25 de mayo de 2017
Este protocolo demuestra un método basado en la fluorescencia para visualizar la vasculatura y para cuantificar su complejidad en Xenopus tropicalis . Los vasos sanguíneos pueden visualizarse minutos después de la inyección de un colorante fluorescente en el corazón de un embrión después de manipulaciones genéticas y / o farmacológicas para estudiar el desarrollo cardiovascular in vivo .
El objetivo general de este procedimiento es visualizar la vasculatura de las larvas de Xenopus tropicalis. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la biología cardiovascular, como la forma en que se regula la angiogénesis. La principal ventaja de esta técnica es que los vasos sanguíneos en un embrión intacto y de tipo salvaje pueden visualizarse mediante la inyección simple de un colorante fluorescente.
Comience utilizando un microcargador para llenar una micropipeta de vidrio cónica con aproximadamente cinco microlitros de solución clara de LDL diI acetilada, teniendo cuidado de no cargar partículas precipitadas. Bajo un microscopio estereoscópico, use un par fino de pinzas número 55 para cortar la punta de la pipeta y así ajustar el volumen del complejo cargado, y configure el sistema de inyección controlado por presión para expulsar aproximadamente cinco nanolitros de solución por inyección. Luego, sumerja la punta de la pipeta en MS-222 al 0,04 % en solución salina de Barth modificada 0,1X o MBS, en un molde personalizado de Sylgard.
A continuación, transfiera el embrión de Xenopus tropicalis al molde de Sylgard y confirme la sedación completa mediante la ausencia de respuesta a la estimulación de la aleta dorsal. Bajo el microscopio estereoscópico, coloque el embrión con la cara ventral hacia arriba en la muesca en forma de V del molde, en una posición ligeramente oblicua. Ajuste firmemente dos alfileres minutian de 0,1 milímetros a un portaalfiles y use un alfiler para perforar la piel sobre el corazón, que debería estar pulsando visiblemente.
Inserte la aguja a través del orificio en el espacio entre el corazón y la piel sin perforar el corazón, y coloque la punta insertada dentro de la región donde se realizará la incisión. Luego, frote la segunda aguja contra la aguja insertada para hacer una incisión lineal y use ambas agujas juntas para ensanchar suavemente la incisión, exponiendo el corazón. Para inyectar la solución de LDL acetilada marcada con DiI, inserte la punta de la pipeta de vidrio en el corazón e inyecte de 50 a 60 nanolitros de LDL acetilada marcada con DiI en aproximadamente 10 pulsos de eyección.
Una vez que se haya administrado toda la solución de colorante, confirme que el corazón siga latiendo y transfiera el embrión a una nueva placa de Petri que contenga MBS 0,1X. Después de cinco a 10 minutos, la rana debería recuperarse de la anestesia y comenzar a moverse. Después de inyectar un número adecuado de embriones, examine visualmente los embriones anestesiados correctamente etiquetados bajo un microscopio de fluorescencia, descartando aquellos animales que presenten etiquetado en otros órganos.
Los embriones que no se han marcado adecuadamente pueden ser inyectados nuevamente. Luego, capture imágenes de los embriones correctamente marcados. Para una visualización más exhaustiva de los vasos sanguíneos, fije los embriones anestesiados nuevamente en paraformaldehído al 4 % durante una hora a temperatura ambiente, protegidos de la luz, para su visualización mediante microscopía confocal.
Si se inyecta una cantidad suficiente de LDL acetilado diI en el corazón, la vena cardinales posterior, o PCV, debe ser inmediatamente visible bajo un microscopio de fluorescencia. Las venas intersomíticas, o ISV, emergen dorsalmente desde la PCV en una onda de anterior a posterior que comienza en la etapa 36 y termina alrededor de la etapa 40 a 41, volviéndose ligeramente ramificadas alrededor de la etapa 43. La PCV y las ISV crecen siguiendo un patrón angiogénico estereotipado que está bajo un estricto control del desarrollo.
Curiosamente, la inhibición de la señalización de TIE-2 mediante morpholinos antisentido disminuye la longitud y la complejidad de las ISV, mientras que la expresión de la forma constitutivamente activa de TIE-2 induce una ramificación excesiva de las ISV. Se puede calcular un Índice de Complejidad de Venas para evaluar la complejidad de las ISV y se pueden generar trayectos representados para visualizar la arquitectura general del sistema vascular del embrión de Xenopus tropicalis. El protocolo original fue descrito para el uso de Xenopus laevis por Levin y Colics, y nosotros lo adaptamos para Xenopus tropicalis.
Una vez dominada, esta técnica puede completarse en una hora si se realiza adecuadamente. Antes de este procedimiento, se pueden realizar manipulaciones genéticas y farmacológicas para responder preguntas adicionales, como qué genes y vías de señalización regulan el desarrollo vascular. Mediante este procedimiento, la vasculatura marcada puede visualizarse en un animal intacto en tiempo real, lo que proporciona una herramienta poderosa para investigar la dinámica del desarrollo vascular.
Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo inyectar LDL acetilada diI en el corazón de una renacuajo de Xenopus tropicalis para visualizar su vasculatura.
Vea la transcripción completa y acceda a miles de videos científicos
Este protocolo demuestra un método basado en fluorescencia para visualizar la vasculatura y cuantificar su complejidad en Xenopus tropicalis. La técnica permite la obtención de imágenes de los vasos sanguíneos poco después de la inyección de un colorante fluorescente en el corazón del embrión, facilitando estudios sobre el desarrollo cardiovascular in vivo.
Este método permite la visualización y cuantificación directas de la complejidad vascular en un modelo vertebrado, lo que apoya la validación temprana de objetivos en las vías de angiogénesis. Al proporcionar lecturas cuantitativas del brotamiento y ramificación de vasos, facilita la reducción de riesgos mecanicistas de los objetivos vasculares antes de iniciar campañas de identificación de compuestos líderes. El sistema Xenopus tropicalis ofrece una plataforma relevante para enfermedades al permitir la evaluación de fenotipos angiogénicos con confianza predictiva en investigaciones cardiovasculares preclínicas.
El método se integra en el continuo de descubrimiento, desde la verificación de hipótesis sobre dianas hasta la identificación de compuestos activos, proporcionando datos de fenotipo vascular que orientan las decisiones de continuar o descartar en programas centrados en la angiogénesis.