Monitorización óptica y electrofisiológica simultánea de células neuronales en cortes de cerebro

0 visualizaciones • 4:08 min. • July 8th, 2025

Comience perfundiendo un líquido cefalorraquídeo artificial aireado o aCSF sobre una rejilla de malla en una cámara de perfusión.

Transfiera un corte de cerebro que contenga neuronas que expresan proteínas fluorescentes y fíjelo con un dispositivo con cable de platino.

Gire la rejilla de malla para alinearla.

Baje la sonda multicanal hacia el corte.

Ajuste el cubo de filtro para la visualización de proteínas fluorescentes.

Gire la rebanada para alinear la sonda.

Ajuste la altura de la sonda por debajo de la superficie del tejido.

Ahora, perfunde el aCSF y concéntrate en las neuronas marcadas con fluorescencia.

Usando un objetivo de alta potencia, concéntrese en el tejido y ajuste la luz de excitación.

Use un filtro de luz apropiado para observar la fluorescencia en las neuronas.

Ajuste la lente del objetivo para crear espacio para la pipeta de parche y aplique presión positiva.

A continuación, coloque la pipeta cerca de la neurona para formar un hoyuelo de membrana.

Finalmente, aplique una succión débil para crear un sello de membrana, seguido de una succión fuerte para romper la membrana y obtener registros eléctricos de la neurona objetivo.

Para colocar la sonda multicanal en el

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