RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
German
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/66845-v
Angela C. Debruyne*1, Gabriele Ferrari*1, Hang Zhou*1, Nore Van Loon1, Nina Heymans1, Irina A. Okkelman1,2, Ruslan I. Dmitriev1,2
1Tissue Engineering and Biomaterials Group, Department of Human Structure and Repair, Faculty of Medicine and Health Sciences,Ghent University, 2Ghent Light Microscopy Core,Ghent University
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
In diesem Artikel beschreiben wir verschiedene Methoden zur Bildung von multizellulären Sphäroiden, um eine anschließende Multiparameter-Lebendzellmikroskopie durchzuführen. Unter Verwendung von Fluoreszenz-Lebensdauer-Bildgebungsmikroskopie (FLIM), zellulärer Autofluoreszenz, Färbefarbstoffen und Nanopartikeln wird der Ansatz zur Analyse des Zellstoffwechsels, der Hypoxie und des Zelltods bei lebenden dreidimensionalen (3D) Krebs- und Stammzell-abgeleiteten Sphäroiden demonstriert.
In dieser Arbeit stellen wir Methoden zur Sphäroidbildung vor und vergleichen sie, die zur Analyse des Zellstoffwechsels und der Sauerstoffverteilung mittels Lebendzellmikroskopie verwendet werden können. In den letzten Jahren wurde die Fluoreszenz-Lebensdauer-Bildgebungsmikroskopie ausgiebig eingesetzt, um metabolische Biomarker wie NADPH und FAD in lebenden Zellen zu untersuchen, und es wurden mehrere fluoreszierende Nanopartikel entwickelt, um solche Messungen mit der Bildgebung der Zell- und Gewebeoxygenierung zu multiplexen. Multizelluläre Sphäroide, Organoide und Organ-on-a-Chip können eine komplexe, in-vivo-ähnliche Mikroumgebung replizieren, wodurch der Bedarf an Tierversuchen minimiert wird.
Für die Herstellung von Sphäroiden zeigen wir verschiedene Bildungsmethoden, die von niedrigem bis hohem Durchsatz reichen können. Sie unterstreichen auch ihre optische Zugänglichkeit, die Kompatibilität mit einem Fluoreszenz-Lebensdauer-Bildgebungsmikroskop und die Möglichkeit, extrazelluläre Matrixkomponenten einzubeziehen. Auch wenn 3D-In-vitro-Modelle im Vergleich zu 2D-Kulturen einen besseren Kontext bieten, bleiben ihre hohe Variabilität, geringe Reproduzierbarkeit und unvollständige experimentelle Berichterstattung ein Problem.
Parameter wie die Sphäroidgröße, die Nährstoffzusammensetzung, die extrazelluläre Viskosität und sogar Methoden zur Sphäroidbildung können zu einer erhöhten zellulären Heterogenität führen. Mit diesem Protokoll wollen wir die Methoden zur Herstellung von Sphäroiden harmonisieren und standardisieren und dabei Schlüsselaspekte hervorheben, die für die lebenskontinuierliche und multiparametrische Analyse von Sphäroiden mittels FLIM-Mikroskopie wichtig sind.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
08:29
Related Videos
10.5K Views
07:42
Related Videos
6.9K Views
13:21
Related Videos
3.8K Views
06:40
Related Videos
3.9K Views
09:45
Related Videos
25.9K Views
13:10
Related Videos
13K Views
15:13
Related Videos
11.8K Views
15:10
Related Videos
11.9K Views
07:42
Related Videos
10.9K Views
10:19
Related Videos
6.9K Views