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Ein hoher Durchsatz MHC II-Bindungsassay für die quantitative Analyse von Peptid-Epitope
Ein hoher Durchsatz MHC II-Bindungsassay für die quantitative Analyse von Peptid-Epitope
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Biology
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JoVE Journal Biology
A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes

Ein hoher Durchsatz MHC II-Bindungsassay für die quantitative Analyse von Peptid-Epitope

Full Text
15,637 Views
07:59 min
March 25, 2014

DOI: 10.3791/51308-v

Regina Salvat1, Leonard Moise2, Chris Bailey-Kellogg3, Karl E. Griswold1

1Thayer School of Engineering,Dartmouth College, 2Institute for Immunology and Informatics,University of Rhode Island, 3Department of Computer Science,Dartmouth College

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Biochemischen Assays mit rekombinanten menschlichen MHC-II-Moleküle können schnelle, quantitative Einsichten in immunogenes Epitop Identifizierung, Deletion oder Design zu schaffen. Hier wird ein Peptid-MHC-II-Bindungsassay auf 384-Well-Platten skaliert wird beschrieben. Diese kostengünstige Format ist auf den Gebieten der Protein-und Impfstoff Deimmunisierung Design und Entwicklung beweisen.

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, die Bindung von kurzen Peptiden an humane MHC-Immunproteine unter Verwendung eines Hochdurchsatz-Plattenassays mit 3 84 Vertiefungen zu quantifizieren. Dies wird erreicht, indem zunächst Konkurrenzbindungsassays in der Lösungsphase mit den interessierenden Peptiden durchgeführt werden. Im zweiten Schritt werden die äquilibrierten Peptid-MHC-Zwei-Komplexe mit einem anti-MHC-Zwei-Antikörper eingefangen, der auf hochbindenden ELIZA-Platten immobilisiert ist.

Als nächstes werden die gefangenen Komplexe mit dem mit Streptavidin markierten Opium inkubiert und dann wird das ungebundene Streptavidin weggewaschen und das gefangene Opium aktiviert. Letztendlich kann die zeitaufgelöste Fluorometrie verwendet werden, um die Spiegel des eingefangenen MHC-Zwei-Kontrollpeptids zu quantifizieren. Diese Methode kann erste Einblicke in das immunogene Potenzial von Zielproteinen liefern.

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