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DOI: 10.3791/64674-v
Hongmei Chen1, Yufeng Han1, Qingli Li2, Yong Zou1, Shuangshou Wang3, Xiaodong Jiao4
1School of Microelectronics and Data Science,Anhui University of Technology, 2Shanghai Key Laboratory of Multidimensional Information Processing,East China Normal University, 3School of Chemistry and Chemical Engineering,Anhui University of Technology, 4Department of Medical Oncology,Changzheng Hospital
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Der klinische Mikrofluidik-Chip ist eine wichtige biomedizinische Analysetechnik, die die Vorverarbeitung klinischer Patientenblutproben vereinfacht und zirkulierende Tumorzellen (CTCs) in situ auf dem Chip immunfluoreszent färbt, was den schnellen Nachweis und die Identifizierung eines einzelnen CTC ermöglicht.
Dieses Protokoll beschrieb eine Methode zur Zählung roter Tumorzellen und zur klinischen CTC-Isolierung. Zu Beginn werden die Tumorzellen MCF-7, MDA-MB-231 und HeLa in einem Zellkulturkolben einmal 10 bis 15 in einem Millimeter DMEM kultiviert, ergänzt mit 10 % fötalem Rinderserum und 1 % Penicillin-Streptomycin. Inkubieren Sie die Zellen bei 37 Grad Celsius mit 5% Kohlendioxid.
Wenn die Zelllinien als adhärente Monoschichten bis zu 95 % Konfluenz wachsen, lösen Sie sie zwei Minuten lang mit 0,25 %iger Trypsinlösung von der Kulturschale. Färben Sie die Tumorzellen durch Zugabe von drei Mikrolitern Calcein AM und stellen Sie die Schale für 30 Minuten in den Inkubator. Am Ende der Inkubation werden alle Zellen mit Trypsin verdaut.
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