Anheftung und Reifung zu fördern.

Replattierung differenzierter Neuronen aus humanen pluripotenten Stammzellen

Dieses Video zeigt den Prozess der Differenzierung von embryoiden Körpern (EBs) in neuroepitheliale Aggregate und deren anschließende Aufteilung in neuronale und gliale Zellen. Diese Methode ermöglicht die effiziente Erzeugung von neuronalen und glialen Zellen in vitro, die als Testsysteme für Toxizitätstests sowie zur Bewertung verschiedener Signalwege dienen, die an der Neurotoxizität beteiligt sind.

Erzeugung von Neuronen und Gliazellen aus humanen induzierten pluripotenten Stammzell-abgeleiteten Embryoidkörpern

Dieses Video beschreibt eine Methode zur Herstellung von Glasdeckgläsern, die mit Polyornithin und Laminin beschichtet sind, um die Adhäsion und das Wachstum von neuralen Stammzellen zu verbessern. Die Technik beinhaltet sequentielle Inkubationen und Waschungen, die die Bildung einer unterstützenden Matrix erleichtern, die das Wachstum und die Differenzierung der neuronalen Zellen fördert und die in den Neuronen gefundenen Strukturen nachahmt.

Generierung kortikaler Pyramidenneuronen aus humanen neuralen Stammzellen

Hier präsentieren wir unsere etablierte Methode zur menschlichen Körperzellen in gentechnikfreien menschlichen iPS-Zellen mit Sendai-Virus, das konsequente Ergebnis-und Effizienzsteigerung zeigt neu zu programmieren.

Effiziente Erzeugung Menschen induzierten pluripotenten Stammzellen aus menschlichen Körperzellen mit Sendai-Virus

Dendritischen Dornen von Pyramidenneuronen sind die Websites der meisten Synapsen im Gehirn von Säugetieren Kortex. Diese Methode beschreibt ein 3D-quantitative Analyse der Wirbelsäule Morphologien in der menschlichen kortikalen Pyramiden glutamatergen Neuronen aus induzierten pluripotenten Stammzellen abgeleitet.

Dreidimensionale Quantifizierung der dendritischen Dornen von Pyramidenzellen aus humanen induzierten pluripotenten Stammzellen

Wir modifizieren und Umsetzung eines bereits veröffentlichten Protokoll beschreibt die schnelle, reproduzierbare und effiziente Differenzierung von humanen 12 pluripotenten Stammzellen (hiPSCs) in exzitatorischen kortikalen Neuronen induziert. Insbesondere ermöglicht unsere Modifikation zur Steuerung neuronaler Zelldichte und der Verwendung auf Mikroelektrodenarrays elektrophysiologischen Eigenschaften auf Netzwerkebene zu messen.

Schnelle Neuronale Differenzierung von induzierten pluripotenten Stammzellen zur Messung der Netzwerkaktivität auf Micro-Elektroden-Arrays

Dieses Protokoll beschreibt ein detailliertes Verfahren zur Aussetzung und Kultivierung von neuronen menschlichen Stammzellen, die zuvor mehrere Wochen lang von neuronalen Vorläufern in vitro unterschieden wurden. Das Verfahren erleichtert bildgebende Assays von Neuriten, Synapsen und spät exemitten neuronalen Markern in einem Format, das mit Lichtmikroskopie und High-Content-Screening kompatibel ist.

Post-Differenzierung Replating von Human Pluripotent Stem Cell abgeleiteten Neuronen für High-Content Screening von Neuritogenese und Synapse Reifung

Wir zeigen die Automatisierung von humaninduzierten pluripotenten Stammzellkulturen (hiPSC) und neuronalen Differenzierungen, die mit automatisierter Bildgebung und Analyse kompatibel sind.

Automatisierte Produktion von humaninduzierten pluripotenten Stammzell-abgeleiteten kortikalen und dopaminergen Neuronen mit integrierter Live-Zell-Überwachung

Das vorliegende Protokoll beschreibt ein optimiertes 3D-System zur Induktion neuronaler Netzhaut, das die Adhäsion und Fusion von Netzhautorganoiden mit hoher Wiederholbarkeit und Effizienz reduziert.

Erzeugung neuronaler Netzhaut aus humanen pluripotenten Stammzellen

Erfahren Sie eine schnelle Methode zur Differenzierung menschlicher pluripotenter Stammzellen in Neuronen im Multititer-Plattenformat. Dieses Protokoll ermöglicht kontrollierte, effiziente Neuronengenerierung für die Neurowissenschaft.

Schnelle und effiziente Erzeugung von Neuronen aus menschlichen pluripotenten Stammzellen in einem Multititre Platte Format

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