Name: Entwicklung und Charakterisierung von dendritischen Zellen murinen Tolerogene (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-18T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 51 s
Description: Erfahren Sie die Entwicklung und Charakterisierung tolerogener dendritischer Zellen aus C57BL/6-Mäusen für die Immuntherapie bei Autoimmunerkrankungen wie Multipler Sklerose. Diese standardisierte Methode ermöglicht reproduzierbare Ergebnisse.

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Wir danken für die Bereitstellung von CDDO DFPA Reata Pharma. Wir anerkennen auch die Unterstützung von Jane und Lee Seidman Lehrstuhl für Pädiatrie Krebs Innovation (John Letterio). Diese Arbeit wurde unterstützt vom Verteidigungsministerium [W81XWH-12-1-0452]; die Angie Fowler Jugendlichen und jungen Erwachsenen Krebs Forschungsinitiative an dem Fall Comprehensive Cancer Center; und dem Callahan Absolvent Scholar Award for Hsi-Ju Wei von f.j. Callahan-Stiftung.

Alle Studien wurden durchgeführt in Übereinstimmung mit den Verfahren, die von der Case Western Reserve University School of Medicine der institutionellen Animal Care und Use Committee genehmigt.
1. Vorbereiten des Knochenmarks-abgeleitete dendritischer Zellen (BMDCs)
<ol><li>Sterilisieren Sie alle chirurgischen Instrumente durch Autoklavieren zu und führen Sie das Experiment in Klasse II biologischen Sicherheitsschrank mit entsprechenden Sicherheitsvorkehrungen.</li>
	<li>Einschläfern Sie C57BL/6 Mäusen 8-10 Wochen alt mit CO2 -Kammer. Platzieren Sie den Mauszeiger auf einen sezierenden Brett und spülen Sie mit 70 % Ethanol. Verbrauchsteuern Sie Tibia-Fibula und Femur-Knochen mit einer chirurgischen Schere und legen Sie sie mit 70 % Ethanol in der Kulturschale 10 cm.</li>
	<li>Chirurgische Messer und Zange verwenden, um Gewebe entfernt sezieren so weit wie möglich auf dem Deckel des 10 cm Kultur Gericht und Isolierung von Gebeinen und Oberschenkelknochen zu platzieren mit 70 % Ethanol in der Kulturschale 6 cm.</li>
	<li>Verwenden Sie chirurgische Sägeblätter, um beide Enden der Schienbeine und Oberschenkelknochen zu trimmen. Verwenden Sie 3 mL PBS in 3 ml Spritze mit einer Nadel 23G, um den Inhalt von Knochenmark von einem Ende der Knochen auf eine konische Rohr mit 12 ml PBS zu leeren. Wiederholen Sie diesen Schritt 3 X für die beiden Enden der Knochen.</li>
	<li>Zentrifugieren Sie die Zellsuspension bei 300 X g für 5 min.</li>
	<li>Entfernen Sie den überstand und Aufschwemmen der Zelle Pellet mit 1 ml ACK lysiereinrichtung Puffer für 5 Minuten, um rote Blutkörperchen zu entfernen.</li>
	<li>Fügen Sie 9 ml PBS verdünnen ACK lysiereinrichtung Puffer und Zentrifuge bei 300 X g für 5 Minuten.</li>
	<li>Den überstand zu entfernen und erneut mit 10 ml Kulturmedium (RPMI-1640 plus L-Glutamin, 10 % FBS, 1 % nicht-essentielle Aminosäure (100 X), 10 mM HEPES, 50 nM β-Mercaptoethanol und 5 % Penicillin/Streptomycin). Hinweis: Endotoxin-Ebene muss weniger als 0,1 EU/ml in FBS.</li>
	<li>Die Zellsuspension durch ein 40 μm Zelle Sieb passieren und nehmen 20 µl Zellsuspension und mischen mit 80 µl Trypan blau, um die Anzahl der lebenden Zellen mithilfe Cytometer.</li>
	<li>Passen Sie die Anzahl von Zellen, 1 x 106 Zellen/ml mit 15 ng/ml GM-CSF und 10 ng/ml IL-4.</li>
	<li>3 ml 1 x 106 Zellen/ml in jede Vertiefung des 6-Well-Platte-Platte und die Zellen bei 37 ° C, 5 % CO2und 95 % Luftfeuchtigkeit in den CO2 Inkubator inkubieren. Hinweis: Die Knochenmarkzellen von einer Maus ist um 3-5 x 107 Zellen, die darauf hinweist, dass es von 2 bis 3 6-Well-Platten platziert werden kann.</li>
	<li>Am 3. Tag fügen Sie alle 3 ml Kulturmedium aus jedem Bohrloch entfernen 2 ml frische PBS in jede Vertiefung hinzu und dann schwenken Sie sanft die Platte, um sicherzustellen, entfernen alle nicht-anhaftende Zellen.</li>
	<li>3 ml frisches Kulturmedium mit 15 ng/ml GM-CSF und 10 ng/ml IL-4 in jede Vertiefung zu ersetzen. Inkubieren Sie die Zellen bei 37 ° C, 5 % CO2und 95 % Luftfeuchtigkeit in den CO2 Inkubator.</li>
	<li>Am 5. Tag direkt hinzufügen einer anderen 3 ml frisches Kulturmedium mit 15 ng/ml GM-CSF und 10 ng/ml IL-4 in jede Vertiefung. Inkubieren Sie die Zellen bei 37° C, 5 % CO2, und 95 % Luftfeuchtigkeit im CO2 Inkubator. Hinweis: Das Gesamtvolumen in jede Vertiefung ist jetzt 6 ml.</li>
	<li>Am 7. Tag legte die gesamte Platte für 10 min auf Eis. Pipette vorsichtig das Kulturmedium in jede Vertiefung, die lose anhaftende BMDCs als iDCs in Suspension zu verdrängen. Hinweis: Die anhaftenden Makrophagen sind noch an der Platte befestigt. Niedrige Temperatur und sanft Verfahren sind der Schlüssel zur Vermeidung von DC-Aktivierung um weitere Experimente zu beeinflussen.</li>
	<li>Die Zellsuspension bei 300 X g für 5 Minuten zentrifugieren und Aufschwemmen mit frischem Nährmedium für weitere Experimente. Hinweis: BMDCs durch Durchflusszytometrie mit Fluoreszenz-markierten CD11c Antikörper identifiziert werden können und wir haben unsere gating Strategie des BMDCs für weitere Experimente in Abbildung 1gezeigt.</li>
</ol>(2) charakterisieren Sie TolDC gen und Protein-Profil
<ol><li>Platte 2 ml 1 x 106 BMDCs/ml pro Bohrloch in 6 Well-Platte mit Kulturmedium in Anwesenheit oder Abwesenheit von 100-400 nM CDDO DFPA für die Inkubation bei 37 ° C, 5 % CO2 und 95 % Luftfeuchtigkeit im Inkubator CO2 1 h. Hinweis: CDDO-DFPA, eine synthetische Triterpenoid ist ein nuklearer Faktor (2 erythroiden abgeleitet) - wie - 2 Faktor (Nrf2) Induktor und nuklearer Faktor κB (NF-κB)-Inhibitor. Gelten Sie andere Agenten für die Induktion von TolDCs von iDCs, wie IL-10, Vitamin D3, Dexamethason oder Bucht 11-7085, und ändern Sie diesen Schritt, um eine optimale Voraussetzung für jeden Agenten.</li>
	<li>Fügen Sie 10 oder 100 ng/ml von LPS für die Inkubation 4-24 Std., induzieren mDCs (Inkubationszeit unterscheidet sich durch Messung von mRNA oder Protein).</li>
	<li>Sanft pipette das Kulturmedium in jede Vertiefung und ernten die Zellsuspension mit 1 ml-Pipette. Zentrifugieren Sie bei 300 X g für 5 Minuten, die Zellen und überstand, bzw. zu sammeln.</li>
	<li>Analysieren der Oberfläche Liganden aus der Zelle Pellets durch Durchflusszytometrie, wie stimulierende Liganden: CD40, CD80 und CD86, MHC-II, OX40L, ICOSL oder hemmenden Liganden: PD-L1, PD-L2, ILT3, ILT4.</li>
	<li>Isolierung der RNS aus der Zelle Pellets und analysieren die RNA und überstand Proben für die Cytokine Profil und gen und Protein Ebenen durch quantitative Echtzeit-PCR (qRT-PCR) und ELISA, beziehungsweise. Hinweis: zum Beispiel, inflammatorische Zytokine: TNF-α, IFNγ, EDN-1, IL-6, IL-12 und IL-23 oder Anti-inflammatorische Zytokine: IL-4, IL-10, IL-15, TGF-β1 und HO-1.</li>
</ol>3. Beurteilung die Funktion des TolDCs In Vitro und In Vivo
<ol><li>
T-Zell-Phänomen Proliferation-Assay
	<ol>
<li>Sterilisieren Sie alle chirurgischen Instrumente durch Autoklavieren zu und führen Sie das Experiment in Klasse II biologischen Sicherheitsschrank mit entsprechenden Sicherheitsvorkehrungen.</li>
		<li>Bereiten Sie MACS-Puffer mit 0,5 % Rinderserumalbumin (BSA) und 2 mM EDTA in 500 ml PBS vor. Sterilisieren Sie den Puffer durch durch einen 0,2 µm-Filter filtern. Hinweis: Halten Sie den Puffer auf dem Eis während das folgende Experiment.</li>
		<li>CD4 zu+ T Zellen, einschläfern OT-II T-Zell-Rezeptor (TCR) Transgene Mäuse 8-10 Wochen alt mit CO2 -Kammer. Platzieren Sie den Mauszeiger auf einen sezierenden Brett und spülen Sie mit 70 % Ethanol. Isolieren der Milz von der linken Seite des Bauches mit chirurgische Scheren und Pinzetten.</li>
		<li>Legen Sie die Milz mit 2 ml PBS in einer Kulturschale 6 cm und mit der Rückseite der schiebestock 3 ml Spritze die Milz Zerkleinern, indem man ein Sieb 40 μm Zelle.</li>
		<li>Sammeln Sie die Zellsuspension und Zentrifuge bei 300 X g für 5 Minuten.</li>
		<li>Aufschwemmen der Zelle Pellet in 400 µl des MACS-Puffer.</li>
		<li>Fügen Sie 100 μl der CD4+ T-Zell-Biotin-Antikörper-Cocktail bei 4° C für 5 Minuten. Hinweis: Der cocktail Antikörper bindet auf andere Zelltypen außer CD4+ T-Zellen, wie z. B. CD8a, CD11b, CD11c, CD19, CD25, CD45R (B220), CD49b (DX5), CD105, Anti-MHC-Klasse II, Ter-119 und TCRγ/δ.</li>
		<li>Fügen Sie 300 μl des MACS-Puffer und 200 μl des Anti-Biotin Perlen (Table of Materials) bei 4° C für 10 Minuten.</li>
		<li>Ort die Spalte aus der ferromagnetischen Sphären (Table of Materials) und Vorabscheidung Filter zusammen in dem magnetischen Feld und spülen Sie ihn mit 3 ml MACS-Puffer.</li>
		<li>Fügen Sie 9 ml MACS-Puffer in die Zellen und die Zentrifuge bei 300 X g für 5 Minuten.</li>
		<li>Aufschwemmen der Zelle Pellet in 3 ml MACS-Puffer und wenden Sie auf die Spalte. Sammeln Durchflussverfahren mit CD4+ T Zellen.</li>
		<li>Spalte mit einer anderen 3 ml MACS-Puffer waschen und auch die Durchströmung zu sammeln.</li>
		<li>Um Milz Pfanne DCs zu erhalten, einschläfern Sie C57BL/6 Mäusen mit CO2 Kammer ca. 8-10 Wochen alt. Platzieren Sie den Mauszeiger auf einen sezierenden Brett und spülen Sie mit 70 % Ethanol. Isolieren der Milz von der linken Seite des Bauches mit chirurgische Scheren und Pinzetten. Setzen die Milz in der 6cm Kulturschale mit 2 ml Kollagenase D-Lösung (2 mg/ml Kollagenase D aufgelöst in HBSS, enthält Kalzium, Magnesium).</li>
		<li>Spritzen Sie 1 ml der Kollagenase D Lösung zur Milz zwei Mal eine 1 ml Spritze mit einer Nadel 25G. Schneiden Sie die Milz mit einer kleinen Schere in kleine Stücke.</li>
		<li>Schütteln und Inkubation bei Raumtemperatur für 25 Minuten.</li>
		<li>Fügen Sie 500 µl 0,5 M EDTA bei Raumtemperatur für 5 Minuten. Hinweis: Die Schritte von 3.1.13-3.1.14 sind entscheidend für die Erhöhung der Ausbeute von DCs.</li>
		<li>Jetzt mithilfe der Rückseite der schiebestock 3 ml Spritze mince der Milz Brei durch ein Sieb 40 μm Zelle vorbei und sammeln die Zellsuspension durch Zentrifugieren bei 300 X g für 5 Minuten.</li>
		<li>Aufschwemmen der Zelle Pellet in 350 μl des MACS-Puffer, 50 μl der FcR Blocking Reagenz und 100 μl des Pan Dendritische Zelle Biotin-Antikörper Cocktail bei 4° C für 10 Minuten. Hinweis: Der Antikörper gegen Antigene, die nicht von DCs ausgedrückt sind cocktail.</li>
		<li>Waschen Sie die Zellen, indem 9 ml MACS-Puffer und Zentrifuge auf 300 X g für 5 Minuten.</li>
		<li>Aufschwemmen der Zelle Pellet in 800 µl des MACS-Puffer und fügen Sie 200 μl des Anti-Biotin Perlen bei 4 ° C für 10 Minuten.</li>
		<li>Wiederholen Sie die Schritte aus 3.1.9-3.1.11 DCs zu sammeln.</li>
		<li>Spalte mit einer anderen 3 ml MACS-Puffer zwei Mal waschen und auch die Durchströmung sammeln.</li>
		<li>2 x 105 DCs/ml mit 1 μM CFSE bei 37 ° C für 15 Minuten in das Vorhandensein oder Fehlen von 100-400 nM CDDO DFPA bei 37 ° C für 1 Stunde separat, Beschriftung der CD4+ -T-Zellen (1 x 107/ml) zu behandeln, Waschen mit PBS , und passen Sie die Lautstärke um Endkonzentration bei 2 x 106 T Zellen/ml zu erhalten.</li>
		<li>Als nächstes in eine 96-Well-Platte Co Kultur 100 μl der behandelten dendritischen Zellen mit dem gleichen Volumen des CFSE--mit der Bezeichnung CD4+ T-Zellen, beide gesammelt aus den oben genannten Schritte, um 01:10 Verhältnis. Fügen Sie jetzt 100 ng/mL Ovalbumin (OVA) Peptid 323-329 pro Brunnen und messen die Intensität der CFSE-der T-Zellen durch Durchflusszytometrie nach 2-3 Tagen Inkubationszeit. Hinweis: Die Zellzahlen und das Verhältnis von DCs und T Zellen aus unserer bisherigen Arbeit37optimiert worden.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Induzieren passiv EAE durch die Injektion von BMDCs gepulst mit Myelin Oligodendrozyt Glykoprotein (MOG) (35-55)
	<ol>
<li>Platte 2 ml 1 x 106 BMDCs/ml pro Bohrloch in 6 Well-Platte mit Kulturmedium in das Vorhandensein oder Fehlen von 100-400 nM CDDO DFPA für die Inkubation von 1 Stunde.</li>
		<li>Fügen Sie 10 ng/ml von LPS für Inkubation 24 hrs.</li>
		<li>Hinzufügen von 100 μg/ml MOG (35-55) für die Inkubation 4 Stunden.</li>
		<li>Ernte der Zellsuspension und Zentrifuge bei 300 X g für 5 Minuten.</li>
		<li>Aufschwemmen der Zelle Pellet mit PBS und die Zellen zu zählen.</li>
		<li>Subkutan Spritzen Sie 200 μl der 2 x 106 Zellen auf ca. 8-10 Wochen alten weiblichen C57BL/6 Mäusen (100 μl in jedem Hinterbein).</li>
		<li>Am Tag der Injektion BMDC und 48 Stunden. später, injizieren 200 ng Pertussis-Toxin (PTX) in jeder Maus.</li>
		<li>Wiederholen Sie Schritte 3.2.6-3.2.7 einmal pro Woche für 4 Wochen.</li>
		<li>Die klinischen Symptome der EAE täglich mithilfe von Standardkriterien37 (0,5-hinken Endstück, 1-hinken Rute, 2-mäßig Hind Gliedmaßen Schwäche, 3 schwere Hind Gliedmaßen Schwäche, 4 komplette Hind Extremität Lähmung, 5-Tetraplegie oder sterbenden Zustand, 6-Tod) zu bewerten.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

Dieses Paper beschreibt ein effizientes Protokoll, das die reproduzierbar iDCs generieren und anschließend Unterscheidung in TolDCs verwendet werden kann, und wir schlagen vor, dies angewendet werden, kann um die Kapazität der neuen molekularen Ziel Agenten induzieren die TolDC bewerten Phänotyp. Wie in diesem Bericht beschrieben, folgten wir eine Sequenz, in der ersten TolDC Ausdruck der Oberfläche Liganden durch Durchflusszytometrie, gefolgt von einer Bewertung der DC Cytokine Profil qRT-PCR und ELISA gemessen analysie...

Dendritische Zellen (DCs) waren sind fester Bestandteil des angeborenen Immunsystems zuerst entdeckt und gekennzeichnet durch Ralph Steinman und Zanvil Cohn 1973 als primäre professionelle Antigen präsentierenden1 Zellen. DCs haben gezeigt, dass eine wichtige Rolle in Immunaktivierung spielen, verarbeitete Antigene an T-Zellen und B-Zellen über große Histocompatibility komplexe (MHC) in sekundären lymphatischen Organe verbinden die angeborenen und der adaptiven Immunsystem2präsentiert. In den Säugetieren Immunsystem gibt es mindestens zwei Kategorien von DCs die myeloische DCs und DCs (pDCs)3plasmazytoide beschrieben sind. Myeloische DCs, auch bekannt als konventionelle DCs (cDCs), zeichnen sich durch die Expression von CD11c und kann als unreif DCs (iDCs) in Vitro aus Vorläuferzellen des Knochenmarks oder peripherem Blut Monozyten mit unterschieden werden Granulozyten-Makrophagen-Kolonie-stimulierende Faktor (GM-CSF) und IL-4 in murinen oder menschlichen Arten, bzw.4.
Aktivierung von "Gefahr" signalisiert, wie Pathogen-assoziierte molekulare Muster (PAMP) oder Schaden-assoziierte molekulare Muster (feucht), fahren iDCs Reifung in Richtung immunogen DCs als Reife DCs (mDCs) über verschiedene Muster Anerkennung Rezeptoren für verbindlich die DC Oberfläche5. Immunogen DCs weitere erstklassige naive T-Zell-Proliferation und Differenzierung durch Hochregulation der ARBEITSPLATZAUSSTATTUNG2, costimulatory Liganden (CD40, CD80 und CD86)6, Zytokine und andere lösliche Mittler-7. Eine Kaskade von Pro-inflammatorischen Mediator Produktion von immunogen DCs ist essentiell für Zytokin-vermittelte T-Zell-Differenzierung. IFN-γ und IL-12 sind notwendig für Th1 Differenzierung8 und IL-1, sind beispielsweise IL-6 und IL-23 für naive T-Zelle Polarisation Richtung Th17 Zellen9von entscheidender Bedeutung. Obwohl Reife DCs auf fremde Antigene reagieren, unkontrollierte DC-Aktivierung von selbstantigenen Toleranz Ablation verursachen und fördern die Entwicklung von Autoimmunerkrankungen durch die Generierung von autoreaktiven T-Zellen, deren Aktivierung zur Zerstörung des Gewebes10 führt .
Die jüngsten Berichte lieferten eindeutige Beweise für DC Plastizität, veranschaulicht durch ihre Fähigkeit zur Interaktion mit verschiedenen Queues innerhalb ihrer Mikroumgebung Gewebe und in verschiedenen Effektor/Suppressor DC Teilmengen zu unterscheiden. Die Anti-inflammatorische Mediatoren wie IL-10-11, TGF-β12und HO-113 haben gezeigt, eine wichtige Rolle bei Immunsuppression durch Induktion tolerogene DCs (TolDCs) zu spielen. Diese TolDCs regulatorische Funktionen erwerben und T-Zell-Proliferation-14zu unterdrücken. Darüber hinaus das Fehlen der Ko-Stimulation von DCs und die Produktion von Anti-inflammatorische Mediatoren aus TolDCs sowohl zur Induktion von regulatorischen T-Zellen (Tregs) beitragen und auch effektiv hemmen Th1 und Th17 Differenzierung und Erweiterung15. In vergangenen zwei Jahrzehnten wurde durch mehrere Untersucher das therapeutische Potenzial von TolDCs berichtet. In diesen Studien die Verwaltung der Ex-Vivo erzeugt nicht nur gelindert TolDCs pathologische Symptome in präklinischen Modellen von Autoimmunerkrankungen16 aber führte auch zur Entwicklung der Immuntoleranz bei Patienten17 ,18. Interessant ist, heute die TolDCs Therapie galt als alternative oder Zusatztherapie Ansatz für Autoimmunerkrankungen in mehreren klinischen Studien, einschließlich 1 Diabetes Mellitus19, rheumatoider Arthritis20, Typ 21, Multiple Sklerose (MS)22,23,24und Crohns Krankheit25.
Es gibt eine Vielzahl von Protokollen, die beschäftigt sind, TolDCs zu entwickeln und mehrere Labore haben Methoden zur Generierung und phänotypischen Charakterisierung des TolDCs berichtet. Diese Methoden können reproduzierbar TolDCs in Vitro aus hämatopoetischen Vorläuferzellen zu generieren und, sie in einem tolerogene Zustand in Vivo26,27,28,29stabil zu halten. Die iDCs kann durch die Einwirkung von verschiedenen immunmodulatorischen pharmakologische Wirkstoffe oder Anti-inflammatorische Zytokine TolDCs umgewandelt. Vitamin D3 ist beispielsweise eine bekannte pharmakologische Agenten bekannt erweitern Produktion von IL-10 und IL-12 Sekretion von DCs zu unterdrücken und damit ihre immunsuppressive Funktion30steigern. Darüber hinaus Wenn DCs starke entzündliche Reize wie Lipopolysacchariden (LPS), ausgesetzt sind mehrere pharmakologische Wirkstoffe wie Dexamethason31, Rapamycin32und Kortikosteroide33 haben gezeigt, dass induzieren die TolDC Phänotyp durch Verringerung der DC oberflächenexpression von CD40, CD80 und CD86 ARBEITSPLATZAUSSTATTUNG34. IL-10 und TGF-β sind die meisten studiert Anti-inflammatorische Zytokine, DC Toleranz35 und die gleichzeitige Exposition gegenüber beide dieser Zytokine induzieren nachweislich zu tolerogene Phänotyp in DCs36zu induzieren.
Seit der tolerogene DC von funktionellen Eigenschaften definiert ist, anstatt durch phenotypische Marker gibt es muss eine große eine einheitliche Methode zur zellulären und funktionelle Charakterisierung des TolDCs zu entwickeln. Darüber hinaus eine strenge und konsequente Protokoll muss für die einheitliche Bewertung und Charakterisierung von tolerogene DC-Phänotyp festgestellt werden, wenn wir effektiv und reproduzierbar die Möglichkeit neuer Wirkstoffe induzieren TolDC Phänotyp in vergleichen sollen die Labor. Hier bieten wir Ihnen ein detailliertes Protokoll mit schrittweisen Methoden iDCs von hämatopoetischen Vorläuferzellen von Mäusen isolieren und anschließend die Wirksamkeit neuer Wirkstoffe in der Bewertungsphase für ihre Fähigkeit zur TolDCs, iDCs umzuwandeln analysieren bietet eine robuste phänotypische und funktionelle Charakterisierung des TolDCs in Vitro und in Vivo. Diese Beschreibung umfasst eine aufwändige Methode zur Charakterisierung des TolDCs durch ihre Oberfläche Liganden, Cytokine Profil und immunsuppressive Funktionen in Vitro. Wir bieten auch ein Beispiel für eine Methode, um die mögliche therapeutische Anwendung dieser TolDCs in einem präklinischen Modell der MS, Experimentelle autoimmune Enzephalomyelitis (EAE) zu erkunden. Dieses etablierte Protokoll hilft Ermittlern auszuwertende die Kapazität der neuen Agenten, die Induktion von TolDCs zu fördern und die Bemühungen um die Ausweitung der therapeutischen Entwicklung TolDC erleichtern.

<table><tbody><tr><td>CDDO-DFPA (RTA-408)</td><td>Reata Pharmaceuticals</td><td>Inhouse-Synthese</td><td>Zellkultur-Maus</td></tr><tr><td>GM-CSF</td><td>Peprotech Inc.</td><td>315-03</td><td>BMDC Differenzierung</td></tr><tr><td>Maus IL-4</td><td>Peprotech Inc.</td><td>214-14</td><td>BMDC-Differenzierung</td></tr><tr><td>Lipopolysaccharide (LPS)</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>L2880</td><td>Zellkultur</td></tr><tr><td>&beta;-Mercaptoethanol</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>516732</td><td>Zellkultur</td></tr><tr><td>Pertussis-Toxin (PTX)</td><td>R& D systems</td><td>3097</td><td>EAE induction</td></tr><tr><td>MOG (35&ndash; 55) Peptid</td><td>21stCentury Biochemicals</td><td>in house synthesis</td><td>EAE induction</td></tr><tr><td>Trypanblau</td><td>Gibco, Life Technologies</td><td>15250-061</td><td>Zellkultur</td></tr><tr><td>RPMI-1640 plus L-Glutamin</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>11875-093</td><td>Zellkultur</td></tr><tr><td>Nicht-essentielle Aminosäure (100X)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>11140050</td><td>Zellkultur</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>15630080</td><td>Zellkultur</td></tr><tr><td>Penicillin/Streptomycin</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>15140122</td><td>Zellkultur</td></tr><tr><td>40 &#956; m Zell-Sieb</td><td>Corning</td><td>352340</td><td>Zellisolierung</td></tr><tr><td>PE-konjugiert CD80</td><td>BD Biosciences</td><td>557227</td><td>Durchflusszytometrie</td></tr><tr><td>PE-konjugiert CD86</td><td>BD Biosciences</td><td>555665</td><td>Durchflusszytometrie</td></tr><tr><td>PE-konjugiert PD-L1</td><td>BioLegend</td><td>124307</td><td>Durchflusszytometrie</td></tr><tr><td>APC-konjugiert MHCII</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-112-388</td><td>Durchflusszytometrie</td></tr><tr><td>APC-konjugiertes CD11c</td><td>BD Biosciences</td><td>340544</td><td>Durchflusszytometrie</td></tr><tr><td>Isotyp angepasst PE</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-091-835</td><td>Durchflusszytometrie-Isotyp</td></tr><tr><td>, angepasst an APC</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-091-836</td><td>Durchflusszytometrie</td></tr><tr><td>CFSE</td><td>BioLegend</td><td>423801</td><td>T-Zellproliferationsassay</td></tr><tr><td>Pan dendritische Zellisolationskit</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T-Zellproliferations-Assay</td></tr><tr><td>FcR-Blockierungsreagenz</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>Pan Dendritische Zellen Biotin-Antikörper-Cocktail</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T-Zell-Proliferations-Assay</td></tr><tr><td>Anti-Biotin MicroBeads</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-100-875</td><td>T-Zell-Proliferations-Assay</td></tr><tr><td>CD4+ T-Zell-Isolationskit</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-104-454</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>CD4+ T-Zell-Biotin-Antikörper-Cocktail</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-104-454</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>Anti-Biotin Mikrobeads</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-104-454</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>ACK-Lysepuffer</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>A1049201</td><td>BMDC-Differenzierung</td></tr><tr><td>1 ml Spritze</td><td>BD Biosciences</td><td>309626</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>3 ml Spritze</td><td>BD Biosciences</td><td>309588</td><td>BMDC-Differenzierung</td></tr><tr><td>25G-Nadel</td><td>BD Biosciences</td><td>309626</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>23G Nadel</td><td>BD Biosciences</td><td>309588</td><td>BMDC Differenzierung</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>A2058</td><td>T-Zell-Proliferations-Assay</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>15575020</td><td>T-Zell-Proliferations-Assay</td></tr><tr><td>LS-Säule</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-042-401</td><td>T-Zell-Proliferations-Assay</td></tr><tr><td>Vorab-Trennfilter</td><td>Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-095-823</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>Kollagenase D</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>11088858001</td><td>T-Zell-Proliferations-Assay</td></tr><tr><td>HBSS</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>14025076</td><td>T-Zell-Proliferations-Assay</td></tr><tr><td>für Ovalbumin (OVA)-Peptid 323&ndash; 329</td><td>Sigma Aldrich Inc.</td><td>O1641</td><td>T-Zell-Proliferationsassay</td></tr><tr><td>Maus IFN-& gamma TaqMan Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01168134_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Maus IL-12a TaqMan Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm00434165</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Maus IL-12 p70 DuoSet ELISA</td><td>R& D systems</td><td>DY419-05</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>Maus EDN-1 ELISA</td><td>RayBiotech</td><td>ELM-EDN1-1</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>TNF-&alpha; TaqMan Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm00443258</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Maus TNF-&alpha; Quantikine ELISA Kit</td><td>R& D systems</td><td>MTA00B</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>IL-6 TaqMan Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm00446190</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Maus IL-6 Quantikine ELISA Kit</td><td>R& D systems</td><td>M6000B</td><td>ELISA</td></tr><tr><td>IL-23a TaqMan Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01160011</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Maus IL-23 DuoSet ELISA</td><td>R& D systems</td><td>DY1887-05</td><td>ELISA,</td></tr><tr><td>IL-4 TaqMan-Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm99999154_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>IL-10 TaqMan-Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01288386_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>TGF-&beta; TaqMan Sonde</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Mm01178820_m1</td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>Anti-Häm-Oxygenase 1 Antikörper</td><td>Abcam</td><td>ab13248</td><td>Western Blot</td></tr><tr><td>Anti-&beta;-Aktin Antikörper</td><td>Abcam</td><td>ab8226</td><td>Western Blotting</td></tr><tr><td>CFX96 Touch Real-Time PCR Nachweissystem</td><td>Bio-Rad Inc.</td><td></td><td>qRT-PCR</td></tr><tr><td>BD FACSCalibur Zellanalysator</td><td>BD Biowissenschaften</td><td></td><td>Durchflusszytometrie</td></tr></tbody></table>

entwicklung und charakterisierung von dendritischen zellen murinen tolerogene

Development and Functional Characterization of Murine Tolerogenic Dendritic Cells

Das Immunsystem arbeitet durch ein enge Verhältnis zwischen koordinierenden Antworten gegen fremde Antigene und Pflege einen nicht interaktiver Status gegen selbstantigenen sowie Antigene von Kommensalen Organismen abgeleitet. Die Störung dieser immun Homöostase kann zu chronischen Entzündungen und zur Entwicklung von Autoimmunität führen. Dendritische Zellen (DCs) sind die professionellen Antigen-präsentierenden Zellen des angeborenen Immunsystems beteiligt bei der Aktivierung von naiven T-Zellen um Immunantworten gegen fremde Antigene zu initiieren. DCs können jedoch auch in TolDCs unterschieden werden, die dienen zur Wahrung und Förderung der T-Zell Toleranz und Effektorzellen zur Entwicklung entweder Autoimmun- oder chronischen Entzündungen Bedingungen zu unterdrücken. Die jüngste Weiterentwicklung in unserem Verständnis des TolDCs legt nahe, dass DC Toleranz durch modulieren ihre Differenzierung Bedingungen erreicht werden kann. Dieses Phänomen führte zu enormen Wachstum in den Entwicklungsländern TolDC Therapien für zahlreiche Erkrankungen des Immunsystems verursacht durch Immuntoleranz zu brechen. Erfolgreiches Studium in präklinischen Autoimmunität murinen Modellen haben weiter die Immuntherapie Nützlichkeit des TolDCs bei der Behandlung von Autoimmun-Erkrankungen bestätigt. Heute haben TolDCs ein viel versprechendes Instrument der Immuntherapie in der Klinik für Wiederherstellung der Immuntoleranz in verschiedenen Erkrankungen des Immunsystems durch gezielte pathogene autoimmune Reaktionen, wobei schützende Immunität intakt bleiben. Obwohl eine Reihe von Strategien von mehreren Labs induzieren TolDCs vorgeschlagen wurde, gibt es keine Einheitlichkeit bei der Charakterisierung des zellulären und funktionale Phänotyps dieser Zellen. Dieses Protokoll enthält eine schrittweise Anleitung für die Entwicklung von Knochenmark stammenden DCs in großer Zahl, eine einzigartige Methode zur Unterscheidung in TolDCs mit einem synthetischen Triterpenoid 2-cyano-3,12-dioxooleana-1,9-dien-28-oic Säure-Difluoro-Propyl-Amid (CDDO-DFPA), und die Techniken verwendet, um deren Phänotyp, einschließlich Analyse der wesentlichen Molekulare Signaturen des TolDCs bestätigen. Zu guter Letzt zeigen wir eine Methode, um TolDC Funktion zu beurteilen, indem Sie testen ihre immunsuppressive Antwort in Vitro und in Vivo in einem präklinischen Modell der multiplen Sklerose.

Die Differenzierung und die Auswahl von BMDCs:
Vorläuferzellen des Knochenmarks wurden komplette RPMI Medium im Beisein von GM-CSF und IL-4 in iDCs für 7 Tage (Abbildung 1A) differenzieren kultiviert. Am 1. Tag Zellen waren klein und zeigte sphärische Morphologie. Waschen mit PBS, bevor die Ersetzung der frisches Medium am Tag3 Zellen zur Form Cluster beigetragen und auch die Einwoh...

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zu entwickeln und tolerogene dendritischen Zellen (TolDCs) zu charakterisieren und deren immuntherapeutischen nutzen zu bewerten.

Entwicklung und Charakterisierung von dendritischen Zellen murinen Tolerogene

The immune system operates by maintaining a tight balance between coordinating responses against foreign antigens and maintaining an unresponsive state ...

Das übergeordnete Ziel dieses Protokolls ist die Entwicklung und Charakterisierung tolerogener dendritischer Zellen von Mäusen für die Bewertung ihres immuntherapeutischen Nutzens bei der Behandlung von Autoimmunerkrankungen wie Multipler Sklerose. Diese Methode kann dazu beitragen, Schlüsselfragen im Bereich der tolerogenen dendritischen Zelltherapie zu beantworten, indem sie eine standardisierte Methode für die Entwicklung und funktionelle Charakterisierung tolerogener dendritischer Zellen bereitstellt. Die Hauptvorteile dieser Technik bestehen darin, dass sie für die erfolgreiche Entwicklung tolerogener dendritischer Zellen und für funktionelle tolerogene Wirksamkeitstests von dendritischen Zellen verwendet werden kann.Die Auswirkungen dieser Technik sind erheblich. Sie erstrecken sich auf die Entwicklung einer zellulären Immuntherapie für Autoimmunerkrankungen, da tolerogene dendritische Zellen eine abnormale Immunantwort zurücksetzen können, während sie intrinsischen Immunregulationsmechanismen unterliegen. Nach der Entnahme der Hinterbeinknochen von acht bis 10 Wochen alten C57BL/6-Mäusen gemäß den Standardprotokollen verwenden Sie chirurgische Klingen und Pinzetten, um so viel Gewebe wie möglich zu präparieren, und legen Sie die sauberen Tibias und Femure in eine sechs Zentimeter große Kulturschale mit 70 % Ethanol.Schneiden Sie beide Enden der Knochen mit einer chirurgischen Klinge ab und spülen Sie mit einer Drei-Milliliter-Spritze, die mit einer 23-Gauge-Nadel ausgestattet ist, das Knochenmark vom ersten Knochen mit drei Millilitern PBS in ein konisches 15-Milliliter-Röhrchen. Wenn das gesamte Knochenmark gesammelt wurde, zentrifugieren Sie die Zellsuspension und suspendieren Sie das Pellet in einem Milliliter Lysionspuffer für rote Blutkörperchen. Stoppen Sie nach fünf Minuten die Lyse mit neun Millilitern PBS und sammeln Sie die Zellen durch Zentrifugation.Resuspendieren Sie das weiße Knochenmarkzellpellet in 10 Millilitern Kulturmedium und filtrieren Sie die Zellen durch ein 40-Mikrometer-Zellsieb in ein neues Röhrchen. Stellen Sie die Zellen auf eine Konzentration von eins mal 10 bis sechs Zellen pro Milliliter in Kulturmedium ein, das mit GM-CSF und IL-4 ergänzt ist. Und geben Sie drei Milliliter Zellen in jede Vertiefung einer 6-Well-Platte für eine dreitägige Inkubation bei 37 Grad Celsius und 5 % Kohlendioxid.Waschen Sie die Zellen in jeder Vertiefung am dritten Tag mit zwei Millilitern PBS und schwenken Sie sie leicht, um die nicht anhaftenden Zellen zu entfernen. Füttern Sie dann die Zellen mit drei Millilitern frischem Kulturmedium, das mit GM-CSF und IL-4 ergänzt ist, und geben Sie die Zellen wieder in den Zellkultur-Inkubator, indem Sie nach zwei Tagen drei weitere Milliliter frisches Kulturmedium, ergänzt mit Zytokinen, in jede Vertiefung geben. Legen Sie am siebten Tag der Kultur den Teller auf Eis.Nach 10 Minuten pipettieren Sie das Kulturmedium vorsichtig in jede Vertiefung, um die lose haftenden, unreifen dendritischen Zellen aus dem Knochenmark in Suspension zu entfernen. Anschließend werden die Zellen für die Entnahme durch Zentrifugation gepoolt und das Pellet für die anschließende nachgelagerte Analyse in das entsprechende Volumen an frischem Kulturmedium resuspendiert. Um die syngene T-Zellproliferation zu messen, verwenden Sie zunächst das hintere Ende eines Drei-Milliliter-Spritzenkolbens, um eine Milz von einer acht bis 10 Wochen alten OT2 C57BL/6-Maus durch ein 40-Mikrometer-Zellsieb zu zerdrücken und das Sieb mit PBS zu spülen.Pelletieren Sie die gepoolte Zellsuspension durch Zentrifugation und resuspendieren Sie das Pellet in 400 Mikrolitern magnetischem Zellsortierpuffer und 100 Mikrolitern CD4-positivem T-Zell-Biotin-Antikörper-Cocktail bei vier Grad Celsius für fünf Minuten. Am Ende der Inkubation geben Sie 300 Mikroliter Sortierpuffer und 200 Mikroliter Anti-Biotin-Kügelchen für eine 10-minütige Inkubation bei vier Grad Celsius in die Zellen und setzen Sie eine magnetische Bead-Säule und einen Vorabscheidungsfilter in einen Zelltrennmagneten geeigneter Größe ein. Spülen Sie die Säule mit drei Millilitern Sortierpuffer und geben Sie neun Milliliter Sortierpuffer in die Zellen.Nach der Zentrifugation resuspendieren Sie die Zelle und das Bead-Pellet in drei Millilitern Sortierpuffer und geben Sie die Zellsuspension in die Säule, um das CD4-positive T-Zell-Eluat in einem geeigneten Behälter zu sammeln. Waschen Sie dann die Säule mit weiteren drei Millilitern Sortierpuffer, fangen Sie den Durchfluss auf und legen Sie die T-Zellen auf Eis. Für die Isolierung von syngenen Milzpan-dendritischen Zellen legen Sie die Milz einer acht bis zehn Wochen alten C57BL/6-Maus in eine sechs Zentimeter lange Kulturschale und injizieren Sie mit einer Ein-Milliliter-Spritze, die mit einer 25-Gauge-Nadel ausgestattet ist, zweimal einen Milliliter Kollagenase D-Lösung in die Milz.Schneiden Sie anschließend die Milz mit einer Schere in kleine Stücke und inkubieren Sie die Stücke unter Schütteln bei Raumtemperatur 25 Minuten lang. Am Ende der Inkubation geben Sie 500 Mikroliter 0,5 molare EDTA in die Gewebeaufschlämmung für eine letzte fünfminütige Inkubation bei Raumtemperatur. Am Ende der Inkubation wird die Milzaufschlämmung mit dem hinteren Ende eines Drei-Milliliter-Spritzenkolbens durch ein 40-Mikrometer-Zellensieb zerdrückt und die Zellen durch Zentrifugation gesammelt.Resuspendieren Sie das Pellet in 350 Mikrolitern magnetischem Zellsortierpuffer, 50 Mikrolitern Fc-Rezeptor-Blockierungsreagenz und 100 Mikrolitern pan dendritischen Zell-Biotin-Antikörper-Cocktail für eine 10-minütige Inkubation bei vier Grad Celsius. Am Ende der Inkubation waschen Sie die Zellen in neun Millilitern Sortierpuffer und resuspendieren Sie das Pellet in 800 Mikrolitern frischem Sortierpuffer mit 200 Mikrolitern Anti-Biotin-Kügelchen bei vier Grad Celsius für 10 Minuten, um die dendritische Zellpopulation der Milzpfanne durch magnetische Kügelchensortierung zu isolieren, wie gerade gezeigt. Resuspendieren Sie die Zellen in einer Konzentration von zweimal 10 bis zum fünften dendritischen Zellen pro Milliliter und behandeln Sie sie eine Stunde lang bei 37 Grad Celsius mit der entsprechenden experimentellen Konzentration des interessierenden Triterpenoids.Während des letzten Drittels der Inkubation resuspendieren Sie die T-Zellen in einer Konzentration von eins mal 10 bis zum siebten Zellen pro Milliliter in einer mikromolaren CFSE für 15 Minuten bei 37 Grad Celsius. Waschen Sie dann die Zellen mit PBS und stellen Sie das Volumen auf eine Endkonzentration von zwei mal 10 bis zum sechsten T-Zellen pro Milliliter ein. 100 Mikroliter der behandelten dendritischen Zellen werden mit 100 Mikrolitern der CFSE-markierten CD4-positiven T-Zellen in jeder Vertiefung einer 96-Well-Platte co-kultiviert und 100 Nanogramm pro Milliliter OVA-Peptid 323-329 zu den Zellen hinzugefügt, wobei die CFSE-Intensität der T-Zellen durch Durchflusszytometrie nach zwei bis drei Tagen Inkubation gemessen wird.Knochenmarkvorläuferzellen, die in Vollmedium in Gegenwart von GM-CSF und IL-4 kultiviert wurden, weisen nach sechs Tagen in Kultur eine unreife dendritische Zellmorphologie auf. Die Analyse von unreifen dendritischen Zellen aus dem Knochenmark am siebten Tag zeigt die robuste Expression von CD11c, einem spezifischen dendritischen Zellmarker der Maus, durch die Mehrheit der kultivierten Zellen. Trotz des fehlenden Einflusses auf die Expression von LPS-induzierten Reifungsmarkern zeigen dendritische Zellen aus dem Knochenmark als Reaktion auf die CDDO-DFPA-Behandlung ein tolerogenes dendritisches Zellprofil, was sich in einer signifikanten Verringerung der proinflammatorischen Genexpression und einer erhöhten antiinflammatorischen Zytokin-Genexpression zeigt, selbst nach LPS-Stimulation.Darüber hinaus wird eine signifikante Verringerung der syngenen OVA-spezifischen T-Zellproliferation in in In-vitro-Cokulturen beobachtet, in denen OVAs von CDDO-DFPA-behandelten dendritischen Zellen präsentiert werden, und in vivo, was sich in einer verzögerten Progression zu einer experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis nach der Injektion von MOG-gepulsten CDDO-DFPA-behandelten dendritischen Zellen zeigt, was den tolerogenen Phänotyp dieser Zellen weiter bestätigt. Sobald diese Technik beherrscht ist, können tolerogene dendritische Zellen innerhalb von acht Tagen entwickelt werden, wenn die Experimente ordnungsgemäß durchgeführt werden. Bei diesem Verfahren ist es wichtig, sich daran zu erinnern, dass tolerogene dendritische Zellen nicht homogen sind.Ihr zellulärer Phänotyp hängt von der Art der Wirkstoffe ab, die zur Induktion ihrer Toleranz verwendet werden. Im Anschluss an dieses Verfahren können weitere Methoden, wie z.B. eine detaillierte durchflusszytometrische Analyse, durchgeführt werden, um zusätzliche Fragen zur tolerogenen dendritischen Zell-induzierten antigenspezifischen T-Zell-Energie oder Apoptose oder zur Fähigkeit der T-Zell-Differenzierung zu beantworten. Nach dem Anschauen dieses Videos sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man mit bekannten Wirkstoffen funktionell aktive tolerogene dendritische Zellen entwickelt oder wie man die Fähigkeit neuer Substanzen testet, diese Zellen zu induzieren.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Dieses Video zeigt das Verfahren zur Unterscheidung myeloide dendritische Zellen aus dem Knochenmark der Maus. Isolierung von Maus Schienbein und Oberschenkelknochen, und die Verarbeitung von Knochenmark nachgewiesen. Bilder zeigen Zellmorphologie vor und nach der Differenzierung und Figurengruppen Zellphänotyp und IL-12 Produktion nach der Reifung mit CpG gezeigt.

Kultur myeloide dendritische Zellen aus dem Knochenmark Vorstufen

Antigen-Präsentation in sekundären lymphatischen Organen durch dendritische Zellen ist entscheidend für die Einleitung des T-Zell-vermittelten adaptive Immunantwort. Hier zeigen wir die Kultur von Knochenmark abgeleiteten dendritischen Zellen, Aktivierung und Etikettierung für die 2-Photonen-Imaging.

Generierung von Knochenmark murinen dendritischen Zellen für den Einsatz in 2-Photonen-Imaging

Dieses Video zeigt die Erzeugung von unreifen, reifen und tolerogenen dendritischen Zellen (DCs) aus menschlichen Monozyten. Die Inkubation von Monozyten mit Wachstumsfaktoren und Zytokinen führt zur Produktion von unreifen DCs. Als Reaktion auf immunregulatorische Moleküle differenzieren sich unreife DCs in tolerogene und reife DCs.

Erzeugung unreifer, reifer und tolerogener dendritischer Zellen aus Monozyten

Dieses Video zeigt eine Methode zur Umwandlung von dendritischen Zellen (DCs) in tolerogene DCs (TolDCs) mit einem immunmodulatorischen pharmakologischen Wirkstoff. Diese Umwandlung wird durch die Bewertung der TolDC-Funktion durch ihre immunsuppressive Wirkung auf CD4+ T-Zellen bestätigt.

Wirkung eines immunmodulatorischen pharmakologischen Wirkstoffs auf die Interaktion zwischen dendritischen Zellen und CD4+ T-Zellen

Dieses Protokoll beschreibt experimentelle Verfahren, die die Differenzierung von dendritischen Zellen in plasmazytoiden Peyer-Plaques aus gemeinsamen dendritischen Vorläuferzellen zu bewerten, mit Hilfe von Techniken mit FACS-vermittelten Zellisolierung, hydrodynamische Gentransfer und Flow-Analyse von Immunteilmengen in Peyer-Plaques.

Die Beurteilung der Entwicklung der Murine Plasmazytoide dendritischen Zellen in Peyer-Patches mit Adoptiv Übertragung von hämatopoetischen Vorläuferzellen

In dieser Studie stellen wir ein in vitro Kultursystem vor, das effizient pDCs erzeugen kann, indem gemeinsame lymphoide Vorläuferzellen mit AC-6-Feederzellen in Gegenwart von Flt3-Liganden co-kultiviert werden.

In-vitro-Erzeugung von Murine Plasmazytoide dendritischen Zellen aus Lymphoid Gemeinsame Vorläufern mit der AC-6-Feeder-System

Unterschiedliche dendritische Zelluntergruppen existieren als seltene Populationen in lymphatischen Organen und sind daher für immunologische Experimente schwierig in ausreichender Anzahl und Reinheit zu isolieren. Hier beschreiben wir eine hocheffiziente Methode mit hoher Ausbeute zur Isolierung aller derzeit bekannten Hauptuntergruppen von dendritischen Milzzellen der Maus.

Eine effiziente und High-Yield-Methode zur Isolierung von Maus über dendritische Zellen Subsets

Unreife dendritische Zellen können selektiv in tolerogene oder reife dendritische Zellen differenziert werden, um das Gleichgewicht zwischen Immunität und Toleranz zu regulieren. Diese Arbeit stellt eine Möglichkeit vor, aus unreifen Monozyten-abgeleiteten dendritischen Zellen (moDCs) in vitro tolerogene und reife moDCs zu generieren, die sich in metabolischen Phänotypen unterscheiden.

Die Erzeugung von Unreife, Ältere und Tolerogene Dendritischen Zellen mit unterschiedlichen Metabolic Phänotypen

Hier stellen wir ein Protokoll für das Screening potenzieller Transkriptionsfaktoren zur Verfügung, die an der Entwicklung dendritischer Zellen (DC) beteiligt sind, unter Verwendung der lentiviralen Transduktion von shRNA, um stabile Knockdown-Zelllinien für die In-vitro-DC-Differenzierung zu erhalten.

Untersuchung der dendritischen Zellentwicklung durch kurze Haarnadel RNA-vermittelte Gen-Knockdown in einem hämatopoetischen Stamm und Vorläuferzelllinie In vitro

Hier stellen wir eine wirtschaftliche und effiziente Methode vor, um hochreine dendritische Knochenmarkzellen aus Mäusen nach 7-tägiger Kultur mit 10 ng/mL GM-CSF/IL-4 zu isolieren und zu erzeugen.

Wirtschaftliches und effizientes Protokoll zur Isolierung und Kultivierung von aus Knochenmark gewonnenen dendritischen Zellen aus Mäusen

Wir beschreiben ein Verfahren zur Bewertung der Fähigkeit pharmakologischer Wirkstoffe, tolerogene dendritische Zellen aus naiven Monozyten-abgeleiteten dendritischen Zellen in vitro zu generieren und ihre Wirksamkeit durch autologe regulatorische T-Zell-Generierung zu validieren.

Eine einfache und effiziente Methode zum Testen immunmodulatorischer Wirkstoffe zur Erzeugung tolerogener dendritischer Zellen aus humanen CD14+ -Monozyten

Erfahren Sie die Entwicklung und Charakterisierung tolerogener dendritischer Zellen aus C57BL/6-Mäusen für die Immuntherapie bei Autoimmunerkrankungen wie Multipler Sklerose. Diese standardisierte Methode ermöglicht reproduzierbare Ergebnisse.

Entwicklung und Charakterisierung von dendritischen Zellen murinen Tolerogene

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