Name: Une méthode de quantification sensible et spécifique pour la détermination de sérum myosine cardiaque Binding Protein-C par immuno-Electrochemiluminescence (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-08T11:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 12 s
Description: Découvrez une méthode d'immuno-électrochemiluminescence pour quantifier la myosine cardiaque Binding Protein-C dans le sérum. Cette technique sensible améliore le diagnostic de l'infarctus du myocarde.

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Cette étude a été financée par le National Institutes of Health des subventions R01HL105826 et K02HL114749 (Dr. Sadayappan) et américaines Bourses Midwest Heart Association; 11PRE7240022 (M. Barefield) et 13POST14720024 (Dr. Govindan). Les auteurs remercient l&#39;aide du Dr. Jimmy Page, Jill Clampit et le Dr John Hudson, MSD, pour leur excellent soutien technique et de la littérature dans le développement du dosage.

1. Uniplex cMyBP-C Assay <ol><li> La veille de l&#39;expérience, manteau de la plaque standard nu 96 puits MSD avec l&#39;anticorps de capture. Pour cMyBP-C, utiliser un volume 30 ul d&#39;anticorps anti-cMyBP-C monoclonal de souris (sans gélatine) à une concentration de 5 ug / ml dilué dans un tampon phosphate salin (PBS). </li><li> Comme le puits est hydrophobe, une pipette de la solution dans le coin inférieur du puits; puis sur les côtés de la plaque pour propager la solution sur l&#39;ensemble de puits. </li><li> La plaque est recouverte d&#39;un agent de scellement de la plaque et on incube O / N à 4 ° C sans agitation. </li><li> Retirer la solution d&#39;anticorps de capture en appuyant sur la solution au-dessus d&#39;un évier, puis sur une pile de serviettes en papier. La liaison non-spécifique de la plaque est bloquée par addition de 150 pi de 5% (p / v) bloquant une solution (BSA haute qualité) dans du PBS dans chaque puits. </li><li> Sceller la plaque et incuber pendant 1 heure à température ambiante tout en agitant à 700 rpm. </li><li> Au cours de l&#39;étape de blocage, préparer les normes et sexemples. Faire la série standard en diluant fragment de protéine recombinante cMyBP-C (acides aminés 1 à 271) à une concentration initiale de 2,000 ng / ml dans 1% (p / v) Un bloqueur / PBS. Puis diluer en série par un facteur de 5 à 1% (p / v) Un bloqueur / PBS. Nombre de normes 7 + une ébauche (1% (p / v) Un bloqueur / PBS seul) ont été utilisées. </li><li> Retirer la solution de blocage et laver la plaque 3x avec 150 pi 0,05% Tween-20/PBS (v / v). Chaque fois, retirez la solution de lavage par inversion de la plaque au-dessus d&#39;un évier. Après la troisième étape de lavage, faites glisser vigoureusement la plaque dessus d&#39;un évier et tapotez la plaque vigoureusement sur une couche de serviettes en papier jusqu&#39;à ce qu&#39;il soit complètement sec. Il s&#39;agit d&#39;une étape cruciale, les volumes d&#39;incubation sont de petite taille, et toute solution de lavage résiduelle va diluer considérablement la prochaine incubation. </li><li> Pipette 25 ul d&#39;étalons et des échantillons dans les puits. Sceller la plaque et incuber à température ambiante, tout en agitant à 700 rpm pendant 1 heure. </li><li> Préparer la solution d&#39;anticorps de détection à 1 pg / ml dans 1% bloqueur A / PBS. A custom fait anticorps cMyBP-C (épitopes des acides aminés 2-14) avec TMS sulfo TAG étiquetage sert de l&#39;anticorps de détection. Les kits sont disponibles pour SULFO-TAG étiquetage, ce qui en fait une procédure relativement simple pour étiqueter tout anticorps. </li><li> Répéter l&#39;étape de lavage comme décrit dans l&#39;étape 1.4. </li><li> Ajouter 25 ul de solution d&#39;anticorps de détection à chaque puits, sceller la plaque et incuber à température ambiante pendant 1 heure sur un agitateur de plaque fixée à 700 rpm. </li><li> Au cours de la période d&#39;incubation, exécutez MSD démo-plaque (plaque avec des lumières LED) pour assurer le bon fonctionnement de l&#39;imageur du secteur et le logiciel (voir section réactif). En outre, diluer la lecture du tampon, qui est fourni par TMS, par addition de 5 ml de tampon de lecture 4x à 15 ml d&#39;eau distillée. </li><li> Répéter l&#39;étape de lavage comme décrit dans l&#39;étape 1.4. </li><li> Ajouter 150 pi de tampon en lecture dans chaque puits à l&#39;aide d&#39;une pipette multicanaux. Soyez sûr d&#39;éviter les bulles d&#39;air (pipetage inverse est une méthode appropriée). Après addition de la lecture tampon, numériser immédiatement la plaque dans le secteurImager. </li></ol> 2. 3-plex cMyBP-C, CK-MB et troponine Ic Assay <ol><li> Une des solutions plaque de 96 puits 3-plex et le diluant sont s&#39;équilibrer à la température ambiante avant de l&#39;utiliser. Cette plaque est pré-revêtu avec des anticorps de capture pour cMyBP-C, la CK-MB, et la cTnI par MSD. </li><li> Ajouter 25 pi de 1% (p / v) bloqueur A / PBS dans chaque puits. Appuyez sur les côtés de la plaque de s&#39;assurer que l&#39;ensemble du bien est couvert par la solution. </li><li> Sceller la plaque avec un scellant pour plaques, placer la plaque sur une plaque shaker, secouez et à 700 rpm pendant 30 min. </li><li> Dans le même temps, une série de dilutions d&#39;étalons individuels est préparé. Parce que chacun a bien trois anticorps de capture trois étalons besoin d&#39;être mélangé et dilué en série avant l&#39;utilisation. Diluer cMyBP-C recombinante, CK-MB (MSD), et cTnI (MSD), ainsi que dans 1% (p / v) bloqueur A / PBS pour créer un échantillon avec 2.000 ng / ml cMyBP-C, 100 ng / ml CK- Mo, et 25 ng / ml cTnI (échantillon A). </li><li> Un volume final d&#39;au moins 100 l est préparée pour chaque standard. Pourterminer la série standard, diluer en série les échantillons sont par un facteur de 5. Utilisez 25 pl de l&#39;échantillon A dans 100 pi de 1% (p / v) bloqueur A / PBS pour créer l&#39;échantillon B. Ensuite, utilisez 25 pl de l&#39;échantillon B dans 100 pi de 1% (p / v) bloqueur A / PBS pour créer l&#39;échantillon C et ainsi de suite. Échantillons de sérum humain provenant de 16 sujets atteints d&#39;IM et 16 sujets témoins ont été utilisés pour mesurer cMyBP-C, CK-MB, et les niveaux de troponine Ic. Ces échantillons ont été dilués 2x à 1% (p / v) bloqueur A / PBS. </li><li> Ajouter 25 pl des étalons et des échantillons dilués dans les 25 ul déjà présents dans les puits de la plaque 3-plex. Il est important d&#39;inclure également un blanc (diluant seulement). Pour établir la technique, les échantillons sont chargés en triple techniques. Sinon, les doublons sont suffisantes. </li><li> Sceller la plaque à nouveau (plaque scellant peut être réutilisé) et incuber sur un agitateur plaque (700 rpm) à température ambiante pendant 2 heures. </li><li> Juste avant l&#39;incubation est terminée, la solution d&#39;anticorps de détection est préparé. Le diluant utilisé est de 1% (p / v) dans du PBS Un bloqueur. Tous THRdes anticorps de détection ee sulfo marqués sont dilués ensemble dans une concentration finale de 1 ng / ml. anticorps de détection sont généralement fournis à une concentration des stocks 50x. </li><li> Pour une plaque de 96 puits complète, 2.700 pi de solution diluée totale est nécessaire (avec erreurs de pipetage inclus). Ajouter 54 ul de chaque anticorps de détection à 2,538 pi 1% (p / v) bloqueur A / PBS. </li><li> Après 2 heures, retirez solutions en tapotant énergiquement la plaque au-dessus d&#39;un évier. Laver les puits 3 fois avec 150 pi de 0,05% de Tween 20 dans du PBS. Ajouter 25 pl de solution d&#39;anticorps de détection à chaque puits à l&#39;aide d&#39;une pipette à canaux multiples, et les côtés de la plaque sont exploitées afin d&#39;assurer que l&#39;ensemble du puits est recouvert d&#39;une solution. </li><li> Sceller la plaque et incuber pendant 1 heure en agitant à 700 rpm. </li><li> Au cours de la période d&#39;incubation, exécutez MSD démo-plaque (plaque avec des lumières LED) pour assurer le bon fonctionnement de l&#39;imageur du secteur et des logiciels. Diluer également la lecture tampon, qui est fourni par MSD, en ajoutant 5 ml de 4x lecturetampon à 15 ml d&#39;eau distillée. </li><li> Répéter l&#39;étape de lavage décrite à l&#39;étape 2.8. </li><li> Ajouter 150 pi de tampon de lecture à chaque puits en utilisant une pipette multicanaux. Éviter les bulles d&#39;air est critique (pipetage inverse est une méthode appropriée). Après addition de la lecture tampon, numériser immédiatement la plaque dans l&#39;imageur du secteur. </li></ol>

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</ol>

Une demande de brevet est en instance complète (Application de série n ° 13/464, 466, Pub No. US 2012/0282618 A1 et Date:. 05/04/12) afin de déterminer les facteurs de risque associés à la dégradation cMyBP-C et la libération dans le liquide du corps humain et quantifier le niveau de cMyBP-C dans un fluide corporel humain.

Dans cette étude, nous montrons l&#39;applicabilité d&#39;un test immunologique multiplex pour la détection de multiples biomarqueurs cardiaques dans le sérum de patients. Cette technique présente de nombreux avantages par rapport ELISA classique. Tout d&#39;abord, ECL dans le kit de dosage est utilisé à la place de la détection colorimétrique. En ECL, un signal électrique stimule la production locale de la propriété mesurée (lumière), ainsi découpler l&#39;événement de stimulation du signal, ce qui réduit fond 14....

La mesure de faibles quantités de protéines dans des échantillons biologiques complexes comme le sérum, est d&#39;une importance croissante pour la gestion clinique des patients, ainsi que la science fondamentale. Par exemple, une augmentation des taux sériques de biomarqueurs cardiaques, tels que la troponine I, dans un contexte clinique est compatible avec infarctus aigu du myocarde (MI) 1. Pour détecter les protéines dans des échantillons de sérum, le dosage immuno-enzymatique standard (ELISA) est la technique la plus souvent utilisée car elle a une sensibilité élevée et permet une quantification absolue de l&#39;analyte. Toutefois, les tests ELISA traditionnelles exigent une quantité relativement importante de l&#39;échantillon (typiquement 100 pi), avoir un signal de fond élevé dans certains liquides biologiques, et sont limités à la mesure d&#39;un seul analyte par ELISA 2. Récemment, une nouvelle technique de dosage immunologique a été introduit qui contourne la plupart de ces inconvénients. Ce test modifié, développé par MSD, utilise electrochemiluminescrence (ECL) pour la détection des signaux, ce qui permet pour un fond très faible et d&#39;une sensibilité accrue, ce qui permet l&#39;utilisation de petits volumes d&#39;échantillons. Électrochimioluminescence est basé sur la molécule rapporteur du ruthénium (II) trisbipyridal, qui est fixé à l&#39;anticorps de détection. Cette molécule rapporteur émet de la lumière à 620 nm lors de la stimulation électrique du bas de la plaque à 96 puits, qui comporte des électrodes de carbone intégrées dans les trois. En outre, en utilisant un revêtement par points, plusieurs anticorps de capture peuvent être enrobés dans un puits (jusqu&#39;à 10 sur une plaque 96 puits), ce qui permet, pour la quantification simultanée de plusieurs protéines dans un échantillon unique 4. Cette technique a été utilisée récemment pour mesurer les profils de cytokines pro-inflammatoires dans le sérum 5,6. Les plaques de multiplex de MSD se comparent favorablement à d&#39;autres plates-formes de dosage multiplex 7. Utilisation de MSD en tant que plateforme d&#39;analyse primaire, nous avons encore développé une coutume fait plaque 3-plex qui cune quantifier simultanément le niveau de la myosine cardiaque protéine de liaison-C (cMyBP-C), la créatine kinase MB (CK-MB) et la troponine I cardiaque (cTnI), et les résultats ont été comparés avec détection monoplex de cMyBP-C. CK-MB et troponine Ic sont des biomarqueurs bien établies pour MI. Cependant, les augmentations de ces biomarqueurs peuvent être causés par des pathologies autres que MI, par exemple, une myocardite ou une insuffisance rénale 8. Ceci plaide pour l&#39;ajout de biomarqueurs supplémentaires pour augmenter la spécificité du diagnostic MI. Nous avons récemment montré que cMyBP-C est également un biomarqueur potentiel de MI 9. cMyBP-C est une protéine associée à filament épais qui est exprimé dans le cœur, 10-12, mais pas dans les muscles squelettiques ou lisse. Ainsi, l&#39;augmentation du niveau de cMyBP-C dans le système circulatoire est un indicateur spécifique de lésions cardiaques 13. Dans cette étude, nous avons comparé la détection Uniplex de cMyBP-C avec l&#39;utilisation d&#39;un test 3-plex coutume de mesurer les taux sériques decMyBP-C, CK-MB et troponine Ic dans le sérum des patients atteints d&#39;infarctus du myocarde. Dans l&#39;avenir, cette technique de signature peut être utilisée pour diagnostiquer IM chez les patients présentant des douleurs à la poitrine dans la salle d&#39;urgence. La commission d&#39;examen institution (IRB) de l&#39;Université Loyola de Chicago a approuvé l&#39;étude pour l&#39;utilisation des échantillons humains rendues anonymes et l&#39;utilisation de l&#39;immuno-essai (LU # 20392).

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagents</td></tr><tr><td>MSD Read-Buffer T (4X) avec tensioactif</td><td>Meso Scale Discovery</td><td>R92TC-2</td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Acros</td><td>9005-64-5</td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>MSD Blocker A</td><td>Meso Scale Discovery</td><td>R93BA-1</td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>Solution saline tamponnée au phosphate, 10X</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP399-4</td><td>Filtrer avant utilisation</td></tr><tr><td>Anticorps de la protéine C de liaison à la myosine, monoclonal de souris (E7), sans gélatine</td><td>Santa Cruz</td><td>SC-137180L</td><td>Pour l’enrobage, l’anticorps doit être sans</td></tr><tr> gélatine<td colspan="4">Plaques et équipement</td></tr><tr><td>Multi-Array Plaque standard à 96 puits</td><td>Meso Scale Discovery</td><td>L15XA-3</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Un prototype de plaque 3-plex, quatre points, à 96 puits avec cMyBP-C, cTnI et CK-MB</td><td>Meso Scale Discovery</td><td>N452A-1</td><td>.</td></tr><tr><td>Pellicule d’étanchéité ThermaSeal</td><td>Produits des sciences de la vie Inc.</td><td>ST-3098</td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>MSD SECTOR Imager 2400A</td><td>Meso Scale Discovery</td><td></td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>Agitateur de microtitration numérique MTS 2/4</td><td>IKA</td><td>3208001</td><td>&nbsp ;</td></tr></tbody></table>

une méthode de quantification sensible et spécifique pour la détermination de sérum myosine cardiaque binding protein-c par immuno-electrochemiluminescence

A Sensitive and Specific Quantitation Method for Determination of Serum Cardiac Myosin Binding Protein-C by Electrochemiluminescence Immunoassay

Les biomarqueurs sont de plus en plus en plus important dans la prise de décision clinique, ainsi que la science fondamentale. Diagnostic de l&#39;infarctus du myocarde (IM) est en grande partie entraînée par la détection de protéines spécifiquement cardiaque dans le sérum ou le plasma de patients comme indicateur de la lésion du myocarde. Ayant récemment montré que la myosine cardiaque protéine de liaison-C (cMyBP-C) est détectable dans le sérum après un IM, nous avons proposé comme un biomarqueur potentiel de MI. Les biomarqueurs sont généralement détectés par alternance enzyme-linked tests immuno traditionnels. Toutefois, cette technique nécessite un grand volume de l&#39;échantillon, a une faible plage dynamique, et permet de mesurer une seule protéine à la fois. Ici, nous montrons un test immunologique multiplex dans lequel trois protéines cardiaques peuvent être mesurés simultanément avec une grande sensibilité. Mesure cMyBP-C dans Uniplex ou avec de créatine kinase MB et la troponine I cardiaque ont montré une sensibilité comparable. Cette technique utilise la méso échelle Discovery(MSD) méthode de multiplexage dans une plaque de 96 puits combiné avec électrochimiluminescence pour la détection. Bien que de petites quantités d&#39;échantillons sont nécessaires, une grande sensibilité et une grande plage dynamique sont atteints. Grâce à cette technique, nous avons mesuré cMyBP-C, la créatine kinase MB et la troponine cardiaque niveaux I dans des échantillons de sérum de 16 sujets atteints d&#39;IM et comparé les résultats avec 16 sujets témoins. Nous avons pu détecter tous les trois marqueurs dans ces échantillons et découvert les trois biomarqueurs être augmentée après MI. Cette technique est donc adapté à la détection sensible des biomarqueurs cardiaques dans des échantillons de sérum.

Les principes de base et le workflow de l&#39;essai 3-plex sont présentés dans la figure 1, et le flux de travail global est décrite dans le tableau 1. Dosages Uniplex travaillent sur le même principe sauf que l&#39;ensemble de fond de puits est recouvert d&#39;un anticorps de capture. la détection du signal est effectuée par ECL dans lequel un signal électrique est appliqué à la partie inférieure du puits. Ceci, en retour, initie une production locale de la lumière à travers une réacti...

Biomarqueurs de mesure dans des échantillons biologiques complexes est de plus en plus guident prise de décision clinique. Nous décrivons une méthode très sensible pour mesurer simultanément la myosine cardiaque protéine de liaison-C, la créatine kinase MB et la troponine I cardiaque dans le sérum de sujets atteints d&#39;infarctus du myocarde et de sujets témoins en bonne santé.

Une méthode de quantification sensible et spécifique pour la détermination de sérum myosine cardiaque Binding Protein-C par immuno-Electrochemiluminescence

Biomarkers are becoming increasingly more  important in clinical decision-making, as well as basic science. Diagnosing  myocardial infarction (MI) is ...

L'objectif général de cette procédure est de quantifier simultanément la protéine C liant la myosine cardiaque et la troponine I cardiaque dans des échantillons sériques. Cela est réalisé en revêtant d'abord une plaque de 96 puits avec un anticorps dirigé contre la protéine C liant la myosine cardiaque pour un dosage en plex, ou en utilisant un dosage triplex précodé. Dans la deuxième étape, les plaques revêtues sont incubées avec des étalons et des échantillons sériques.Ensuite, dans l'étape finale, des anticorps de détection marqués sont ajoutés, produisant un signal chimiluminescent détecté par le lecteur de plaques. En fin de compte, les concentrations des protéines cardiaques d'intérêt présentes dans les échantillons sériques peuvent être déterminées par des immunodosages simples ou multiplex. La veille de l'expérience, pipeter 30 microlitres d'anticorps monoclonal murin anti-protéine C de liaison à la myosine cardiaque, sans gélatine, dans l'angle inférieur de chaque puits d'une plaque standard découverte bare en échelle micro, 96 puits.Ensuite, tapez doucement sur les côtés de la plaque pour répartir la solution d'anticorps sur le fond de chaque puits. Après scellement, incubez la plaque toute la nuit à quatre degrés Celsius sans agitation. Le lendemain matin, videz la solution au-dessus d'un évier, puis sur une pile de serviettes en papier.Ensuite, ajouter 150 microlitres de 1 % blocker A dans du PBS dans chaque puits afin de bloquer les liaisons non spécifiques. Incuber la plaque scellée pendant une heure à température ambiante sous agitation à 700 tr/min pendant l'étape de blocage, puis diluer le fragment recombinant de la protéine C de liaison à la myosine cardiaque à une concentration initiale de 2000 nanogrammes par millilitre dans du 1 % blocker A dans du PBS. Ensuite, diluer cette solution de manière sérielle d’un facteur cinq, pour un total de sept étalons.Retirez maintenant la solution de blocage comme vient de l'être démontré, puis lavez la plaque trois fois avec 150 microlitres de Tween 20 à 0,05 % dans le PBS. Après le troisième lavage, secouez énergiquement la plaque au-dessus d'un évier, puis tamponnez fermement la plaque sur une couche de papier absorbant jusqu'à ce qu'elle soit complètement sèche. Ensuite, pipetez 25 microlitres de chaque étalon et échantillon dans les puits appropriés.Ensuite, pendant que la plaque scellée incube pendant une heure à température ambiante sur l’agitateuse, diluez l’anticorps de détection personnalisé de la protéine C liant la myosine cardiaque marqué au sulfoag à une concentration de un microgramme par millilitre dans du bloqueur A à 1 % dans du PBS. Après avoir soigneusement lavé la plaque comme précédemment démontré, ajoutez 25 microlitres de la solution d’anticorps de détection dans chaque puits, puis incubez la plaque scellée pendant une heure à température ambiante sous agitation pendant la période d’incubation. Exécutez la plaque de démonstration avec les lumières LED afin de vérifier le bon fonctionnement du lecteur sectoriel et du logiciel ; diluez également le tampon Reid à ce moment-là. Après avoir soigneusement lavé la plaque comme précédemment démontré, utilisez une pipette multicanal pour ajouter 150 microlitres de tampon Reid dans chaque puits en prenant soin d’éviter les bulles d’air, puis analysez immédiatement la plaque dans le lecteur sectoriel avant de commencer le dosage triplex.Laisser la plaque 96 puits pour test triplice et les solutions de diluant s'équilibrer à température ambiante. Ajouter ensuite 25 microlitres de bloqueur A à 1 % dans du PBS dans la plaque, en veillant à ce que tout le fond du puits soit recouvert de solution, puis incuber la plaque scellée à température ambiante pendant 30 minutes sous agitation. Pendant ce temps, diluer conjointement la protéine C de liaison à la myosine cardiaque, la C-K-M-B recombinante et la troponine I cardiaque dans du bloqueur A à 1 % dans du PBS afin de préparer un étalon contenant 2000 nanogrammes par millilitre de protéine C de liaison à la myosine cardiaque, 100 nanogrammes par millilitre de CKMB et 25 nanogrammes par millilitre de troponine I cardiaque.Je dilue ensuite cette mixture de façon sérielle d'un facteur cinq jusqu'à un volume final d'au moins 100 microlitres, puis je dilue deux fois chaque échantillon standard avec 1 % du bloqueur A dans du PBS. Ensuite, ajouter deux réplicats techniques de 25 microlitres des étalons ainsi que des échantillons aux 25 microlitres de tampon de blocage déjà présents dans les puits de la plaque tripleplex ; inclure un témoin négatif contenant uniquement le diluant. Après avoir incubé la plaque scellée sous agitation, diluer ensemble les trois anticorps de détection SUL oag jusqu'à une concentration finale de un microgramme par millilitre chacun, dans une solution de 1 % du bloqueur A dans du PBS, après deux heures. Laver la plaque comme précédemment démontré, puis utiliser une pipette multicanal pour ajouter 25 microlitres de la solution d'anticorps de détection à chaque puit.Incuber correctement la plaque scellée pendant une heure tout en agitant à 700 tr/min durant la période d'incubation. Exécuter la plaque de démonstration et diluer le tampon Reid comme vient de l'être démontré. Ensuite, après avoir lavé la plaque avec du PBS contenant 0,05 % de Tween 20, utiliser la pipette multicanal pour ajouter 150 microlitres de tampon Reid dans chaque puits en évitant les bulles d'air, puis analyser immédiatement la plaque dans l'imager sectoriel.Dans cette figure, la courbe standard de la protéine C de liaison à la myosine cardiaque dans le test en plex est comparée à celle de la protéine C de liaison à la myosine cardiaque dans le test en trois plex. Les deux tests présentent une sensibilité très élevée et une large plage dynamique. La zone de détection du test est affichée en gris, pour les tests en plex et en trois plex.Les courbes standards de la protéine C liant la myosine cardiaque sont similaires. Les limites de détection, les limites inférieures de quantification et les limites supérieures de quantification sont comparables dans les dosages en plex et en troisplex. Ces graphiques montrent les courbes standards de la troponine I cardiaque et de la CKMB sur la plaque en troisplex.Les deux étalons ont montré une sensibilité élevée et une grande plage dynamique. La zone de détection du test est indiquée en gris. La réactivité croisée des anticorps de détection avec les deux autres étalons a été étudiée en incubant les courbes standards individuelles des trois étalons avec des anticorps de détection uniques ; une faible quantité de réactivité croisée a été observée entre l'étalon CKMB et les anticorps de détection dirigés contre la troponine I cardiaque ainsi que la protéine C de liaison à la myosine cardiaque.Bien qu'aucune réactivité croisée n'ait été observée entre les autres étalons et les anticorps de détection, preuve de l'applicabilité du test pour la détection d'une lésion cardiaque, les concentrations sériques de 16 sujets présentant un infarctus du myocarde ont été comparées à celles d'un groupe témoin à l'aide du taux sérique sur plaque triplex de la protéine C de liaison à la myosine cardiaque-C-K-M-B et de la troponine cardiaque. Les concentrations des trois biomarqueurs se sont révélées augmentées chez les patients présentant un infarctus du myocarde par rapport au groupe témoin.

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Une méthode de quantification sensible et spécifique pour la détermination de sérum myosine cardiaque Binding Protein-C par immuno-Electrochemiluminescence (Vidéo) | JoVE Journal

Une méthode de quantification sensible et spécifique pour la détermination de sérum myosine cardiaque Binding Protein-C par immuno-Electrochemiluminescence

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