-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

FR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

French

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
La technique d'infiltration-centrifugation pour l'extraction de apoplastique Fluid feuilles des p...
La technique d'infiltration-centrifugation pour l'extraction de apoplastique Fluid feuilles des p...
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
The Infiltration-centrifugation Technique for Extraction of Apoplastic Fluid from Plant Leaves Using Phaseolus vulgaris as an Example

La technique d'infiltration-centrifugation pour l'extraction de apoplastique Fluid feuilles des plantes Utilisation Phaseolus vulgaris, Un exemple

Full Text
38,644 Views
10:26 min
December 19, 2014

DOI: 10.3791/52113-v

Brendan M. O'Leary1, Arantza Rico2, Sarah McCraw1, Helen N. Fones3, Gail M. Preston1

1Department of Plant Sciences,University of Oxford, 2School of Education of Vitoria-Gasteiz,University of the Basque Country (UPV/EHU), 3Biosciences,University of Exeter

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ce protocole détaille l’extraction optimisée du liquide de lavage de l’apoplast à partir des feuilles de plantes, en utilisant des plants de haricot vert (Phaseolus vulgaris) comme exemple modèle.

L’objectif de cette procédure est de démontrer l’extraction d’un liquide aplasique à partir des feuilles des plantes à l’aide de la technique de centrifugation par infiltration. Pour ce faire, il suffit d’immerger d’abord une feuille dans un fluide d’infiltration et d’utiliser les différences de pression générées à l’aide d’une seringue ou d’une pompe à vide pour l’infiltrer complètement. La deuxième étape consiste à préparer la feuille à centrifuger à l’aide d’un appareil de support.

Ensuite, la feuille est délicatement centrifugée pour obtenir le liquide de lavage APO plast. La dernière étape consiste à déterminer le facteur de dilution de l’APO plast et à analyser la qualité du liquide de lavage en last. En fin de compte, le test de centrifugation par infiltration est utilisé pour obtenir des échantillons représentatifs de plastique APO qui peuvent être utilisés pour une variété d’analyses en aval.

Le principal avantage de cette technique par rapport aux autres méthodes existantes est qu’il est simple d’optimiser pour une variété de types de feuilles afin d’obtenir des échantillons supérieurs plus qui ont une contamination minimale par des composés cytoplasmiques. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans des domaines tels que la physiologie végétale et les interactions entre les microbes végétaux, où il est important de comprendre comment la composition des APL varie entre les plantes et change dans différentes conditions physiologiques ou stress. Dans un premier temps, prenez des précautions de sécurité en portant une blouse de laboratoire, un gant et des lunettes de protection.

Ensuite, préparez un volume d’eau distillée dans lequel immerger l’échantillon de feuilles. Ayez une lame de rasoir prête à prélever un échantillon, dans ce cas, une feuille du cultivar de haricot vert tendre. Placez la lame de rasoir contre l’animal d’une feuille et fixez la feuille de la plante.

Une fois recueillie, immergez la feuille fraîchement excisée dans de l’eau distillée pour éliminer les contaminants de surface des feuilles. Ensuite, utilisez un mouchoir ou du papier absorbant pour bloquer doucement la feuille. Mesurez le poids des feuilles avant de procéder à l’infiltration.

Cela aidera plus tard à estimer le volume d’infiltration. Démarrez le processus d’infiltration avec une seringue de 60 millilitres. Une fois son piston retiré, roulez et/ou pliez soigneusement la feuille dans la seringue.

Ensuite, remplissez la seringue de liquide d’infiltration. Ici, de l’eau distillée est utilisée. Insérez le piston et retournez la seringue pour éjecter l’air qu’elle contient.

Notez la couleur des feuilles pour une comparaison ultérieure. Déplacez le piston jusqu’à la marque des 40 millilitres à l’aide d’un petit morceau de para param. Couvrez l’embout de la seringue.

Tirez ensuite le piston jusqu’à la marque des 60 millilitres pour créer une pression négative. Retournez la seringue pour libérer les bulles d’air de la surface de la feuille. Remettez lentement le piston à la position de départ pendant environ deux secondes.

Découvrez l’embout de la seringue et éjectez l’air. Ensuite, couvrez à nouveau l’embout et appuyez sur le piston pour créer une modeste quantité de pression positive. Continuez à appliquer une pression négative en éjectant de l’air et en appliquant une pression positive jusqu’à ce que le vantail soit complètement infiltré.

La preuve d’une infiltration totale est la couleur foncée des zones infiltrées. Une fois que vous l’avez vu, retirez la feuille de la seringue. Bloquez doucement la feuille avec du papier absorbant pour enlever le liquide de surface.

Mesurez ensuite le poids de la feuille infiltrée, et une autre méthode d’infiltration utilise une fiole sous vide. Encore une fois, récupérez une feuille et rincez-la à l’eau distillée. Après l’avoir séché au jet rapide, mesurez le poids des feuilles.

Procurez-vous une gourde d’arme de poing d’une capacité minimale de 250 millilitres. Placez la feuille dans la fiole et couvrez-la d’eau distillée. Ensuite, placez un bouchon dans le flacon et fixez une pompe à vide sur le bras de poing.

Appliquez un vide dans le ballon suffisamment longtemps pour obtenir une pression. Environ 650 millimètres de mercure. Agitez doucement le ballon pour libérer les bulles d’air de la feuille sous une pression réduite.

Ensuite, relâchez soigneusement et lentement le vide pendant environ 10 secondes. Répétez le processus d’application du vide, d’agitation de la fiole et de relâchement du vide jusqu’à ce que la feuille soit complètement infiltrée. La preuve d’une infiltration totale est la couleur foncée des zones infiltrées.

Retirez la feuille complètement infiltrée de la fiole et épongez doucement la feuille avec du papier absorbant. Pour éliminer le liquide de surface, mesurez le poids de la feuille infiltrée afin de permettre de déterminer le volume approximatif d’infiltration. Une fois qu’une feuille a été complètement infiltrée, préparez-la pour la centrifugation.

Étalez un morceau de film para de quatre pouces de large. Placez la feuille sur le film para. Ensuite, à l’aide d’une pointe de pipette de cinq millilitres, enroulez la feuille dans le film para

.

Prenez un corps de seringue de 20 millilitres avec le piston retiré et insérez la feuille enroulée avec la pointe de la pipette. Positionnez les bords des feuilles coupées et faites face à l’extrémité du piston. Procurez-vous un tube en polyéthylène ou en polycarbonate de 50 millilitres et insérez-y la seringue.

Utilisez une centrifugeuse avec un rotor à godets oscillants. Chargez le tube contenant la feuille infiltrée et la centrifugeuse de quatre degrés Celsius et 1000 G pendant 10 minutes. Après la centrifugation, examinez la feuille pour déterminer si la majorité du liquide d’infiltration a été expulsée.

Le tube de centrifugation contient maintenant le liquide de lavage APO plast récupéré et continuez en pipetant le liquide de lavage alast récupéré dans des tubes frais de 1,5 millilitre. Placez les échantillons de liquide de lavage APO plast dans la centrifugeuse et faites-les tourner à 15 000 G pendant cinq minutes pour éliminer les cellules ou les particules. Après la centrifugation, pipeter le supinat dans des tubes frais.

Conservez les échantillons sur de la glace jusqu’à ce qu’ils puissent être conservés à moins 80 degrés Celsius. Une méthode pour évaluer la qualité du liquide de lavage de plaque APO consiste à calculer le facteur de dilution de plaque APO. Pour ce faire, préparez deux volumes d’eau distillée de liquide d’infiltration dans ce cas chacun suffisant pour plusieurs infiltrations à un volume.

Ajouter la poudre de carmin d’indigo à une concentration finale de 50 micromolaires. N’ajoutez rien à l’autre. Obtenez une microplaque de 96 puits remplissez trois puits avec 200 microlitres de solution d’infiltration.

Avec du carmin d’indigo, remplissez trois autres avec 200 microlitres de la solution d’infiltration pure pour baser la microplaque dans le lecteur pour mesurer l’absorbance de chaque fluide. À 610 nanomètres, l’absorbance moyenne d’un fluide contenant du carmin d’indigo moins l’absorbant moyen d’un fluide sans, ce qui donne l’absorbance corrigée de l’infiltrat. Ensuite, répétez le protocole d’infiltration des feuilles trois fois pour chacune des solutions d’infiltration.

Immergez un échantillon de feuille dans l’eau. Appliquez une pression négative et positive lors de l’utilisation de la solution d’infiltration de carmin d’indigo, rincez les feuilles à l’eau distillée après l’infiltration pour éliminer tout carmin d’indigo restant de la surface des feuilles. Récupérer un liquide de lavage par centrifugation.

Après avoir récupéré le liquide de lavage alast, retournez dans le lecteur de plaques dans les puits de la microplaque. Placé 200 microlitres de chacune des extractions sans carmin d’indigo, ainsi que 200 microlitres de chaque extraction de liquide de lavage au carmin d’indigo. Mesurer l’absorbance des échantillons à 610 nanomètres pour obtenir l’absorbance corrigée.

Faites la moyenne de chaque série de chiffres et prenez la différence. Utiliser l’absorbance corrigée de l’infiltrat et l’absorbance corrigée du liquide de lavage aplasique pour déterminer le facteur de dilution APL afin d’obtenir des estimations des concentrations ou des activités dans le liquide aplasique. L’implanteur multiplie les valeurs de concentration ou d’activité du liquide de lavage par le facteur de dilution extrait du cultivar fasi vulgaris.

Le vert tendre a été utilisé pour produire cette chromatographie en phase gazeuse à spectre de masse d’acides organiques. Les sucres simples et les acides aminés représentent la majeure partie des métabolites identifiables. Voici une comparaison de la page SDS, gels de coloration Kumasi de fasi vulgarus alast extraits de feuilles de liquide de lavage.

Les extractions diffèrent par la quantité de contamination cytoplasmique. Ceci est observé sous la forme de différentes quantités de l’enzyme de plâtre rubis. Lors de l’exécution de cette procédure, il est important de se rappeler d’être au moins aussi doux que possible pour éviter de causer des lésions tissulaires ou une contamination cytoplasmique Suite à cette procédure.

D’autres méthodes telles que la spectrométrie de masse des protéines ou des métabolites peuvent être effectuées afin de répondre à des questions supplémentaires concernant la composition du fluide aplasique. Le liquide de lavage aplasique peut également être utilisé comme milieu grossier pour étudier l’effet des produits chimiques aplasiques sur les micro-organismes qui colonisent les tissus végétaux.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Biologie végétale Numéro 94 apoplaste apoplaste fluide de lavage les feuilles des plantes infiltration-centrifugation métabolisme de la plante la métabolomique chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse

Related Videos

Extraction des bactéries apoplasiques à l’aide d’une méthode de pression à base de seringue

02:28

Extraction des bactéries apoplasiques à l’aide d’une méthode de pression à base de seringue

Related Videos

181 Views

Collecte et analyse des Arabidopsis Phloème exsudats Utilisation de la méthode EDTA-animé

09:38

Collecte et analyse des Arabidopsis Phloème exsudats Utilisation de la méthode EDTA-animé

Related Videos

25.5K Views

Interactions protéine-protéine visualisés par fluorescence bimoléculaire complémentation en protoplastes de tabac et des feuilles

11:10

Interactions protéine-protéine visualisés par fluorescence bimoléculaire complémentation en protoplastes de tabac et des feuilles

Related Videos

21.8K Views

Peptide dérivé Méthode du transport des gènes et des protéines Across cellulaire et obstacles organites dans les plantes

08:48

Peptide dérivé Méthode du transport des gènes et des protéines Across cellulaire et obstacles organites dans les plantes

Related Videos

11.1K Views

Échantillonnage de Sap de phloème de Brassica napus pour 3D-PAGE des protéines et des Complexes ribonucléoprotéiques

11:23

Échantillonnage de Sap de phloème de Brassica napus pour 3D-PAGE des protéines et des Complexes ribonucléoprotéiques

Related Videos

14.5K Views

Expression transitoire de Nicotiana Benthamiana quitte pour triterpène Production à l’échelle préparative

08:56

Expression transitoire de Nicotiana Benthamiana quitte pour triterpène Production à l’échelle préparative

Related Videos

18.2K Views

Isolement de gouttelettes lipidiques de plastoglobule à partir de tissus foliaires végétaux et de cyanobactéries

10:35

Isolement de gouttelettes lipidiques de plastoglobule à partir de tissus foliaires végétaux et de cyanobactéries

Related Videos

3.4K Views

Analyse unicellulaire de l’expression des gènes de Pseudomonas syringae dans le tissu végétal

07:35

Analyse unicellulaire de l’expression des gènes de Pseudomonas syringae dans le tissu végétal

Related Videos

2.4K Views

Agro-infiltration forcée sous vide pour la transformation in planta de plantes récalcitrantes : le cacao comme étude de cas

05:52

Agro-infiltration forcée sous vide pour la transformation in planta de plantes récalcitrantes : le cacao comme étude de cas

Related Videos

3.8K Views

Méthode basée sur l’extraction Apoplast pour améliorer la pureté d’une protéine recombinante produite par une plante

05:33

Méthode basée sur l’extraction Apoplast pour améliorer la pureté d’une protéine recombinante produite par une plante

Related Videos

2.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code