Préparation du tissu de vessie de souris pour la visualisation d’une infection bactérienne
Encyclopédie des expériences JoVE
Microbiologie
0 vues • 5:23 min • January 30th, 2026
Commençons par une souris euthanasiée avec une vessie exposée, pré-infectée par des bactéries pathogènes.
Les bactéries envahissent l’urothélium et forment des colonies. À maturité, ces bactéries rompent la cellule épithéliale et infectent les cellules environnantes.
Insérez un cathéter relié à une seringue remplie de fixateur. Instillez lentement le fixateur pour gonfler la vessie et préserver son architecture.
Clampez l’urètre pour conserver le fixateur et conserver la forme de la vessie.
Retirez la sonde, puis coupez l’urètre. Transférez la vessie dans un fixateur frais et incubez pour préserver la structure.
Séparez la vessie en deux demi-cubelets pour exposer l’urothélium, puis rincez avec un tampon.
Teignez avec un réactif à base de métal pour renforcer le contraste, puis lavez avec de l’eau ultrapure.
Déshydratez les sections à l’aide d’un gradient d’éthanol, suivi d’un séchage au point critique.
Coupez chaque coupe de vessie séchée en deux.
L’échantillon est désormais prêt pour un traitement en aval afin de visualiser les interactions hôte-pathogène.
Une fois la seringue à pointe coulissante à tuberculine avec fixateur, fixez un cathéter à l’extrémité, biseaument face aux marques de
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