Name: La aplicación de barreras impermeables combinadas con empapó las bolas Factor Candidato para el Estudio de señales inductivas en el polluelo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-17T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 4 s
Description: Aprende a usar barreras impermeables y bolas empapadas en ácido retinoico para estudiar señales inductivas en el desarrollo de extremidades en embriones de pollo. Este método permite analizar la expresión de genes como Tbx4, Fgf10 y Fgf8.

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Este trabajo fue financiado por la subvención del MRC MC.PC_13052.

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.

Se describe el uso de barreras impermeables para evitar la formación del brote en el embrión de pollo. Esta técnica tiene una serie de pasos críticos. Después de los experimentos preliminares, se encontró que las barreras en forma de bisagra utilizados en 9, 10 permanecen en su lugar en el embrión mucho mejor que las barreras rectas. El lado plano distal de la barrera se pega a la membrana vitelina y mantiene la barrera en su lugar (Figura 2C &#39;). La preparación cuidadosa de las barreras en forma de bisagra de hoja de aluminio como se describe en el paso de protocolo 1.6 es esencial para el éxito de la operación. Un segundo paso importante es asegurarse de que los huevos no se queden fuera de la incubadora durante demasiado tiempo después de ventanas y puesta en escena antes de operar sobre el embrión. En nuestra experiencia, los embriones sobreviven una operación mejor si están en o cerca de la temperatura de incubación, cuando la operación se lleva a cabo. Por lo tanto, las operaciones deben llevarse a cabo lo más rápidamente posible y volver a sellar los huevos prontaLy para asegurar una buena supervivencia. Muchos investigadores añaden una gota de antibióticos para el embrión después de la microcirugía antes de devolver los huevos a la incubadora. La presencia del líquido impidió que las barreras se peguen bien en posición. La adición de antibióticos también podría desalojar los granos después de la colocación. Se recomienda, por tanto, no usar antibióticos, operaciones rápidas y buena limpieza con instrumentos para evitar la infección. Limpiando los instrumentos con etanol al 70% después de cada etapa de una operación es esencial para evitar que los instrumentos se vuelvan pegajosas del contacto con la membrana vitelina que puede causar tanto las barreras o perlas se adhieran a una pinza (véase la etapa de protocolo 3.1.2.2). Ambas variedades de granos utilizados podrían caer fuera de lugar después de la operación. Cuando la posición de la barrera se comprobó el día siguiente que no era posible ver a través de la barrera para determinar si el cordón se mantuvo en su lugar o no. En los casos en que el cordón se había caído excrecencia de la yema del ala no fue rescatado ( <strong&gt; Tabla 1). Evitar la transferencia de líquido con el cordón cuando la implantación de los mismos significa que los granos se adhieren más fácilmente a la cara de corte de la LPM (ver protocolo 2.3.2.3). Finalmente asegurar que los embriones se reparan inmediatamente después de la cosecha es fundamental para un buen análisis de la expresión génica posterior (véase la etapa de protocolo 4.2). Este protocolo modifica experimentos publicados anteriormente que utilizan barreras para evitar la iniciación esbozo de la extremidad, define anchos óptimos específicos para las barreras e introduce la combinación de barrera y la colocación del grano seguido por análisis de la expresión génica. Encontramos el uso de papel de aluminio convencional, que es barato y fácilmente disponible en todos los laboratorios, produce resultados iguales a los que anteriormente se utilizan lámina de tantalio. La lámina se puede dejar en el embrión cuando se lleva a cabo la hibridación in situ (Figura 2C &#39;) pero por lo general eliminar si más de un embrión se está procesando para evitar que los bordes afilados de la lámina dañar embriones. PAGestudios Ilot demostraron que el ancho de las barreras región de la pierna es particularmente importante. Inicialmente las barreras de Code eran demasiado cortos y el crecimiento del brote de la pierna no se impidió. 1,2-1,3 mm es el ancho óptimo para una barrera para bloquear consecuencia del brote de la pierna por completo. Las barreras de las alas más estrechas que se puede colocar con precisión para evitar la extensión del brote dan las mejores tasas de supervivencia. Esto puede ser tan estrecha como 0,5-0,7 mm. Sin embargo, las barreras que son un poco más amplio son más propensos a resultar en un bloqueo completo del ala consecuencia brote debido a que permiten un poco de inexactitud de colocación (utilizamos 0,7-1 mm). La evitación de los vasos sanguíneos al hacer la incisión es crítico para las barreras a nivel de la yema del ala. barreras semipermeables previamente se han utilizado para dividir en dos la yema polluelo extremidad. Maccabe y Parker, 1976 y Summerbell de 1979 tanto filtros utilizados 0,45 micras y 0,8 micras de tamaño de poro, respectivamente, 16, 17. Se informó de que las señales difusibles podrían pasar a través de los poros de los filtros y que laslos resultados obtenidos, utilizando barreras semipermeables estaban a medio camino entre un esbozo de la extremidad con ninguna barrera presente y uno con una barrera de lámina impermeable tantalio. Este protocolo podría ser adaptado para utilizar barreras semipermeables de diferente tamaño de poro para diferenciar señales candidatas basadas en el tamaño o para modificar la dinámica de la difusión de la señal. Este protocolo tiene varias limitaciones asociadas principalmente con el modelo mismo organismo. Tales técnicas podrían utilizarse para sondar más preguntas en desarrollo de las extremidades y también otras preguntas de la embriogénesis de vertebrados. Una condición es que el órgano / área en cuestión debe estar desarrollando cuando el embrión de pollo se puede acceder a la intervención. La presencia de grandes vasos sanguíneos en el área donde una barrera tiene que ser colocado hace que la colocación de barrera más tarde de la etapa 13 o 14 de un desafío técnico. Si se cortan los vasos sanguíneos grandes durante la colocación de barrera que esto puede causar la mortalidad embrionaria. Nuestra investigación de cuando los factores de transcripción TBX5 y Tbx4 son inducidas por primera vez en la LPM estaba limitado por la etapa más temprana a la que podríamos colocar una barrera que más tarde terminan opuesta, ya sea el ala o un bastoncillo de la pierna, respectivamente. Podría ser esclarecedor para intentar bloquear Tbx inducción de genes en las primeras etapas, más cerca de la gastrulación. La primera barrera se podría colocar en la región de ala presunto fue con éxito la etapa 8 y en la etapa región de la pierna 10. Este protocolo no es probablemente adecuada para el estudio de la expresión génica más allá de las etapas yema de la extremidad debido a un rápido crecimiento posterior desplazaría la barrera y resultados se referirá exclusivamente a la posición inicial de la barrera. Habiendo relacionadas las limitaciones del embrión de pollo en este contexto, sus ventajas sobre otros organismos modelo de vertebrados son muchas. El embrión de pollo es un modelo animal muy adecuado para este tipo de intervención física en un embrión de vertebrados. Los embriones son relativamente grandes y son fácilmente accesibles through la cáscara del huevo. Uno puede regresar al embrión para la experimentación adicional (por ejemplo, la eliminación de un cordón 18 o incluso una barrera) o para comprobar el progreso por la simple eliminación de la ventana de la cinta. No es posible alcance para incluir imágenes en vivo o imágenes de lapso de tiempo. Se describe un método de huevos de gallina de ventanas que es especialmente adecuado para operar con embriones en fase inicial. En el caso de los estudios de las extremidades es muy importante y útil que hay una extremidad contralateral control para cada experimento que sirve como un control interno ideal para cada réplica biológica. La combinación del uso de barreras impermeables para prevenir desarrollo de la extremidad y los granos empapado en moléculas de señalización no ha sido reportado antes. Nuestro análisis de la expresión de ARNm después de tales intervenciones es también novedosa. Estas técnicas nos han permitido diseccionar el difícil problema de cuando el miembro de transcripción específico factores Tbx5 y Tbx4 se inducen en la LPM y tambiénpara demostrar que más tarde, antes de la iniciación del capullo de las extremidades, la presencia de estos genes TBX en la LPM no es suficiente para la activación de la transcripción Fgf10 y el inicio del crecimiento de yema de la extremidad. Figuras 2G, 2D y 2E ilustran bien estos hallazgos. La ausencia de expresión Tbx4 después de la inserción de una barrera en la etapa 10 en la figura 2G está en marcado contraste con su presencia en 2D y 2E después de la inserción de barrera en la etapa 15, después de la inducción de Tbx4. La implantación de las perlas de la AR empapados facilitó el rescate de iniciación esbozo de la extremidad después de la inserción de barrera y por lo que apunta a la AR de los somitas siendo esencial en la LPM antes consecuencia esbozo del miembro puede comenzar. Tales técnicas podrían usarse para resolver más preguntas en desarrollo de las extremidades, sino también a otras preguntas de la embriogénesis de vertebrados. Las áreas del cerebro, los ojos y el tronco es probable que sean adecuados.

embriólogos clásicos tradicionalmente se emplean técnicas físicas para interrogar a los mecanismos que controlan el desarrollo embrionario. En los años 1960 y 1970, los investigadores desarrollaron técnicas que utilizan barreras impermeables insertados entre los tejidos del embrión en desarrollo para demostrar la importancia de las señales inductivas durante la embriogénesis. Nuestro interés se centra en el desarrollo de extremidades de los vertebrados y, en particular, qué eventos preceden consecuencia primordio de la extremidad. Por ejemplo, la inserción de una barrera puede evitar que la extremidad del brote consecuencia que se produzcan en un lado del embrión de pollo, mientras que lo que le permite proceder normalmente en el lado contralateral, no operado. Los materiales usados ​​para hacer estas barreras variada; por ejemplo, placas de mica 1 y 2 de tantalio de aluminio. Estas barreras separan eficazmente el lateral mesodermo de la placa (LPM), de la que las formas yema de la extremidad, de los somitas forman a partir del mesodermo paraxial. técnicas de injerto quirúrgico demuestran que la estrecha asociación ingenioh la somitas es esencial si la iniciación primordio de la extremidad que va a ocurrir en el LPM 3 4. En los años 80 y 90 los biólogos del desarrollo descubrieron difusible moléculas que son esenciales en el control de los procesos de desarrollo de señalización. Beads empapados con estas moléculas de señalización pueden ser implantados en regiones específicas del embrión y producen alteraciones en el desarrollo embrionario. Por ejemplo, el ácido retinoico (RA) ocupado por los granos de intercambio iónico se libera durante un periodo de 24 horas cuando se implanta en un embrión de pollo y puede producir la duplicación de imagen especular de los dígitos 5. Los granos de acrílico de heparina que contienen la proteína FGF pueden iniciar extremidad del brote consecuencia de la LPM intramiembro 6. Más recientemente ratón y pescado genética han tomado el estudio de la iniciación de los vertebrados extremidad en una nueva era (revisado en 7). Existe buena evidencia de que la AR presente en los somitas antes de iniciar el primordio de la extremidad es la señal difusible esencial requerido por el LPM para iniciar la brotación extremidad. Quisimos aprovechar la accesibilidad y la robustez experimental del embrión de pollo para diseccionar el efecto de la implantación de barrera sobre la expresión génica en el LPM alrededor del momento de la iniciación primordio de la extremidad. Una adaptación de la novela de nuestro método es combinar una barrera que bloquea las señales de los tejidos axiales con la colocación de talón lateral para la barrera a factores endógenos candidatos suministro exógenamente que han sido bloqueados por la barrera. Los protocolos siguientes son las desarrolladas para desentrañar los mecanismos de inducción esbozo del miembro y la iniciación. El estudio de la iniciación esbozo del miembro que consiste en utilizar embriones en etapa temprana. Muchos de los huevos de pollo ventana investigadores mediante la eliminación de primera parte de la albúmina a través del saco de aire con una aguja hipodérmica. El embrión, que se encuentra en la parte superior de la yema de huevo, entonces estar más baja en el huevo. Esto es una ventaja para algunas técnicas, tales como la electroporación, pero puede ser una desventaja si se desea una manipulación quirúrgica del embrión.Nos encontramos teniendo el embrión lo más cerca posible de la abertura en el huevo como sea posible es una ventaja. Aún quedan preguntas con respecto a las señales que controlan la inducción esbozo del miembro de vertebrados e iniciación y los protocolos siguientes son adecuados para abordarlos. Somos los primeros en desarrollar un protocolo para la inserción de las barreras para evitar que la extremidad de pollo brote consecuencia en una etapa anterior a la etapa 12 8. Las versiones modificadas de estos protocolos también podrían utilizarse para abordar otras preguntas sobre el origen y la sincronización de las señales inductivas donde un tejido inducción accesible se encuentra adyacente al que se indujo el primordio. Siempre que la región del embrión es accesible en la etapa de desarrollo correspondiente, a continuación, una barrera podría ser colocado entre los dos tejidos y los consiguientes cambios en el desarrollo estudiados. Los ejemplos pueden ser encontrados en el desarrollo del cerebro, la extensión del eje y el desarrollo, posiblemente, de órganos tales como el hígado o el riñón inducción.

<table><tbody><tr><td>Pinzas de relojería Dumont n.º 5, x2</td><td>Fine Science Tools&nbsp; www.finescience.de</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de relojería Dumont n.º 4, x2</td><td>Fine Science Tools&nbsp; www.finescience.de</td><td>11241-30</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas fuertes Dumont, tipo AA</td><td>Fine Science Tools&nbsp; www.finescience.de</td><td>11210-10</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras curvas con hojas de 2,5 cm de largo</td><td>Herramientas de Bellas Ciencias&nbsp; www.finescience.de</td><td>14061-11</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas curvas de punta roma, extremos de aproximadamente 0,5 &nbsp; cm de largo</td><td>Fine Science Tools</td><td>www.finescience.de 11065-07</td><td></td></tr><tr><td>Pasador de acero, 0,2 mm de ancho</td><td>Fine Science Tools&nbsp;</td><td>www.finescience.de 26002-20</td><td></td></tr><tr><td>Piedra de afilar, cuadrada</td><td>Fine Science Tools&nbsp; www.finescience.de</td><td>29008-01</td><td></td></tr><tr><td>Aceite</td><td></td><td></td><td></td>mineral</tr><tr><td>Portaagujas</td><td>Fine Science Tools&nbsp; www.finescience.de</td><td>26016-12</td><td></td></tr><tr><td>Cinta transparente, 50 mm x 66 mm; m</td><td>www.5staroffice.com</td><td>295985</td><td></td></tr><tr><td>proteína</td><td></td><td></td> FGF4 <td>Un regalo de Cliff Tabin.</td></tr><tr><td>ácido trans-retinoico Sigma</td><td>www.sigmaaldrich.com</td><td>R2625-50MG</td><td>Recuerde proteger de la luz.</td></tr><tr><td>BMS 493</td><td>Sigma www.sigmaaldrich.com</td><td>B6688-5MG</td><td></td></tr><tr><td>Hoja de bisturí n.º 15</td><td>www.swann-morton.com</td><td>n.º de gato 0105</td><td></td></tr><tr><td>Affi-Gel Blue, gel de cromatografía de afinidad</td><td>Bio-Rad www.bio-rad.com</td><td>153-7301</td><td>Perlas para el suministro de proteínas.</td></tr><tr><td>AG1-X2 Resina de intercambio iónico</td><td>Bio-Rad www.bio-rad.com</td><td>140-1251</td><td>Perlas para el suministro de RA o BMS 493.</td></tr><tr><td>Incubadora de huevos</td><td>Memmert www.hce-uk.com</td><td>LAB128</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehído (PFA)</td><td>Sigma www.sigmaaldrich.com</td><td>P6148-1KG</td><td>Nocivo, irritante, corrosivo. Maneje el polvo en la campana extractora con ropa protectora completa.</td></tr><tr><td>Etanol</td><td>Sigma</td><td>www.sigmaaldrich.com 32221-2.5L</td><td></td></tr><tr><td>DMEM, alta glucosa</td><td>Gibco www.thermofisher.com</td><td>41965-039</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Dimetilsulfóxido (DMSO)</td>Microscopio binocular <td>Fisher Scientific</td><td>webshop.fishersci.com D/4121/PB08</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Leica www.leica-microsystems.com</td><td>MZ6</td><td>reemplazado por M60</td></tr><tr><td>Huevos de gallina</td><td>Henry Stewart & Co Ltd sales@medeggs.com</td><td></td><td>Huevos marrones</td></tr></tbody></table>

la aplicación de barreras impermeables combinadas con empapó las bolas factor candidato para el estudio de señales inductivas en el polluelo

Application of Impermeable Barriers Combined with Candidate Factor Soaked Beads to Study Inductive Signals in the Chick

El embrión de pollo proporciona un modelo excelente de vertebrados que se puede utilizar para diseccionar preguntas de desarrollo en una manera directa. Su accesibilidad y la robustez después de la intervención quirúrgica son las fortalezas clave experimentales. Placas de mica fueron las primeras barreras utilizadas para prevenir polluelo extremidad iniciación del capullo 1. Se describen protocolos que utilizan papel de aluminio como barrera impermeable al brote del ala o la inducción del brote o la pierna y la iniciación. Combinamos esta técnica con la colocación lateral del talón para la barrera que forma exógena factores endógenos candidatos de alimentación que han sido bloqueados por la barrera. Los resultados se analizaron mediante hibridación in situ de la expresión génica posterior. Nuestra atención se centra en la función de señalización del ácido retinoico en la inducción y posterior inicio de un primer plano de embrión de pollo y las extremidades traseras. Utilizamos BMS 493 (un agonista inverso de los receptores del ácido retinoico (RAR)) perlas empapadas implantados en la placa lateral mesodermo (LPM) para imitar el efecto de una barraportador colocado entre los somitas (una fuente de ácido retinoico (RA)) y la LPM de la que crecen yemas de las extremidades. Las versiones modificadas de estos protocolos también podrían utilizarse para abordar otras preguntas sobre el origen y la sincronización de las señales inductivas. Siempre que la región del embrión de pollo es accesible en la etapa de desarrollo correspondiente, una barrera podría ser colocado entre los dos tejidos y los consiguientes cambios en el desarrollo estudiados. Los ejemplos pueden ser encontrados en el cerebro, la extensión del eje en desarrollo y en el desarrollo de órganos, como el hígado o el riñón inducción.

El protocolo detallado anteriormente se describen los métodos empleados en Nishimoto y col. , 2015. El documento estudia la inducción esbozo del miembro y la iniciación tanto en la proa y las extremidades posteriores del embrión de pollo. Resultados después de la inserción de barreras impermeables para evitar la proliferación de la yema de la extremidad anterior han sido publicados anteriormente 1, 2, 9 pero no ha habido únicas barreras que impiden que describen un estudio de la pierna iniciación del capullo 1. Los datos de los miembros posteriores de Nishimoto y col. De 2015 se presentan aquí como representante resultados del estudio de la expresión de ARNm después de la inserción de barrera. Expresión Tbx4 en el LPM no es suficiente para iniciar miembro posterior Consecuencia: Las Figuras 2B y C (Tabla 2) muestran que la inserción de barrera en la etapa 15 (Figura 2 A) (véase el protocolo 3.2) conduce a los dos Fgf10y la expresión Fgf8 estar ausente en la región de brote de la pierna (denotado por soporte) en el lado derecho operado. Comparar con el lado no operado izquierda. Sin embargo, la expresión Tbx4 se observa tanto en la etapa 19 y la etapa 23 en el lado operado (Figura 2D y E). Llegamos a la conclusión de que la expresión Tbx4 sí sola no es suficiente para iniciar la extensión de las extremidades posteriores de la LPM. Otros estudios en el pollo han sugerido que la expresión de genes Tbx es suficiente para iniciar la formación de brotes extremidad anterior 12, 13. Figura 2C &#39;se incluye para ilustrar cómo una barrera parece que va incrustada en la región de la pierna del puesto de embriones fijación. En la mayoría de los casos, las barreras se eliminaron antes de la hibridación in situ (protocolo 4.3). RA de los somitas es esencial en la LPM antes Fgf10 induce la extremidad del brote Outgrowth: La Figura 3A es un esquema que representa la adición de un distal del grano RA empapada a una barrera insertado en la etapa 15 (protocolo 3.2.1.3). Después de esta operación de extensión yema del miembro (indicada por un asterisco) se observa en el lado derecho operado y Tbx4, Fgf10 y Fgf8 se expresan en el brote como en el lado izquierdo de control (Figura 3B, C y D, Tabla 2) . Por lo tanto la adición de RA a la LPM supera el efecto de la barrera y de las extremidades iniciación del capullo producto. Se concluye que en la AR desarrollo normal de los somitas es esencial en la LPM antes de excrecencia de yema de la extremidad puede ser iniciado. Las yemas de las extremidades posteriores resultantes son generalmente más pequeños que los del lado de control. Esto puede ser debido a la dosis de RA en el LPM ser no es equivalente a la situación de tipo salvaje. Si la dosis es demasiado alta RA apical ectodérmica la cresta (AER) se puede acortar y brotes pequeños resultaría14, 15. Para confirmar que RA (de los somitas) en el LPM es necesaria para la iniciación del capullo extremidad normal un agonista inverso de RAR, BMS 493, se utilizó. Beads se implantan en la región de la pierna LPM en la etapa 15 (véase el protocolo 3.2.1.4) (Figura 3E). Expresión Fgf10 es downregulated después de la aplicación de BMS 493 perlas en el LPM, resultando en brotes miembros posteriores más pequeños en comparación con el lado de control (Figura 3F; Tabla 3). Perlas de control de DMSO no causan estos defectos (Figuras 3G y 3H, Tabla 3). Los defectos observados después de la aplicación BMS 493 son más leves que los inducidos por una operación de barrera; es decir, Fgf10 todavía se expresó y se forman yemas de las extremidades. Esto es probable que sea debido a que los efectos de BMS 493 están restringidos a nivel local alrededor de los granos y pueden no ser capaces de antagonizar toda la RA producido por axiAL tejidos. Las señales principios axiales Especificar las células LPM que expresaría más tarde Tbx4: Hemos probado cuando el LPM adquiere su capacidad de expresar Tbx4 en la región que forma prospectiva la pierna. La etapa temprana en la cual una barrera que se puede insertar posteriormente bloquear la pierna brote consecuencia, es la etapa 10. Somos los primeros en desarrollar un protocolo para insertar barreras en las etapas anteriores a la etapa 12. Barreras insertados entre el mesodermo paraxial y la pierna presuntiva LPM en la etapa 10 (ver protocolo 3.4) la formación de yemas bloque de la pierna y la expresión de Tbx4 en el LPM formando pierna-(Figuras 2F y 2G, la Tabla 2), lo que sugiere que se requiere una señal a partir de tejidos axiales en la etapa 10 para la expresión posterior de Tbx4 en LPM miembro posterior. Comparar este resultado con las figuras 2D y E, donde inserción posterior barrera permite la expresión Tbx4que se establezcan. Por otra parte, hemos probado si esta señal podría ser axial AR observando si el agonista inverso de RAR reduce la expresión Tbx4. Un BMS 493 cordón colocado en la extremidad posterior LPM en la etapa 10 (véase el protocolo 3.4.1.3) disminuir la expresión de Tbx4 (Figuras 2H y 2I), mientras que los granos de control empapados en DMSO no afectan a la expresión Tbx4 (figuras 2J y 2K). En conjunto, estos resultados apoyan un modelo que una señal de RA a partir de tejidos axiales regula la inducción de la extremidad mediante la regulación positiva Tbx4 en el LPM miembro posterior 7. Muerte post-operatorio: Las tablas 1, 2 y 3 se dan detalles de los resultados experimentales, incluyendo el número de embriones de pollo que murió posterior operación y antes de la cosecha. Algunas de las muertes son de esperar después de la microcirugía de esta naturaleza. El número moribundos se puede mantener<html> a un mínimo, asegurándose de que los instrumentos están limpias, el agujero en el huevo es el tamaño mínimo necesario, que los embriones se dejan sin la protección de la junta de cinta adhesiva durante un tiempo mínimo y, en relación con este último punto que la operación se lleva a cabo lo más rápidamente posible. Ninguna de estas operaciones son mucho tiempo, pero las operaciones en los granos y las barreras tomar un poco más de tiempo. A pesar de estas medidas, las operaciones realizadas en las primeras etapas y los de la región del ala son más propensos a causar la muerte. Hay grandes vasos sanguíneos alrededor de las regiones de formación de las extremidades y la rotura accidental de estos vasos pueden conducir a la muerte debido a la pérdida de sangre. Nos encontramos con que los huevos se abrieron en la etapa 8 o 9, cuyos embriones no han sido operados, a menudo mueren por el día siguiente. Por lo tanto, la única solución a estos problemas es llevar a cabo un gran número de experimentos. d / 54618 / 54618fig2.jpg &quot;/&gt; Figura 2. Marcador cambios de expresión génica siguientes Barrera o perla de inserción al presunto nivel de las patas. (A) Posición esquema que muestra barrera (línea verde) a nivel de la pierna presuntiva (somitas 26-32) en un embrión en la etapa 15. (B - E y G) Análisis deseo en embriones operados. La región de la pierna se describe (entre paréntesis). (B) la expresión Fgf10 está ausente en el LPM operado, pero la expresión robusta se detecta en el brote izquierda. (C) la expresión Fgf8 está ausente en el lado operado, lo que sugiere que no hay AER. (C &#39;) del mismo embrión antes de eliminar la barrera. (D) Tbx4 se expresa en la LPM en el mismo nivel rostro-caudal como la clavija de control. (E) la expresión Tbx4 se mantiene en la región de la pierna derecha pesar de la ausencia de crecimiento de la extremidad. (F) Diagrama esquemático de una etapa<html> 10 de embrión de pollo que muestra la posición de barrera (línea verde) a nivel de la pierna presuntiva. (G) la expresión Tbx4 está ausente en el derecho operado LPM (soporte). (H) Esquema de un embrión de pollo etapa 10, que muestra la posición 493 BMS talón (círculo de color púrpura) a nivel de la pierna presuntiva. (I) expresión Tbx4 es downregulated en el lado derecho operado después del tratamiento con BMS 493. (J) Diagrama esquemático de un embrión de pollo etapa 10 que muestra el control de posición DMSO talón (círculo gris). (K) Tbx4 se expresa en el lado derecho operado en un nivel similar a la de la parte izquierda de control después del tratamiento con DMSO solo. Esta cifra ha sido modificado a partir de 7. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54618/54618fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> d / 54618 / 54618fig3.jpg &quot;/&gt; Figura 3. Ausencia RA rescates extremidades del brote causado por Barrera de inserción y es esencial en el LPM Antes de la pierna Bud excrecencia. (A) Diagrama esquemático que indica la posición de barrera (línea verde) a nivel de la pierna presuntiva (somitas 26-32) y un cordón empapado-RA (círculo rojo). (B - D) RA rescates consecuencia del brote de la pierna (que se muestra con un asterisco). (B) la expresión Tbx4 está presente en la yema pierna rescatado similar al lado no operado. (C) Fgf10 se expresa en la pierna rescatado yema similar al lado no operado. (D) Fgf8 se expresa en la AER de la yema pierna derecha rescatado. (E) Esquema que indica donde se colocaron BMS 493 granos (círculos púrpuras) en el LPM pierna presuntivo de la etapa 15 embriones. (F) Expresión Fgf10 es downregulated en el lado derecho operado y el brote de la pierna es pequeño BMS 49 siguiente3 tratamiento. Perlas están marcados con asterisco. (G) esquemática similar a (E), que indica la posición de control de perlas de DMSO (círculos grises). (H) perlas de DMSO (marcadas con asteriscos) no afectaron la expresión Fgf10 o tamaño de la cabeza de la pierna. Esta cifra ha sido modificado a partir de 7. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54618/54618fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Etapa barrera colocada (+ perla) * </td><td> número operado </td><td> Ala falta ** </td><td> Ala presentes ** </td><td> número muertos </td></tr><tr><td> etapa 12-14 </td><td> 40 </td><td> 24 </td><td> 1 </td><td> 15 </td></tr><tr><td> etapa 8/9 </td><td> sesenta y cinco </td><td> 23 </td><td> 0 </td><td> 42 </td></tr><tr><td> Etapa 12-13 (FGF4 perla) </td><td> 41 </td><td> 7 (falta de talón) </td><td> 17 </td><td> 17 </td></tr><tr><td> Etapa 12-13 (RA perla) </td><td> 75 </td><td> 9 (que falta perla) </td><td> 32 </td><td> 34 </td></tr><tr><td> Etapa 13 (bola de control) </td><td> 5 </td><td> 3 </td><td> 0 </td><td> 2 </td></tr><tr><td colspan="5"> * Barreras de lámina 0,7-1 mm colocados entre 15-20 somitas y el mesodermo de la placa lateral. 0,35 mg / ml de perlas FGF4. 0,05 a 0,1 mg / ml de perlas RA. </td></tr><tr><td colspan="5"> microesfera de control DMSO. </td></tr><tr><td colspan="5"> ** Los embriones de pollo etapas fijas 21-23 </td></tr></tbody></table> Tabla 1. Ala Nivel de Barrera y del grano Experimento resultados. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Etapa barrera colocada (+ perla) * </td&gt; <td> número operado </td><td> Pata faltante ** </td><td> Pierna presente ** </td><td> número muertos </td></tr><tr><td> etapa 12-15 </td><td> 43 </td><td> 39 </td><td> 0 </td><td> 4 </td></tr><tr><td> etapa 10/11 </td><td> 23 </td><td> dieciséis </td><td> 0 </td><td> 7 </td></tr><tr><td> Etapa 15 (perla FGF4) </td><td> 8 </td><td> 0 </td><td> 5 </td><td> 3 </td></tr><tr><td> Etapa 15 (perla RA) </td><td> 18 </td><td> 0 </td><td> 18 </td><td> 0 </td></tr><tr><td colspan="5"> * Barreras de lámina 0,7-1,3 mm colocados entre 26-32 somitas y el mesodermo de la placa lateral. 0,35 mg / ml de perlas FGF4. 0,05 a 0,1 mg / ml de perlas RA. </td></tr><tr><td colspan="5"> ** Los embriones de pollo etapas fijas 18-24 </td></tr></tbody></table> Tabla 2. Nivel de Barrera de la pierna y el talón Experimento resultados. <table border = &quot;1&quot; fo: keep-together.within-page = &quot;1&quot; fo: keep-con-next.within-page = &quot;always&quot;&gt; <tbody><tr><td> número operado </td><td> Pierna brote pequeña </td><td> Pierna brote un poco pequeña </td><td> Pierna tamaño normal del brote </td><td> número muertos </td></tr><tr><td> BMS 493 perlas * </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 15 </td><td> 12 </td><td> 3 </td><td> 0 </td><td> 0 </td></tr><tr><td> perlas de DMSO ** </td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 12 </td><td> 0 </td><td> 3 </td><td> 9 </td><td> 0 </td></tr><tr><td colspan="5"> * 2-3 empapó las bolas en 5 mg / ml BMS 493 colocados en la derecha del escenario 14-15 LPM a nivel de la pierna. </td></tr><tr><td colspan="5"> ** 2-3 perlas empapadas en DMSO solo colocan en el derecho de la etapa 15 LPM a nivel de la pierna. </td></tr><tr><td colspan="5"> Los embriones de pollo fijados en las etapas 17-19. </td></tr></tbody></table> Tabla 3. Nivel de la pierna BMS 493 del grano Experimento resultados.

Se describen los protocolos que utilizan barreras impermeables para bloquear los eventos de inducción entre los tejidos del eje principal del cuerpo y el flanco en el embrión de pollo necesarios para la formación de las extremidades. Las perlas empapadas en señales inductivas candidatas se utilizan para superar el efecto de la colocación de barreras y el análisis de la expresión génica lo confirma.

La aplicación de barreras impermeables combinadas con empapó las bolas Factor Candidato para el Estudio de señales inductivas en el polluelo

The chick embryo provides a superb vertebrate model that can be used to dissect developmental questions in a direct way. Its accessibility and robustness ...

El objetivo de esta intervención quirúrgica es esclarecer los mecanismos de inducción de las extremidades en el embrión de pollo impidiendo que las moléculas señalizadoras difundan desde los tejidos mediales hacia las células del mesodermo de la placa lateral y estudiando su efecto sobre la expresión génica. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en biología del desarrollo, como por ejemplo, cuáles son las señales inductoras que controlan el inicio del brote de la extremidad. La ventaja de esta técnica es que el embrión de pollo es accesible para manipulaciones quirúrgicas y muy resistente; además, el brote de la extremidad control contralateral no operado sirve como un control interno muy útil.Susan Wilde demostrará el procedimiento. Para comenzar, corte un trozo cuadrado de 1 cm de papel de aluminio de 0,013 mm de espesor y esterilícelo limpiándolo con etanol al 70 %. Luego, coloque el cuadrado sobre una placa de Petri estéril de plástico de 6 cm.Para evitar la adherencia estática, deseche la tapa y fabrique una nueva para el recipiente con la misma lámina de aluminio. A continuación, coloque el recipiente de Petri sobre una retícula de platina bajo un microscopio binocular ajustado a un aumento de 1,6x. Utilice un escalpelo pequeño con hoja número 15 para cortar tiras de la lámina de aluminio de 1,3 mm de ancho por 2 mm de largo.Separe las tiras de lámina utilizando dos pares de pinzas de relojero número cuatro. A continuación, haga un doblez en ángulo recto en el centro de la barrera de lámina de modo que se asemeje a una bisagra. Coloque las barreras en el centro de la placa de Petri con un lado plano contra el fondo de la placa y el otro lado apuntando hacia arriba fuera de ella; prepare 20 o más barreras antes del día de la operación.Coloque la tapa de aluminio sobre el recipiente y guarde las barreras en un lugar donde no se molesten. Con el huevo colocado de lado, sostenga firmemente un par de pinzas fuertes tipo AA y utilice un movimiento controlado de punción para atravesar el extremo romo del huevo que contiene la cámara de aire, mientras sostiene el huevo con la otra mano. Asegúrese de que se haya roto la membrana interna de la cáscara.A continuación, tome el huevo con ambas manos y gírelo 180 grados a lo largo de su eje horizontal. Luego, tome un trozo de cinta transparente, de aproximadamente 5 cm cuadrados, y péguelo firmemente sobre la superficie más alta del huevo para evitar que la cáscara se desintegre sobre el embrión cuando se abra el huevo. Utilice un par de tijeras curvas para romper suavemente la cáscara y sus membranas celulares internas asociadas en el centro de la parte superior del huevo.Haga un agujero muy pequeño con una hoja de las tijeras para que el aire pueda entrar en el huevo sobre el embrión. Use las tijeras para agrandar el agujero en la cáscara hasta formar un círculo con un diámetro de aproximadamente 1 cm. Retire esta pieza de cáscara del tamaño de un huevo del huevo.Cubra el orificio en el huevo con un trozo de cinta transparente de aproximadamente 5 cm cuadrados. Presione la cinta para adherirla únicamente en el borde del orificio, dejando el resto de la cinta suelta. Luego, la cinta suelta se puede agarrar para desprecintar fácilmente el huevo.Tomar un embrión de la fase 15 del incubador y colocar el huevo sobre un soporte para huevos bajo un microscopio binocular ajustado a un aumento de 3,2x o superior. Luego, retirar la capa superior de cinta transparente. Usando un microcuchillo de acero, realizar una incisión a través de la membrana vitelina y el mesodermo lateral adyacente a los somitas 26-32 en el lado derecho del embrión.Agarre la barrera con pinzas microscópicas número 5 por un extremo y gire la barrera para insertar el extremo libre en la incisión. Tan pronto como sea posible, selle el huevo con cinta transparente y devuélvalo al incubador. Si se va a insertar una perla junto con una barrera, primero prepare las perlas impregnadas con ácido retinoico según se describe en el protocolo de texto adjunto.A continuación, tome la perla y un par de pinzas microfinas número 5 e insértelas en la superficie cortada del mesodermo lateral, en el lado distal de la incisión. Luego, inserte la barrera en la incisión, proximal a la perla. Selle el huevo y devuélvalo inmediatamente al incubador.Si se va a insertar una o varias cuentas sin una barrera, no realice la incisión larga. En cambio, haga una pequeña incisión a través de la membrana vitelina y en el mesodermo de la placa lateral en la posición donde se colocará la cuenta. Luego, tome la cuenta y unas pinzas microscópicas número 5 e insértelas en el orificio del mesodermo de la placa lateral.Empújelo un poco más con los extremos cerrados de la pinza. Tome un embrión de etapa diez con ventana del incubador y coloque el huevo sobre un soporte para huevos debajo de un microscopio binocular ajustado a un aumento de 3,2x o superior, si se desea. Luego, utilizando un microcuchillo de acero, realice una incisión a través de la membrana vitelina y el mesodermo de la placa lateral, lateral a la línea primitiva en el extremo caudal del embrión, alineado con los somitas, aproximadamente seis longitudes de somitas de largo.A continuación, tome la barrera con un par de pinzas microquirúrgicas número 5, en el extremo que sobresale del platillo de Petri, y gire la mano para insertar el extremo libre de la barrera en la incisión. Tan pronto como sea posible, selle el huevo con cinta transparente y devuélvalo al incubador. Si se va a insertar una perla sin barrera, haga una pequeña incisión a través de la membrana vitelina y en el mesodermo de la placa lateral en la posición donde se colocará la perla.Luego, tome la perla y un par de fórceps microscópicos número 5 e insértelos en el orificio del mesodermo de la placa lateral. Finalmente, empuje un poco más con los extremos cerrados del fórceps. Aquí se muestra la posición de la barrera en el nivel presunto de las patas de los somitos 26-32 en un embrión de etapa 15.Esta barrera provoca que la expresión de Fhf10 y Fhf8 esté ausente en la región del brote de la pata en el lado operado y presente en el lado izquierdo no operado. Sin embargo, se observa expresión de Tbx4 tanto en la etapa 19 como en la etapa 23 en el lado operado. Esto implica que la expresión de Tbx4 por sí sola no es suficiente para iniciar el crecimiento del miembro posterior a partir del mesodermo lateral paraxial (lpm).Cuando se colocan cuentas impregnadas con ácido retinoico distalmente a la barrera en la etapa 15, Tbx4, Fgf10 y Fgf8 se expresan todos en el lado operado, al igual que en el lado control izquierdo. Por lo tanto, en el desarrollo normal, el ácido retinoico proveniente de los somitos es esencial antes de que pueda iniciarse el brote del miembro. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo utilizar barreras impermeables y cuentas impregnadas con factores candidatos para estudiar cómo las señales inductoras regulan la iniciación del brote del miembro en el embrión de pollo.

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La aplicación de barreras impermeables combinadas con empapó las bolas Factor Candidato para el Estudio de señales inductivas en el polluelo (Video) | JoVE Journal

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