Name: Extracción de muestras y cuantificación cromatográfica simultánea de doxorrubicina y mitomicina C siguiendo la combinación del fármaco en nanopartículas en ratones con tumores (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: Aprende a extraer y cuantificar simultáneamente doxorrubicina, mitomicina C y doxorrubicinol en muestras biológicas mediante cromatografía líquida de alta resolución en fase reversa. Este método robusto facilita el estudio de nanofarmacocinética en tumores.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Los autores reconocen agradecidos la donación de equipo de Ciencias naturales e Ingeniería de investigación (NSERC) Consejo de Canadá para HPLC, la subvención de funcionamiento del Instituto canadiense de investigación de la salud (CIHR) y canadiense de investigación de cáncer de mama (CBCR) Alianza a X.Y. Wu y la beca de la Universidad de Toronto para R.X. Zhang y Zhang T..

todos los experimentos en animales fueron aprobados por el cuidado Comité de Universidad red de Salud Animal del Instituto de cáncer de Ontario y realizados de acuerdo con el Consejo Canadiense sobre directrices de cuidado Animal.
 1. preparación de muestras biológicas <ol><li>recoger la sangre, los órganos principales y tumor de mama en momentos predeterminados después de la administración intravenosa (i.v.) de drogas que contienen formulaciones (p. ej., DMPLN, DOX liposómica) <ol><li>inyectar un i.v. de ratón con tumores de mama con una formulación que contiene el medicamento preparada.</li>
		<li>Anestesiar el ratón en momentos señalados (por ejemplo, 15 min) dando inhalables 2% isoflurano en un compartimiento sellado.</li>
		<li>Pone el ratón anestesiado en su espalda y puso su nariz a través de una boquilla que suministra constantemente 2% isoflurano. 
		Nota: Para asegurarse de que el ratón somete a anestesia profunda, Pellizque suavemente extremidades delanteras del ratón y buscar cualquier movimiento que crispa.</li>
		<li>Limpiar las regiones de tórax y abdomen con etanol al 70% y llevar a cabo un procedimiento terminal de punción cardiaca en los ratones anestesiados profundos usando una jeringa heparinizada 1 mL y una aguja de 23 G.</li>
		<li>Recoge la sangre en un etiquetado sodio heparina rocía el tubo de plástico y agite suavemente el tubo para asegurarse de recoger sangre entra en contacto con la heparina revestida de la pared del tubo. Recoger un mínimo de 50 μl de sangre entera. Siempre mantenga las muestras en hielo.</li>
		<li>Cinta de los cuatro miembros del ratón para fijarlo y abrir la cavidad abdominal y la caja torácica del ratón utilizando un par de tijeras y pinzas. Cambio de los intestinos al lado y empujar el hígado hacia arriba para exponer suficientemente la vena porta. Cortar la vena porta para el drenaje de sangre.</li>
		<li>Inundar el cuerpo de todo ratón con 50 mL de solución salina 0.9% helada a través del corazón utilizando una jeringa de 10 mL con una aguja de 25 G. 
		Nota: Doblar la aguja a 90° para guiar la jeringa a la vena porta.</li>
		<li>Órganos de impuestos especiales en el siguiente orden: corazón, pulmón, hígado, bazo, riñones. Luego, separar el tumor del pecho de los tejidos conectivos circundantes mediante un par de tijeras de incisión en la almohadilla de grasa mamaria derecha del ratón. Recoja todos los órganos individualmente en tubos de polipropileno de 1.5 mL y congélelos rápidamente en nitrógeno líquido. 
		&#8203; Nota: separar la vesícula biliar desde el hígado.</li>
		<li>Almacenar la sangre a 4 ° C y suprimido los tejidos en el congelador de-80 ° C hasta su posterior análisis HPLC.</li>
	</ol></li> <li>Extracto de DOX, MMC y DOXol de matrices biológicas.
	<ol><li>Pesan todos los tejidos disecados congelados rápidamente y transferir a un tubo cónico de fondo redondeado de 13 mL. Para evitar posibles drogas metabolismo o degradación, mantener las muestras en hielo.</li>
		<li>Agregar de 1-5 mL de tampón de lisis celular helada en el tubo de. 
		Nota: El volumen de buffer a utilizar depende del peso de tejido basado en la razón tejido-buffer de 1 g: 5 mL (w/v); para pequeños órganos, como corazón y bazo, la proporción es de 1 g: 2 mL.</li>
		<li>Utilizar un movimiento de movimiento arriba-abajo para homogeneizar las muestras de tejido en el hielo a una velocidad de 18.000 rpm usando un homogeneizador de mano eléctrica. 
		Nota: Homogeneización completa requiere aproximadamente 3 a 5 repeticiones de un proceso de homogeneización cortos de menos de 15 s, seguido del enfriamiento con hielo entre cada corto homogeneización del tejido.</li>
		<li>Lavar la sonda de generador de dientes de Sierra de 10 mm de la homogeneizadora con agua destilada desionizada (DDI) H 2 O, etanol al 70% y luego DDI H 2 O entre cada muestra de tejido para evitar la contaminación cruzada.</li>
		<li>Transferir 50 μl de homogenado de tejidos o sangre entera en un tubo de microcentrífuga polipropileno de 1.5 mL y spike con 5 μl de una interna estándar (I.S.) 4-methylumbelliferone (4-MU) (2000 ng/mL) en el tubo de. 
		Nota: solución 4-MU se preparó en metanol aquí.</li>
		<li>Añadir 250 μl de un solvente de extracción helada al tubo que contiene sangre o tejido homogeneizado. 
		Nota: El disolvente de extracción consiste en 60% acetonitrilo (ACN) y acetato de amonio 40% (5 mM) con pH ajustado a pH = 3,5 con 0.05% de ácido fórmico. Utilizar una muestra de 1:5 (v/v): solvente de extracción relación.</li>
		<li>Vortex vigorosamente la mezcla durante 2 min, centrifugar a 3.000 x g de fuerza a 4 o C por 10 min y pipetee 200 μL de sobrenadante en otro tubo de microcentrífuga fresco previamente enfriada.</li>
		<li>Evapórese sobrenadante a 60 ° C bajo una corriente lenta de nitrógeno con la protección de la luz.</li>
		<li>Reconstituir el residuo seco con 100 μl de metanol helada, vortex vigorosamente por 30 s y centrifugue a 3000 x g a 4 ° C por 5 min otra</li>
		<li>Transferir el sobrenadante a un inserto HPLC frasco y colocar frascos de la muestra en una bandeja de automuestreador para la inyección.</li>
	</ol></li></ol> 2. Instrumentación HPLC y parámetros de operación <ol><li>fase móvil HPLC preparar con reproducibilidad consistente <ol><li>medida de grado HPLC H 2 O utilizando una probeta graduada de 500 mL.</li>
		<li>Medir 500 mL de acetonitrilo grado HPLC (ACN) usando un cilindro graduado separado.</li>
		<li>Con cuidado añada 0,5 mL de ácido trifluoroacético (TFA) (PRECAUCIÓN) en cada una de 500 mL de H 2 O y la CAN para obtener la fase móvil de H 2 O y ACN que contiene 0.1% TFA, respectivamente. 
		Nota: TFA es corrosivo y tóxico y debe ser manejado bajo una campana de laboratorio. Todas las mezclas solventes están preparadas a temperatura ambiente.</li>
		<li>Fases móviles filtro a través de un filtro de membrana de nylon con un 0.45 μm tamaño de poro y transferir en limpiamos botellas de depósito HPLC.</li>
	</ol></li> <li>Instrumentación instalación HPLC para la detección simultánea de DOX, MMC y DOXol y I.S. 4-MU.
	<ol><li>Interruptor de la bomba de gradiente de gasser, muestreador automático, detector del arsenal del fotodiodo y multi detector de fluorescencia de λ.</li>
		<li>Entrada a las condiciones iniciales de la composición de la fase móvil a 16,5% H 2 O (0.1% TFA) y 83,5% ACN (0.1% TFA) (v/v).</li>
		<li>Ajustar el detector de UV en dos canales, uno en 310 nm para 4-MU (I.S.) y el otro en 360 nm para MMC.</li>
		<li>Activado el detector de fluorescencia de dos canales, uno en λ ex / em λ = 365/445 nm 4-MU y el otro en λ ex / λ em = 480 nm/560 nm para DOX y DOXol, respectivamente.</li>
		<li>Fijar un caudal isocrática de 1,0 mL/min.</li>
		<li>Equilibrar una columna de 18 preinstalado de fase inversa C (4,6 mm x 250 mm, 5 μm) a temperatura ambiente durante 10 min para el establecimiento de la referencia.</li>
	</ol></li> <li>Separar drogas (DOX, MMC, DOXol y 4-MU) usando la condición gradiente de fase móvil.
	<ol><li>Inyectar 15 μl de muestras extraídas y concentradas a utilizar el muestreador automático.</li>
		<li>Poco a poco cambiar la condición inicial de la fase móvil (consulte el protocolo paso 2.2.2) al 100% ACN (0.1% TFA) sobre 18 minutos usando la bomba de gradiente automatizada. 
		Nota: Durante el proceso de separación, cuatro canales (dos absorbentes de UV y dos fluorescentes) aparecen simultáneamente con cada canal que muestra un medicamento compuesto (consulte el paso protocolo 2.2.3 y 2.2.4).</li>
		<li>Mantener el 100% de ACN (0.1% TFA) por 1 min y luego retorno a la condición de fase móvil inicial en 1 minuto</li>
		<li>Volver a acondicionar la columna con la fase móvil inicial en el flujo de 1,5 mL/min durante 4 min para la siguiente inyección muestra.</li>
	</ol></li></ol> 3. Validación de HPLC <ol><li>preparación de estándares de trabajo de DOX, MMC y DOXol y 4-MU (I.S.).
	<ol><li>Pesar por separado 1 mg de polvo de droga DOX y MMC (PRECAUCIÓN) y 4-MU en un dulce pequeño peso de papel (3 x 3 pulgadas 2). 
		Tenga en cuenta que todos los medicamentos contra el cáncer son considerados un peligro para la salud que puede causar mutagenicidad toxicidad y la célula de germen aguda en la inhalación o ingestión. Deben manipularse cuidadosamente con guantes y máscaras de.</li>
		<li>Transferir la pesada DOX, MMC y 4-MU en un tubo nuevo de microcentrífuga polipropileno individual 1.5 mL.</li>
		<li>Añada 1 mL de metanfetaminaanol y agitar brevemente para obtener 1 mg/mL concentración de DOX y MMC.</li>
		<li>Agregar 1 mL de metanol a un vial previamente pesado 1 mg de DOXol (PRECAUCIÓN) y vortex brevemente para obtener concentración de 1 mg/mL de DOXol. 
		Nota: DOXol es un metabolito de cardio tóxica y debe manipularse con cuidado.</li>
		<li>Pipeta 20 μl de las soluciones madre preparadas de DOX, MMC, DOXol y 4-MU en un nuevo separar el tubo de microcentrífuga polipropileno de 1.5 mL y añadir 980 μl de metanol para obtener un estándar de trabajo de 20 μg/mL de cada droga.</li>
		<li>Diluir 20 μg/mL de DOX, MMC y DOXol con metanol para obtener los estándares de trabajo de 50 ng - 20 μg/ml para DOX, MMC y DOXol y 2000 ng/mL para I.S. 4-MU.</li>
		<li>Sello de la tapa del tubo de soluciones de trabajo con un estrecho trozo de cubierta de la película de parafina para evitar la evaporación del metanol, envuelva el tubo entero con papel de aluminio para evitar la exposición a la luz directa y conservar a -20 ° C.</li>
	</ol></li> <li>Determinar la linealidad, precisión y exactitud de DOX, MMC y DOXol en matrices biológicas (es decir, sangre y tumor homogeneizado).
	<ol><li>Al mismo tiempo punto 5 μl de estándares de trabajo de DOX y DOXol (50 ng/mL - 20 μg/mL), MMC (1.000 ng/mL - 16 μg/mL) y 4-MU (2 μg/mL) en 50 μl de sangre entera en blanco o tejido homogeneizado en tubos de microcentrífuga de polipropileno para obtener la curva de concentración estándar que van desde 5-2000 ng/mL para los compuestos de la droga y 200 ng/mL para 4-MU (I.S.).</li>
		<li>Realizar el ensayo de extracción de droga se describe en el protocolo 1.2.</li>
		<li>Uso de baja, mediana y alta concentración de DOX y DOXol (50, 500 y 2.000 ng/mL) y MMC (100, 1000, 2.000 ng/mL) para precisión intra y inter día. 
		Nota: Preparar concentraciones estándar frescas en el día del análisis.</li>
	</ol></li> <li>Análisis de muestras <ol><li>inyectar 15 μl de la muestra usando el muestreador automático.</li>
		<li>Poco a poco cambie la fase móvil sobre 0 a 18 minutos, aumento de la composición de ACN en el intervalo de.</li>
		<li>Después de 18 minutos, mantenga la condición de fase móvil durante 1 minuto</li>
		<li>Regresar a la condición inicial durante los próximos 2 minutos y volver a equilibrar durante 4 minutos antes de la inyección siguiente.</li>
		<li>Después de cada muestra ejecute, tenga en cuenta que los picos de los compuestos de la droga con su tiempo de retención se muestran como sigue: MMC, DOXol, 4-MU (I.S.) y DOX.</li>
		<li>Integrar el área de pico en la curva (AUC) de los compuestos de drogas utilizando el software HPLC.</li>
		<li>Calcular la relación AUC entre drogas individual compuesto y I.S. (ecuación 1) y las curvas estándar preparadas bajo los mismos procedimientos de extracción para determinar las concentraciones de la droga de DOX, MMC y DOXol en formulación DMPLN. 
		<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/56159/56159eq1.jpg" /></li> <li>calcular el porcentaje de recuperación de drogas (ecuación 2) mediante la comparación de las concentraciones de medicamento reconstituidas con metanol de los extractos de las muestras biológicas con picos para que de la norma (&#34; limpio &#34;) solución en metanol de la droga. 
		<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/56159/56159eq2.jpg" /></li></ol></li></ol>

Los autores no tienen ninguna competencia de intereses financieros y conflictos de intereses.

En comparación con otros métodos cromatográficos que permitan la detección de especies de un solo medicamento a la vez, el presente Protocolo HPLC es capaz de cuantificar simultáneamente tres compuestos de la droga (DOX, MMC y DOXol) en la misma matriz biológica sin necesidad de cambiar la fase móvil. Este método de preparación y el análisis se ha aplicado con éxito para determinar la farmacocinética y bio-distribución de dos sistemas de entrega de medicamentos basados en nanopartículas (es decir, la DOX y DMPLN...

La quimioterapia es una modalidad de tratamiento primario para muchos tipos de cáncer, pero a menudo se asocia con efectos adversos graves y eficacia limitada debido a la resistencia a los medicamentos y otros factores1,2,3. Para mejorar el resultado de la quimioterapia, se han aplicado regímenes de combinación de fármacos en la clínica basada en consideraciones tales como la no superposición de toxicidades, diferentes mecanismos de acción de los fármacos y drogas no-cross resistencia4,5 , 6. en los ensayos clínicos, una mejor tasa de respuesta del tumor a menudo se observó utilizando simultáneamente administra combinaciones de fármacos en comparación con un régimen de drogas secuencial entrega7,8. Sin embargo, debido a la bio-distribución óptima de droga libre formas, inyección simultánea de múltiples drogas puede causar toxicidad prominente tejido normal que compensa el efecto terapéutico9,10,11. Administración de fármacos basados en Nanocarrier ha demostrado para alterar la farmacocinética y la bio-distribución de medicamentos encapsulados, mejorar la acumulación orientada a tumor12,13,14. Como los revisados en nuestros últimos artículos, nanopartículas cargadas junto con combinaciones de fármacos sinérgicos han demostrado la capacidad para mitigar los problemas de combinaciones de medicamentos libre, debido a su controlada entrega Co temporal y espacial de múltiples drogas al tejido del tumor, permitiendo efectos sinérgicos de la droga contra el cáncer de células de4,15,16. Como resultado, han demostrado una eficacia terapéutica superior y baja toxicidad en ambos estudios preclínicos y clínicos4,17,18.
Nuestros en vitro estudios anteriores encontraron que la combinación de dos fármacos contra el cáncer, doxorrubicina (DOX) y mitomicina C (MMC), produce un efecto sinérgico contra varias líneas de células de cáncer de mama y, además, co carga DOX y MMC en lípidos de polímero híbrido nanopartículas (DMPLN) superaron varios resistente a múltiples fármacos asociados emanación bombas (por ejemplo, P-glicoproteína y proteína resistente al cáncer de mama)19,20,21. In vivo, DMPLN permitió entrega cooperación espacial y temporal de DOX y MMC a los sitios del tumor y mayor biodisponibilidad de los fármacos dentro de células de cáncer, como lo indica la moderación de la formación de los metabolitos DOX doxorubicinol (DOXol)22. Como resultado, el DMPLN mayor apoptosis de las células tumorales, inhibición del crecimiento tumoral y supervivencia prolongada host para libre combinación de DOX y MMC o liposomal DOX formulación22,23,24, 25.
Analizando la cantidad de drogas realizada conjuntamente por un nanocarrier es fundamental para el diseño de formulaciones de nanopartículas efectivas. Se han desarrollado muchos métodos para analizar el nivel de plasma de dosis únicas de DOX o MMC utilizando cromatografía líquida de alto rendimiento (HPLC) solo o en combinación con la espectrometría de masas (MS)26,27,28 , 29 , 30 , 31 , 32 , 33 , 34. sin embargo, estos métodos son a menudo lentos y poco práctico para la terapia de combinación ya que un gran número de muestras biológicas deben prepararse por separado para el análisis de múltiples fármacos (a veces incluidos los metabilitos de la droga). Además de la Unión a proteínas plasmáticas fuerte de DOX y MMC, células de sangre rojas también tienen una gran capacidad para enlazar y concentrar muchas drogas anticáncer35,36. Así, el análisis del plasma para DOX o MMC puede ofuscar concentraciones de la droga de sangre real. El presente trabajo (figura 1) describe un simple y sólido método de análisis de drogas múltiples mediante HPLC de fase inversa simultáneamente extraer y cuantificar DOX, MMC y el DOX metabolito doxorubicinol (DOXol) de sangre entera y tejidos varios ( por ejemplo, tumores). Se ha aplicado con éxito para determinar la farmacocinética y bio-distribución de DOX y MMC, así como la formación de DOXol después de la administración de fármacos vía libres soluciones o formas de nanopartículas (es decir, DMPLN y DOX liposomal) en un orthotopically implantar modelo de tumor de mama murino ratones después de intravenoso (i.v.) de inyección22.

<table><tbody><tr><td>Doxorrubicina&nbsp;</td><td>Polymed Theraeutics</td><td>111023</td><td>medicamento contra el cáncer</td></tr><tr><td>Mitomicina C</td><td>Polymed Theraeutics</td><td>060814</td><td>medicamento contra el cáncer</td></tr><tr><td>Doxorrubicinol (DOXol)</td><td>Toronto Research Chemicals</td><td>D558020</td><td>Metabolito de la</td></tr><tr><td>sal sódica DOX 4-metilobelifelona&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1508</td><td>Estándar interno</td></tr><tr><td>Ácido mirístico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>544-63-8&nbsp; &nbsp;</td><td>Materiales para nanopartículas híbridas polilipídicas</td></tr><tr><td>Polioxietileno (100) Espectro de estearato</td><td></td><td>M1402</td><td>Materiales para nanopartículas híbridas polilipídicas</td></tr><tr><td>Polioxietileno (40) Estearato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3440</td><td>Materiales para nanopartículas híbridas polilipídicas</td></tr><tr><td>Pluronic F68 (PF68)</td><td>BASF Corp.</td><td>9003-11-6</td><td>Materiales para nanopartículas híbridas polilipídicas</td></tr><tr><td>Ultrasonicación (UP100H)</td><td>Hielscher, Tecnología de ultrasonidos</td><td>NA</td><td>Preparación de nanopartículas</td></tr><tr><td>Baño de agua (ISOTEMP 3016HS)</td><td>Fisher Scientific</td><td>NA</td><td>Preparación de nanopartículas</td></tr><tr><td>Doxorrubicina liposomal&nbsp; (Caelyx)</td><td>Janssen</td><td>Comprado en la farmacia Princess Margaret Hospital</td><td>Formulación de nanopartículas clínicamente aprobada&nbsp;</td></tr><tr><td>Metanol con grado de HPLC</td><td>Caledon Chemicals</td><td>6701-7-40</td><td>Composición de fase móvil</td></tr><tr><td>de HPLC Clasificación de HPLC H2O</td><td>Caledon Chemicals</td><td>8801-7-40</td><td>Composición de fase móvil de HPLC</td></tr><tr><td>Acetonitrilo con grado de HPLC&nbsp;</td><td>Caledon Chemicals</td><td>1401-7-40</td><td>HPLC composición de fase móvil</td></tr><tr><td>ácido trifluoroacético</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>302031</td><td>composición de fase móvil de HPLC</td></tr><tr><td>0,45 &mu; m Membrana de nylon Papel de filtro Whatman</td><td></td><td>WHA7404004</td><td>HPLC Preparación de fase móvil</td></tr><tr><td>Jeringas de plástico de 1 cc</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>2606-309659 Inyección de</td><td>tratamiento</td></tr><tr><td>Jeringas de plástico de 5 cc</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>2608-309646 Colecciones de</td><td>tejidos</td></tr><tr><td>30G 1/2 Agujas Becton</td><td>, Dickinson and Company</td><td>305106</td><td>Inyección de tratamiento</td></tr><tr><td>25G 5/8 Agujas</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>305122</td><td>Colecciones de tejidos</td></tr><tr><td>Estéril 0,9% solución salina</td><td>Universidad de Toronto Marca de la casa 1011</td><td>Perfusión de tejidos</td><td></td></tr><tr><td>13 ml Tubo cónico de fondo redondeado&nbsp;</td><td>SARSTEDT</td><td>62.515.006</td><td>Prolyprolene, homogeneización de tejidos</td></tr><tr><td>Medio Esencial Mínimo Alfa (MEM)&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>12571063</td><td>Medio celular</td></tr><tr><td>1 x Tampón de fosfato solución salina</td><td>Gibco</td><td>10010023</td><td>Homogeneización</td></tr><tr><td>de tejidos Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100-100 ML</td><td>Homogeneización de tejidos</td></tr><tr><td>Ácido fórmico</td><td>Caledon Chemicals</td><td>1/5/3840</td><td>Ajuste el pH para la extracción Solvente</td></tr><tr><td>Heparina de sodio Tubos de plástico rociados Becton</td><td>, Dickinson and Company</td><td>367878</td><td>Extracción de sangre</td></tr><tr><td>Balanza de pesaje analítico&nbsp;</td><td>Sartorius&nbsp;</td><td>CPA225D</td><td>Medidores</td>de</tr><tr><td>pH NA&nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-637-671</td><td>accumet BASIC</td></tr><tr><td>Mezclador de vórtice</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-215-365</td><td>Muestras de vórtice a la velocidad deseada</td></tr><tr><td>1,5 ml&nbsp; tubo de microcentrífuga</td><td>Fisherbrand</td><td>2043-05408129</td><td>Prolyprolene</td></tr><tr><td>Modelo 1000 homogeneizador</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-451-672</td><td>Homogeneización de tejidos</td></tr><tr><td>centrífuga 5702R</td><td>Eppendorf</td><td>5702R Preparación de</td><td>la extracción</td></tr><tr><td>Sistema de evaporador calentado</td><td>Glas-Col</td><td>NA</td><td>Reconstitución de muestras</td></tr><tr><td>HPLC Rosca de tornillo Viales DIKMA</td><td></td><td>5320</td><td>Inyección de muestras de HPLC</td></tr><tr><td>Tapones de rosca de HPLC con septos de silicona blanca de PTFE</td><td>DIKMA</td><td>5325</td><td>Inyección de muestras de</td></tr><tr><td>HPLC Inserto de polipropileno HPLC&nbsp; &nbsp;</td><td>Agilent Technologies</td><td>5182-0549</td><td>Volumen máximo 250 &mu; l, inyección de muestras por HPLC</td></tr><tr><td>Xbridge C18 Column</td><td>Waters Corporation</td><td>186003117</td><td>Bomba de gradiente para análisis de fármacos</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td>Waters Corporation</td><td>W600</td><td>Muestreador</td></tr><tr><td>automático de análisis de</td> drogas <td>Waters Corporation</td><td>W2707</td><td>Análisis</td></tr><tr><td>de drogas Detector de matriz de fotodiodos&nbsp;</td><td>Waters Corporation</td><td>W2998</td><td>Análisis de drogas</td></tr><tr><td>Multi &lambda; detector de fluorescencia&nbsp;</td><td>Waters Corporation</td><td>W2475</td><td>Análisis de medicamentos</td></tr><tr><td>EMPOWER 2</td><td>Waters Corporation</td><td>NA</td><td>Software de análisis de datos</td></tr><tr><td>Scientist</td><td>Micromath</td><td>NA</td><td>Análisis farmacocinético</td></tr><tr><td>Female Balb/c</td><td>Ratones Jackson Laboratory</td><td>001026</td><td>Células</td></tr> de <tr><td>cáncer de mama EMT6/WT</td> in vivo <td>Proporcionado por el Dr. Ian Tannock; Instituto del Cáncer de Ontario</td><td>NA</td><td>In vivo</td></tr></tbody></table>

extracción de muestras y cuantificación cromatográfica simultánea de doxorrubicina y mitomicina c siguiendo la combinación del fármaco en nanopartículas en ratones con tumores

Sample Extraction and Simultaneous Chromatographic Quantitation of Doxorubicin and Mitomycin C Following Drug Combination Delivery in Nanoparticles to Tumor-bearing Mice

Quimioterapia de combinación se utiliza con frecuencia en la clínica para el tratamiento del cáncer; sin embargo, los efectos adversos asociados al tejido normal pueden limitar su beneficio terapéutico. Combinación de fármacos basados en nanopartículas se ha demostrado para mitigar los problemas planteados por la terapia de la combinación libre de drogas. Nuestros estudios previos han demostrado que la combinación de dos fármacos contra el cáncer, doxorrubicina (DOX) y mitomicina C (MMC), produce un efecto sinérgico contra ambos murino y células de cáncer de mama en vitro. DOX y MMC Co cargados de lípidos de polímero híbrido nanopartículas (DMPLN) omite varias bombas transportador de eflujo que confieren multirresistencia y demostraron mayor eficacia en modelos de tumores de mama. En comparación con las formas de solución convencional, tal eficacia superior de DMPLN fue atribuida a la farmacocinética sincronizada de DOX y MMC y biodisponibilidad intracelular creciente de drogas dentro de las células del tumor de nanocarrier PLN.
Para evaluar la farmacocinética y la bio-distribución de co administra DOX y MMC en solución libre y formas de nanopartículas, un método simple y eficiente Análisis de múltiples fármacos con alto rendimiento de fase inversa de la cromatografía líquida (HPLC) fue desarrollado. En contraste con métodos previamente divulgados que analizan individualmente DOX o MMC en el plasma, este nuevo método HPLC es capaz de cuantificar simultáneamente DOX, MMC y un metabolito importante de DOX cardio tóxico, doxorubicinol (DOXol), en diversas matrices biológicas ( por ejemplo, sangre, tumor de mama y el corazón). Una doble punta de prueba fluorescente y ultravioleta absorbente 4-methylumbelliferone (4-MU) se utilizó como estándar interno (I.S.) para la detección de un solo paso de múltiples análisis de drogas con longitudes de onda de detección diferentes. Este método fue aplicado con éxito para determinar la concentración de DOX y MMC por enfoques de solución y nanopartículas en sangre entera y tejidos varios en un modelo Murino ortotópico mama tumor. El método analítico que se presenta es una herramienta útil para el análisis clínico previo de entrega basados en nanopartículas de combinaciones de fármacos.

Dos medicamentos contra el cáncer, DOX y MMC, así como el metabolito DOX, DOXol, fueron detectado simultáneamente sin ninguna interferencia biológica bajo las mismas condiciones HPLC de gradiente aplicada utilizando 4-MU como el I.S. para los detectores de UV y fluorescencia. DOX, MMC, DOXol y 4 MU estaban bien separados unos de otros con tiempos de retención de 5,7 min para MMC, 10,4 min DOXol, 10,9 min 4-MU y min 11,1 para DOX (figura 2). Cada medicamento e...

Este protocolo describe un proceso analítico eficaz y práctico de la extracción de muestra y determinación simultánea de múltiples fármacos, doxorrubicina (DOX), mitomycin C (MMC) y un metabolito DOX cardio tóxico, doxorubicinol (DOXol), en lo biológico muestras de un modelo de tumor de mama preclínicos tratadas con nanopartículas formulaciones de combinación de fármacos sinérgicos.

Extracción de muestras y cuantificación cromatográfica simultánea de doxorrubicina y mitomicina C siguiendo la combinación del fármaco en nanopartículas en ratones con tumores

Combination chemotherapy is frequently used in the clinic for cancer treatment; however, associated adverse effects to normal tissue may limit its ...

El objetivo general de este protocolo analítico es extraer y cuantificar simultáneamente los dos fármacos anticancerígenos doxorrubicina y mitomicina C, administrados conjuntamente por nanopartículas híbridas polímero-lípido, y el metabolito de la doxorrubicina, doxorrubicinol, en matrices biológicas utilizando un método de cromatografía líquida de alta resolución de fase inversa simple y robusto. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la nanomedicina, como por ejemplo cómo diseñar un sistema nanoportador eficaz basado en la nanofarmacocinética de las combinaciones de fármacos. La principal ventaja de esta técnica es que permite la cuantificación simultánea de tres compuestos farmacológicos en la misma matriz biológica, sin necesidad de cambiar la fase móvil de la HPLC.Por lo tanto, este método puede proporcionar información sobre los comportamientos biológicos de la doxorrubicina, la mitomicina C y el doxorrubicinol en los tumores de mama primarios. También se puede aplicar a otros tipos de cáncer tratados con medicamentos similares. La demostración visual de este método es fundamental, ya que los pasos eficientes de preparación de muestras son difícil

sample-extraction-simultaneous-chromatographic-quantitation

Research

Investigación

JoVE Journal

Cancer Research

Investigación del cáncer

Insonación de microburbujas es una estrategia prometedora para la ablación del tumor en un promedio de reducción de tiempo de potencias acústicas, así como para la distribución selectiva de la terapéutica. El propósito del presente estudio es desarrollar estrategias de ultrasonido de baja deber ciclo de pulsación y nanotransportadores para maximizar no de ablación térmica microvascular y la entrega a la carga por vía subcutánea C6 gliomas.

Ecografía de contraste dirigidos tratamiento de los gliomas en ratones a través de la entrega de nanopartículas de drogas y la ablación Teniendo microvascular

Se describe un método para la formación de imágenes respuesta a tratamiento contra el...

Imágenes en directo de las respuestas de drogas en el microambiente tumoral en modelos de ratón de cáncer de mama

Este artículo detalla los procedimientos para el análisis de imágenes ópticas de las nanopartículas de tumor específico, Herdox. En particular, se describe aquí el uso detallada del dispositivo de formación de imágenes multimodo para la detección de tumor de la orientación y la evaluación de la penetración del tumor.

Análisis de la proteína viral dirigida Nanopartículas Entregado a tumores HER2 +

Un ejemplo de un fármaco de nano a base de ácido polimálico se presenta hacia el diseño racional de la medicina personalizada que es aplicable al cáncer. En él se describe la síntesis de un fármaco nano para tratar el cáncer de mama HER2-positivo humano en un ratón desnudo.

Biopolímeros Nano basados ​​en ácido polimálico de Focalización de múltiples Marcadores tumorales: una oportunidad para la medicina personalizada?

La acumulación intratumoral heterogénea de liposomas se ha relacionado con un microambiente tumoral anormal. En este trabajo se presentan métodos para medir la microcirculación tumoral mediante imágenes de perfusión y presión elevada del líquido intersticial (IFP) utilizando un sistema robótico guiado por imágenes. Las mediciones se comparan con la acumulación intratumoral de liposomas, determinada mediante microtomografía computarizada volumétrica.

Las mediciones espaciales de perfusión, presión del fluido intersticial y liposomas acumulación en tumores sólidos

Un protocolo para la preparación y caracterización de doxorrubicina lipofílica profármaco cargado 1,2-sn distearoyl- glicero-3-phosphoethanolamine- N - [amino (polietilenglicol) -2000] se describe (DSPE-PEG) micelas.

Preparación y caracterización de lipofílico Doxorrubicina micelas profármaco

Las nanopartículas están emergiendo sistemas de administración de fármacos como prometedores para una amplia gama de indicaciones. A continuación, describimos un método simple pero potente para la fabricación de nanopartículas de seda usando seda Bombyx mori ingeniería inversa. Estas nanopartículas de seda pueden ser cargados fácilmente con una carga útil terapéutica y posteriormente exploradas para aplicaciones de administración de fármacos.

Fabricación y entrega de medicamentos Aplicaciones de seda nanopartículas

La escasa comprensión del rendimiento in vivo de las nanomedicinas obstaculiza su traslación clínica. Aquí se describen los procedimientos para evaluar el comportamiento in vivo de los nanomedicamentos contra el cáncer a nivel sistémico, tisular, unicelular y subcelular en ratones inmunocompetentes portadores de tumores. Este enfoque puede ayudar a los investigadores a identificar nanomedicamentos prometedores contra el cáncer para su traslación clínica.

Un procedimiento adecuado para evaluar la<em&gt; En Vivo</em&gt; Rendimiento de cáncer Nanomedicinas

Proyección de imagen de células vivas es una poderosa herramienta para visualizar procesos dinámicos. El examen de las células fijas proporciona sólo imágenes estáticas, que pueden conducir a malas interpretaciones y confusión sobre el proceso. Este trabajo presenta un método para estudiar la absorción, liberación de fármaco y localización intracelular de la nanopartículas en las células vivas.

Usando In Vitro células vivas imágenes para explorar quimioterápicos entregado por nanopartículas basadas en lípidos

En este protocolo, las nanopartículas de oro modificadas con doxorrubicina AS1411-g-PEI-g-PEG se sintetizan a través de reacciones de amida de tres pasos. Luego, la doxorrubicina se carga y se administra a las células cancerosas diana para el tratamiento del cáncer.

Síntesis De Aptamer-PEI-g-PEG Nanopartículas De Oro Modificadas Cargadas Con Doxorrubicina Para La Administración De Fármacos Dirigidos

Aquí, describimos el protocolo para la administración in vivo de nanopartículas magnéticas de óxido de hierro portadoras de oligómeros de ARN al cáncer de mama metastásico en modelos animales, proporcionando un enfoque clínicamente viable para el silenciamiento terapéutico de ácidos nucleicos oncogénicos.

Monitorización de la acumulación de nanofármacos en metástasis de cáncer de mama murino

Aprende a extraer y cuantificar simultáneamente doxorrubicina, mitomicina C y doxorrubicinol en muestras biológicas mediante cromatografía líquida de alta resolución en fase reversa. Este método robusto facilita el estudio de nanofarmacocinética en tumores.

Extracción de muestras y cuantificación cromatográfica simultánea de doxorrubicina y mitomicina C siguiendo la combinación del fármaco en nanopartículas en ratones con tumores (Video) | JoVE Journal

Extracción de muestras y cuantificación cromatográfica simultánea de doxorrubicina y mitomicina C siguiendo la combinación del fármaco en nanopartículas en ratones con tumores

Explorar más videos