2 de abril de 2017
El modelo de oreja del ratón sin pelo SKH1-Hr hr permite microscopía de fluorescencia intravital de la microcirculación y la inducción de trombos fototóxico sin preparación quirúrgica previa en el lecho microvascular examinado. Por lo tanto, la oreja del ratón sin pelo es un excelente modelo in vivo para estudiar las interacciones complejas durante la formación de trombos microvasculares, la evolución de trombos, y la trombólisis.
El objetivo general de este experimento es estudiar la influencia de posibles fármacos vasoactivos sobre la formación de trombos microvasculares in vivo. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en la formación de trombos, como la identificación de nuevas sustancias antitrombóticas que podrían prevenir la formación de trombos microvasculares, una de las principales complicaciones en la sepsis y durante el trasplante de tejidos. La principal ventaja de esta técnica es que el modelo de oreja del ratón sin pelo permite la microscopía de fluorescencia intravital y la inducción fototóxica de trombos sin necesidad de preparación quirúrgica previa en el lecho microvascular examinado.
Comience pesando y registrando el peso del ratón. Luego cargue el volumen apropiado de la sustancia de prueba en una jeringa de insulina. Administre el fármaco 30 minutos antes de la inducción del trombo.
Después de anestesiar el ratón 15 minutos antes de la inducción del trombo, coloque al ratón nuevamente en la jaula hasta que comience la anestesia. Para verificar una anestesia suficiente, pellizque la cola con pinzas y observe la ausencia de reacción. A continuación, coloque 0,05 ml de Dextran 50 descongelado en una jeringa de insulina.
Después de llenar la jeringa, asegúrese de que no queden burbujas de aire, ya que incluso las pequeñas burbujas de aire administradas por vía intravenosa pueden ser letales para el animal. Coloque el ratón anestesiado sobre una placa de acroglass con una placa calefactora integrada en posición prona. Ajuste la placa calefactora a 37 grados Celsius.
Cubra las córneas de los ojos del ratón con pomada oftálmica. Luego, coloque dos suturas de polipropileno 7.0 en los bordes craneal y caudal de la oreja derecha. Coloque las suturas lo más cerca posible del borde y lo más próximo posible a la base.
Coloque el ratón en posición dorsal. Fije todas las patas a la plataforma utilizando vendaje adhesivo. Pase una sutura por debajo de los dientes frontales y coloque la cabeza en dorsiflexión fijando la sutura a la plataforma con vendaje adhesivo.
Coloque el animal sobre la plataforma bajo el microscopio estereoscópico. Utilice un aumento de 10X. Para la microscopía de la oreja derecha, prepare la vena yugular izquierda creando primero una incisión de 5 mm en la piel del cuello en dirección craneocaudal.
Luego, utilice pinzas microquirúrgicas y tijeras microquirúrgicas para disecar el tejido subcutáneo. A continuación, libere la vena de su adventicia sin tocar el vaso. Ahora, use la jeringa de insulina previamente preparada para la inyección del colorante fluorescente.
Sujete cuidadosamente la pared del vaso con la microfórceps sin perforar la vena. Penetre la pared del vaso distendida con la aguja de la jeringa e inyecte 50 Dextran por vía intravenosa. Retire la aguja y detenga la hemorragia utilizando torundas de algodón.
Evite la contaminación de la oreja con sangre y colorante. Transfiera el animal sobre la placa calefactora a una estructura de vidrio acro con una ranura para la placa auditiva y una superficie plana de 0,5 cm de altura para posicionar la oreja. Fije el animal en posición prona sobre la placa calefactora utilizando una venda adhesiva.
Coloque el cartílago convexo en la base de la oreja junto al plano de la oreja para que la parte apical de la oreja pueda colocarse plana sobre el plano. Añada una gota de agua a temperatura ambiente sobre la placa de vidrio acro. Utilizando hisopos de algodón, absorba la gota de agua y deje que las fuerzas capilares fijen el plano de la oreja a la placa de vidrio acro.
La oreja debe colocarse lo más plana posible, aunque el cartílago le dé a la oreja una forma convexa. Por lo tanto, solo la parte distal más flexible de la oreja debe colocarse sobre la placa de vidrio acrílico. Para evitar daños en el tejido y extravasación de líquidos y colorante, toque la oreja lo menos posible con la pinza.
A continuación, agregue una gota de agua sobre la cara dorsal convexa de la oreja. Coloque cuidadosamente un cubreobjetos sobre la oreja sin comprimir los vasos basales que entran en ella. Utilice bastoncillos de algodón para eliminar la mayor cantidad posible de agua de debajo del cubreobjetos, con el fin de minimizar la distancia entre el cubreobjetos y los vasos objetivo de la oreja.
Comience ajustando el microscopio de fluorescencia intravital para la visualización de Dextran 50. Transfiera el animal preparado a la platina del microscopio de fluorescencia intravital. Utilizando aumentos de 5X, 10X y 20X, e intensidad de luz del 20 %, busque un vaso venoso de 50 a 60 micrones de diámetro con flujo sanguíneo anterógrado.
Agregue una gota de agua a temperatura ambiente sobre el cubreobjetos para la inmersión en agua del objetivo de 63X de aumento. Inmediatamente después de aplicar la gota de agua, comience a grabar el vaso durante 20 segundos para la evaluación de línea base del diámetro y del flujo sanguíneo. Inicie la inducción del trombo cinco minutos después de la inyección de 50 Dextran.
Para este propósito, aumente la intensidad de la luz al 100 %. Durante la inducción de trombos por fototoxicidad, cierre la apertura del microscopio durante dos segundos dentro de un período de 30 segundos para verificar la oclusión del flujo sanguíneo. Si el flujo sanguíneo persiste, abra nuevamente la apertura. Se considera que el vaso está ocluido si el flujo permanece detenido durante 30 segundos o más, o si el flujo sanguíneo es retrógrado.
Seleccione y ocluya cinco vasos por oreja dentro de un período de una hora tras la inyección de 50 Dextran. Aquí, los animales fueron tratados con vehículo o con cannabinoides, anandamida, WIN 155,212-2 o cannabidiol antes de la inyección de 50 Dextran previa a la inducción del trombo. La anandamida, pero no el CBD, ni el WIN 155,212-2 aceleraron significativamente el crecimiento del trombo tras un tratamiento único en comparación con el control con vehículo.
En otro contexto, se combinó anandamida con indometacina para evaluar el impacto de los productos dependientes de la ciclooxigenasa en la formación de trombos mediante la anandamida. La administración conjunta con indometacina neutralizó el efecto protrombótico de la anandamida. Por lo tanto, la exposición aguda a la anandamida provoca un efecto protrombótico dependiente de la ciclooxigenasa in vivo.
Una vez dominada, la inducción de trombos en vasos estrechos puede realizarse en 90 minutos, incluida la preparación. Al intentar este procedimiento, es importante manipular la orejuela con mucha precaución cada vez que se toca, para evitar la extravasación de líquidos y colorante. Aunque este método puede proporcionar información sobre la formación de trombos, también puede aplicarse a otros sistemas, como la cicatrización de heridas, el fallo de colgajos y la angiogénesis.
Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de la aplicación intravenosa de colorante fluorescente, la posición de la oreja y la iluminación de vasos específicos para realizar la inducción fototóxica de trombos en condiciones intravitales.
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Este estudio utiliza el modelo de la oreja del ratón sin pelo SKH1-Hrhr para microscopía de fluorescencia intravital con el fin de investigar la formación de trombos microvasculares. El modelo permite la inducción fototóxica de trombos sin necesidad de preparación quirúrgica previa, lo que lo hace ideal para estudiar la evolución del trombo y la trombólisis.
Este modelo de microscopía intravital permite la evaluación en tiempo real de la formación de trombos microvasculares en un entorno in vivo fisiológicamente relevante, facilitando la evaluación temprana de compuestos vasoactivos por su potencial antitrombótico. Al eliminar la necesidad de preparación quirúrgica, el modelo de oreja de ratón sin pelo mejora el rendimiento y la reproducibilidad en la investigación preclínica de trombosis. El sistema proporciona información mecanicista sobre la dinámica del trombo, ayudando en la validación de dianas y en la identificación de compuestos prometedores para trastornos trombóticos.
El método se integra en el continuo de descubrimiento desde la validación del blanco hasta la optimización del fármaco inicial, proporcionando lecturas funcionales que orientan las decisiones de continuar o descartar en programas centrados en la trombosis.