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Die Beurteilung artspezifische Um Beiträge Craniofacial Entwicklung mit Wachtel-Ente Chimären
Die Beurteilung artspezifische Um Beiträge Craniofacial Entwicklung mit Wachtel-Ente Chimären
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Biology
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JoVE Journal Biology
Assessing Species-specific Contributions To Craniofacial Development Using Quail-duck Chimeras

Die Beurteilung artspezifische Um Beiträge Craniofacial Entwicklung mit Wachtel-Ente Chimären

Full Text
11,460 Views
09:38 min
May 31, 2014

DOI: 10.3791/51534-v

Jennifer L. Fish1, Richard A. Schneider1

1Department of Orthopaedic Surgery,University of California at San Francisco

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article describes a method to generate chimeric embryos designed to test the species-specific contributions of neural crest and other tissues to craniofacial development. The procedure utilizes quail duct chimeras to investigate mechanisms of neural crest cell contributions during cranial facial development.

Key Study Components

Area of Science

  • Developmental Biology
  • Neuroscience
  • Embryology

Background

  • Neural crest cells are crucial for craniofacial development.
  • Chimeric embryos can help elucidate species-specific developmental patterns.
  • The method involves transferring neural folds between quail and duck embryos.
  • Understanding these mechanisms can provide insights into evolutionary biology.

Purpose of Study

  • To investigate the role of neural crest cells in craniofacial development.
  • To explore species-specific patterns in cranial structures.
  • To develop a reliable method for creating chimeric embryos for research.

Methods Used

  • Dissection of neural folds from quail and duck embryos.
  • Transfer of quail neural folds into duck host embryos.
  • Histological analyses to observe morphological changes.
  • Gene expression studies using in situ hybridization.

Main Results

  • Successful generation of chimeric embryos with distinct neural crest contributions.
  • Identification of species-specific patterns in craniofacial structures.
  • Demonstration of the method's effectiveness in developmental biology research.
  • Insights into the role of neural crest cells in shaping cranial morphology.

Conclusions

  • The method provides a valuable tool for studying craniofacial development.
  • Chimeric embryos can reveal important insights into species-specific developmental mechanisms.
  • This research enhances our understanding of evolutionary biology and developmental processes.

Frequently Asked Questions

What are chimeric embryos?
Chimeric embryos are organisms that contain cells from two different species, allowing researchers to study developmental processes across species.
Why are neural crest cells important?
Neural crest cells give rise to various structures in the head, including bones and cartilages, and are essential for proper craniofacial development.
How does this method contribute to developmental biology?
This method allows researchers to investigate the specific contributions of neural crest cells to craniofacial structures, enhancing our understanding of development and evolution.
What species are used in this study?
The study uses quail and duck embryos to create chimeric embryos for research purposes.
What techniques are used to analyze the chimeric embryos?
Histological analyses and in situ hybridization are used to study morphological changes and gene expression in the chimeric embryos.

Dieser Artikel beschreibt eine Methode, um Chimären-Embryonen, die entworfen sind, um die Spezies-spezifische Beiträge der Neuralleiste und / oder anderen Geweben zu testen kraniofazialen Entwicklung zu generieren.

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, mit Hilfe von Wachtelgang-Chimären die Mechanismen zu untersuchen, durch die neurale Krustenzellen während der kranialen Gesichtsentwicklung speziesspezifische Muster erzeugen. Dazu wird zunächst ein Streifen der Neuralfalte aus der mittleren und vorderen Hinterhirnregion eines Wachtelembryos im Stadium 9,5 präpariert und entfernt. Der zweite Schritt besteht darin, die Neuralfalte des Wachtelspenders auf den Embryo des Entenwirts zu übertragen.

Der dritte Schritt besteht darin, die äquivalente Region eines Entenwirtsembryos im Stadium 9,5 zu präparieren und zu entfernen. Der letzte Schritt besteht darin, die Neuralfalte der Spirale in die Enten-, Mittel- und vordere Hinterhirnregion zu platzieren. Letztendlich können die resultierenden chimären Embryonen durch die Neuralleiste vermittelte Veränderungen der Genexpression durch die C-2-Hybridisierung lokalisieren und auch morphologische Veränderungen durch histologische Analysen aufdecken.

Die Idee zu dieser Methode hatte ich zum ersten Mal, als ich Braune Pelikane über den Ocean Beach in San Francisco fliegen sah. Ich erkannte, dass Neuralleistenzellen die Quelle artspezifischer Muster sein müssen, da sie die Knochen und Knorpel ihres langen Schnabelskeletts hervorbringen. Obwohl ich keine braunen Pelikan-Eier ausfindig machen konnte, konnte ich eine weiße Pekingente finden.

Angesichts der Tatsache, dass San Francisco die größte Chinatown außerhalb Asiens hat, indem die Unterschiede in der Reiferate und Morphologie zwischen Wachteln und Enten ausgenutzt werden. Diese Methode kann uns helfen, Schlüsselfragen in der Entwicklungsbiologie zu beantworten, wie z.B. das Verständnis der Ursprünge artspezifischer Muster, Die Operation wird von Dr. Jennifer Fish, einer Postdoktorandin, durchgeführt. In meinem Labor wird Kate Ovitz, eine Doktorandin, assistieren. Mit einem Brötchen und einem Brenner erhitzen Sie das schmale Ende einer Pastenpipette, bis das Glas entlang der Verjüngung zu schmelzen beginnt. Nehmen Sie es von der Flamme und ziehen Sie an der Spitze, bis die Pipette verschlossen ist.

Achten Sie darauf, dass ein Teil des konischen Teils einen Außendurchmesser zwischen 0,7 und einem Millimeter hat. Brechen Sie dann das versiegelte Ende etwa vier Zentimeter von der Verjüngung entfernt ab. Befestigen Sie als Nächstes etwa einen Meter Gummischlauch an dem offenen Ende des Pipettenblasens am anderen Ende.

Es sollte keine Luft durch den Anschluss oder das andere Ende der Pipette strömen, während durch Blasen auf den Schlauch sanfter Druck ausgeübt wird. Verwenden Sie einen Propanstift und einen Flammenbrenner, um einen ovalen Bereich auf einer Seite der Pipette direkt unter dem Anfang des Kegels zu erhitzen. Sobald das Glas anfängt, sich nach außen zu knicken, nehmen Sie die Pipette von der Flamme und blasen Sie vorsichtig durch den Gummischlauch

.

Dies führt dazu, dass der erhitzte Teil des Glases eine wurstförmige Blase bildet. Zu viel Druck führt dazu, dass die Glasblase platzt, was vermieden werden sollte. Das resultierende Fenster in der Pipette sollte etwa einen Zentimeter breit und eineinhalb bis zwei Zentimeter lang sein.

Richten Sie nun das spitz zulaufende Ende nach oben und kratzen Sie die Blase in einen Glasabfallbehälter, während Sie vorsichtig durch den Schlauch blasen, um zu verhindern, dass Glassplitter in die Pipette gelangen. Brennen Sie dann mit der Propanflamme vorsichtig die restlichen Ränder der Blase ab und polieren Sie die Seiten des offenen Fensters. Halten Sie als Nächstes den Diamantstift in einer vertikalen Position und ritzen Sie mit einem Diamantstift das sich verjüngende Ende der Pipette einen Zentimeter vom Anfang des Kegels entfernt ein.

Brechen Sie die Pipette vorsichtig mit einer Pinzette an der eingekerbten Linie. Um die Spitze zu entfernen, überprüfen Sie unter einem Präpariermikroskop, ob der Bruch sauber und nicht gezackt ist. Halten Sie die Pipette so, als würde man einen Bleistift mit dem Zeigefinger in einem Abstand von etwa 9,5 Millimetern von der Spitze über das offene Fenster halten.

Halten Sie das Glas an der Pipette weich, indem Sie es an den Rand der Flamme eines Alkoholbrenners halten. Üben Sie mit einer Pinzette Druck auf die Spitze aus, um das schmale Ende der Pipette in einem 60-Grad-Winkel unter einem Präparierfernrohr nach unten zu biegen. Schnell und vorsichtig die Spitze mit dem Alkoholbrenner feuerpoliert.

Die fertige Öffnung sollte abgerundet und frei sein. Beachten Sie, dass die Spitze eingeengt und unbrauchbar wird, wenn sie zu lange in der Flamme gehalten wird. Schmieren Sie nun einen 2,5 Zentimeter langen Gummischlauch mit 70% Ethanol.

Schieben Sie es von unten nach oben über den Schaft der Pipette, um das offene Fenster abzudecken. Setze dann eine zwei Milliliter Latexbirne auf das offene Ende der Pipette. Um den internen Luftdruck aufrechtzuerhalten, bereiten Sie zuerst das Wirtseih vor.

Schneiden Sie die Vitale-Membran mit einer flammgeschärften Wolframnadel ab und ziehen Sie die Membran über den Embryo. Verschließen Sie dann die Eizelle wieder mit Klebeband, wie es bei der Spendereizelle der Fall war. Entfernen Sie das Klebeband vom Fenster an der Spenderei, um die Neuralfalte vom Spenderembryo abzuschneiden.

Machen Sie mit einer flammengeschärften Wolframnadel Schlitze auf beiden Seiten des Neuralrohrs. Schneiden Sie dann das Neuralrohr auf der gewünschten vorderen und hinteren Ebene des Transplantats durch und toupieren Sie das Transplantat vom Rest des Neuralrohrs getrennt. Achten Sie auf besondere anatomische Details wie die vordere und hintere Form des Transplantats, die das Spendergewebe richtig ausrichten sollen.

Wenn Sie sie in den Host einsetzen, stellen Sie sicher, dass die Wolframnadel extrem scharf ist. Verwenden Sie schnelle und bewusste Striche, um das Gewebe vollständig und in einem Stück zu entfernen. Entfernen Sie die Neuralfalte mit einer Schamanenpipette vom Spenderembryo. Ziehen Sie so wenig Flüssigkeit wie möglich auf, sonst könnte das Gewebe beim Transfer wegschwimmen.

Entfernen Sie nun das Klebeband aus dem Fenster an der Wirteizelle und platzieren Sie mit der Schamanenpipette die gespendete Neuralfalte neben dem Wirtsembryo neben der Region des Neuralrohrs, die das Transplantat erhalten wird. Trennen Sie nun die Neuralfalte vom Neuralrohr des Wirtsembryos, wie es bei der Spenderin gemacht wurde. Achten Sie darauf, ein Transplantat zu entfernen, das genauso groß ist wie das Spendergewebe.

Schieben Sie dieses Wirtsgewebe vorsichtig weit vom Embryo weg. Bewegen Sie dann mit einer stumpfen Wolframnadel oder der abgerundeten Spitze einer Mikropipette die Donor-Neuralfalte vorsichtig in das Neuralrohr des Wirts, wobei Sie die richtige vordere posteriore und dorsale ventrale Ausrichtung beibehalten. Achte darauf, dass das Transplantat an den Seiten eingesteckt ist, aber achte darauf, dass du nicht in das darunter liegende Gewebe stichst oder es beschädigst.

Sterile Kochsalzlösung sollte vorsichtig und sanft auf den Wirtsembryo aufgetragen werden. Wenn es Anzeichen von Austrocknung gibt, verschließen und etikettieren Sie das Ei nun vorsichtig wieder und legen Sie es vorsichtig in einen Inkubator mit hoher Luftfeuchtigkeit, wo sich der chimäre Embryo bis zum gewünschten Stadium entwickeln kann. Zur Analyse.

Sammeln Sie für die Analyse die chimären Embryonen in frisch hergestelltem kaltem Sarah-Fixiermittel. Legen Sie sie dann sofort bei vier Grad Celsius auf eine Wippe für eine Fixierung über Nacht. Dies ermöglicht einen empfindlicheren Nachweis von Wachteleiern mit dem Anti-Wachtel-Antikörper.

Ein weiterer wichtiger Schritt für Genexpressionsanalysen mittels quantitativer Echtzeit-PCR ist das Einfrieren der Embryonen und des flüssigen Stickstoffs vor der RNA. Extraktionsspiralen und Enten weisen erhebliche Unterschiede in Größe und Form auf, so dass ihre Embryonen ideal für die Herstellung eines chimären Systems geeignet sind. Zur Untersuchung der kraniofazialen Entwicklung von C.

Insbesondere ist das System nützlich, um die Rolle von Neuralleistenzellen zu untersuchen. Bei der Musterung des Gesichtsskeletts in der chimären qua Embryo-Spenderwachtel wandern Neuralleistenzellen in den Unterkieferbogen der Wirtente. In einem entenartigen Muster sind Wachtelspenderzellen in grün mit einem Anti-Wachtel-Antikörper aus der ventralen Ansicht betrachtet.

In einem chimären Embryo im Stadium 12 erzeugt die Donor-Neuralleiste ein Unterkieferskelett, das in Größe und Form wachtelartig ist. Einmal gemeistert, kann jede Transplantation in etwa fünf Minuten durchgeführt werden. Wenn es länger richtig gemacht wird, besteht für den Embryo das Risiko, dass er austrocknet, und die Überlebensrate sinkt.

Bei der Durchführung dieses Verfahrens ist es wichtig, sich Ihrer Haltung bewusst zu sein, Ihre Schultern zu entspannen und eine gute Handhaltung beizubehalten. Entwickeln Sie außerdem eine Routine und platzieren Sie Ihre chirurgischen Instrumente und Reagenzien jedes Mal an der gleichen Stelle, damit Sie Ihre Augen im Mikroskop halten und Ihre Hände automatisiert bewegen können.

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Entwicklungsbiologie Issue 87 Neuralleiste Wachtel-Ente Chimären kraniofaziale Entwicklung epitheliale-mesenchymale Interaktionen Gewebetransplantate evolutionären Entwicklungsbiologie

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