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Fluoreszenzlebensdauer-Makro-Imager für biomedizinische Anwendungen
Fluoreszenzlebensdauer-Makro-Imager für biomedizinische Anwendungen
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JoVE Journal Biology
Fluorescence Lifetime Macro Imager for Biomedical Applications

Fluoreszenzlebensdauer-Makro-Imager für biomedizinische Anwendungen

Full Text
1,108 Views
06:01 min
April 7, 2023

DOI: 10.3791/64321-v

Rajannya Sen1, Alexander V. Zhdanov1, Ciaran Devoy2, Mark Tangney2, Liisa M. Hirvonen3, Andrei Nomerotski4, Dmitri B. Papkovsky1

1School of Biochemistry and Cell Biology,University College Cork, 2Cancer Research@UCC,University College Cork, 3Centre for Microscopy, Characterisation and Analysis (CMCA),The University of Western Australia, 4Physics Department,Brookhaven National Laboratory

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a new optical imager designed for macroscopic photoluminescence lifetime imaging, particularly useful in biological samples like live animal tissue. The protocol allows for detailed mapping of phosphorescence lifetime and oxygen concentration, which is crucial for understanding various biological processes.

Key Study Components

Research Area

  • Biological imaging
  • Phosphorescence lifetime analysis
  • Oxygen concentration measurement

Background

  • Macroscopic imaging is essential for studying complex biological samples.
  • Existing methods may not efficiently analyze long-decaying samples.
  • This research aims to enhance visualization techniques in live tissues.

Methods Used

  • Optical imaging with time-correlated single-photon counting (TCSPC) mode
  • Application on live animal tissues
  • Use of custom-designed imaging modules and data processing software

Main Results

  • Effective visualization of lifetime and oxygen distribution
  • Ability to generate phosphorescence lifetime images with high contrast
  • Successful application in observing hypoxic conditions in tissue

Conclusions

  • The study demonstrates an innovative imaging approach for biological research.
  • Potential applications for diagnosing and treating tissue hypoxia-related conditions.

Frequently Asked Questions

What is the main application of the optical imager?
It is used for the macroscopic imaging of phosphorescence lifetimes and oxygen concentrations in biological tissues.
How does the imaging module operate?
It operates in TCSPC mode for accurate lifetime distribution visualization.
Can this method be used on other models apart from animal tissues?
Currently, it is limited to animal models, but there is potential for broader applications.
What are the key technological components involved?
Key components include a photomultiplier tube, LEDs, and a compact imaging module.
What biological phenomena can this method help study?
It can aid in the study of conditions like cancer, stroke, and inflammation related to tissue hypoxia.
How is data processed after imaging?
Data is processed using custom software to analyze phosphorescence decay and generate images.
What is the significance of phosphorescence lifetime imaging?
It provides insights into the dynamics of oxygen levels in biological tissues, which is crucial for various research fields.

Dieser Artikel beschreibt die Verwendung eines neuen, schnellen optischen Bildgebungsgeräts für die makroskopische Photolumineszenz-Lebensdauer-Bildgebung von Proben mit langem Zerfall. Die Integrations-, Bildaufnahme- und Analyseverfahren werden ebenso beschrieben wie die Präparation und Charakterisierung der Sensormaterialien für die Bildgebung und die Anwendung des Imagers bei der Untersuchung biologischer Proben.

Unser Protokoll bietet eine detaillierte 2D-Kartierung der Phosphoreszenzlebensdauer und der Sauerstoffkonzentration in makroskopischen Objekten, insbesondere in lebendem tierischem Gewebe und ganzen Tieren, mit Hilfe spezieller Sonden und Sensormaterialien. Diese Informationen sind für viele Forschungsbereiche wichtig. Unser Protokoll verwendet ein integriertes und kompaktes Bildgebungsmodul, das im TCSPC-Modus arbeitet und eine einfache und genaue Visualisierung der Lebensdauer und Sauerstoffverteilung in komplexen biologischen Proben, wie z. B. lebendem Gewebe, ermöglicht.

Nehmen Sie den Cricket-Adapter und inspizieren Sie ihn von verschiedenen Seiten. Entfernen Sie den vorderseitigen C-Mount-Adapter, um den Photonis PP0360EF-Verstärker im Cricket zu zeigen, und setzen Sie dann den C-Mount-Adapter wieder ein. Entfernen Sie den vorderseitigen C-Mount-Adapter des Cricket und setzen Sie den 650 plus/minus 50 Nanometer Emissionsfilter ein.

Reparieren Sie es, indem Sie die C-Halterung wieder einsetzen. Verbinden Sie dann das TPX-Kameramodul mit drei Kameras über die Ringadapter mit der Rückseite des Cricket-Moduls. Verbinden Sie das Objektiv über den C-Mount-Adapter mit der Vorderseite des Cricket-Moduls.

Schließen Sie die LED an eine Stromversorgung und einen Impulsgeber an. Montieren Sie nun die superhelle 390-Nanometer-LED an einem Pfosten, der an einem Steckbrett in der Blackbox befestigt ist. Schalten Sie die LED ein und fokussieren Sie sie, um eine effektive und gleichmäßige Anregung der abgebildeten Probe zu gewährleisten.

Montieren Sie die Kamerabaugruppe oben auf der optischen Blackbox mit Blick nach unten in Richtung des Tisches, auf dem die Proben abgebildet werden sollen. Schließen Sie die Kamera und die LED an Zwei-Puls-Generatoren und ein Vierkanal-Oszilloskop an. Synchronisieren Sie mit den Einstellungen des Oszilloskops und der Impulsgeneratoren die an die Kamera gesendeten Impulse und die LED.

Verwenden Sie das spezielle Kabel und die Buchse am Cricket-Gerät, um den Verstärker an ein Standardnetzteil anzuschließen, und stellen Sie die Verstärkung auf 2,7 Volt ein. Positionieren Sie die Probe vor dem Kameraobjektiv. Schalten Sie dann die Kamera und alle elektrischen Module mit Ausnahme des Verstärkers ein.

Aktivieren Sie die SOFI-Software, um die Betriebsparameter wie Fokussierung und Probenausrichtung einzustellen. Stellen Sie in den Modulen die Bildbelichtung auf 0,01 Sekunden ein. Wählen Sie Unendliche Frames und stellen Sie den Pixelbetriebsmodus auf Zeit über Schwellenwert ein.

Gehen Sie dann zur Vorschau und wählen Sie Aktives Modul, um das Medipix/Timepix-Rahmenfenster zu öffnen. Passen Sie im nächsten Schritt nach dem Start der Aufnahme die Farbskala an und drehen Sie das Bild in die gewünschte Ausrichtung. Schalten Sie danach das Licht im Raum aus und schalten Sie den Verstärker ein.

Fokussieren Sie die Kameraoptik mit den Fokussierfunktionen des Objektivs und des Cricket-Adapters auf den Probentisch, um klare Bilder von Proben mit gutem Kontrast und guter Helligkeit zu erzeugen. Sobald der Fokus abgeschlossen ist, schließen Sie die SOFI-Software. Gehen Sie dann zum Terminal, führen Sie die Befehle der benutzerdefinierten Software aus, um die Rohdaten im Binärformat zu erfassen, und schließen Sie das Terminal.

Öffnen Sie ein neues Terminal, um die erfassten Daten zu verarbeiten. Laden Sie die Datendatei und führen Sie den Datenreduzierer aus. Analysieren Sie die Nachbearbeitungsdaten mit einem speziellen Programm, das in der Programmiersprache C geschrieben ist und die Daten in eine ICS-Bilddatei schreibt.

Öffnen Sie anschließend die ICS-Bilddateien mit der frei verfügbaren Software Time Resolved Imaging und verwenden Sie zwei Exponentialfunktionen, um die Phosphoreszenzzerfälle anzupassen. Öffnen Sie zum Schluss die Fitted. ICS-Bilddateien mit der verfügbaren Bildanalyse-Software.

Generieren Sie Bilder mit Phosphoreszenzlebensdauer mithilfe von Lookup-Tabellen und kodieren Sie sie in einer Pseudofarbskala. Verwenden Sie die Funktion Messen, um die durchschnittlichen Lebensdauerwerte für das gesamte Bild oder die relevanten Bereiche zu berechnen. Phosphoreszenzintensität und Phosphoreszenzlebensdauer bildgebende Mikroskopiebilder des Platin-Octaethylporphyrin-Farbstoff-Sensorspots im sauerstoffhaltigen und sauerstoffarmen Zustand werden gezeigt.

Stellen Sie sicher, dass der richtige Emissionsfilter im Cricket montiert ist und die richtige LED, Kabelverbindungen und Impulseinstellungen verwendet werden. Derzeit ist dieses Protokoll auf Tiermodelle beschränkt, kann aber potenziell zur Diagnose und Behandlung pathologischer Zustände im Zusammenhang mit Gewebehypoxie wie Krebs, Schlaganfall und Entzündungen angewendet werden.

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Biologie Heft 194

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