Name: Application de Codé génétiquement fluorescent oxyde nitrique (NO •) Sondes, les geNOps, pour limagerie en temps réel de NO • Les signaux dans les cellules simples (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 32 s
Description: Découvrez l'imagerie en temps réel du monoxyde d'azote dans les cellules individuelles à l'aide des sondes génotiquement encodées geNOps. Cette méthode permet de visualiser les signaux NO• avec une haute résolution spatiale et temporelle.

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Les auteurs remercient C.J. Edgell, Département de pathologie, Université de Caroline du Nord à Chapel Hill, Caroline du Nord, États-Unis, pour avoir fourni les cellules EA.hy926. L’auteur E.E. est soutenu par Nikon Autriche au sein du Nikon-Center of Excellence de Graz et est membre du programme de doctorat en médecine moléculaire de l’Université de médecine de Graz. Les chercheurs sont également soutenus par le programme de doctorat sur les maladies métaboliques et cardiovasculaires (DK-W1226) de l’Université de médecine de Graz. Ce travail a également été financé par le projet FWF P 28529-B27. L’équipement microscopique fait partie du Nikon-Center of Excellence de Graz, soutenu par le programme d’infrastructure autrichien 2013/2014, Nikon Austria Inc. et BioTechMed, Graz.

1. Préparation de Tampons et solutions chimiques <ol><li> Préparer un tampon de stockage contenant 135 mM de NaCl, 5 mM de KCl, 2 mM de CaCl2, 1 mM de MgCl2, 10 mM HEPES, 2,6 mM NaHCO3, 0.44 mM de KH 2 PO 4, 0,34 mM de Na 2 HPO 4 mM , D - 10 glucose, 2 mM de l-glutamine, vitamines 1x MEM, 1x MEM acides aminés, 1% stylo streptocoque, et 1% amphotéricine B. Dissoudre tous les composants dans de l&#39;eau distillée et agiter le tampon pendant 20 minutes en utilisant un agitateur magnétique à température ambiante. Ajuster le pH à 7,44 à l&#39;aide de NaOH 1 M. Lors de l&#39;addition goutte à goutte de NaOH, de mesurer le pH en utilisant un pH-mètre, tout en agitant en continu. </li><li> Préparer un rapport Ca 2+ contenant un tampon physiologique qui se compose de 140 mM de NaCl, 5 mM de KCl, 2 mM de CaCl2, 1 mM de MgCl2, 10 mM de D-glucose et 10 mM de HEPES. Ajuster le pH à 7,4 en utilisant du NaOH comme décrit dans l&#39;étape 1.1. </li><li> Préparer un tampon exempt de Ca2 + qui se compose des mêmes ingrédientscomme indiqué dans l&#39;étape 1.2. Utiliser EGTA 1 mM au lieu de 2 mM. </li><li> Solubiliser Fura-2 heures dans du DMSO pour obtenir une solution mère 1 mM. Aliquoter la solution mère dans des flacons hermétiquement fermés et conserver à -20 ° C pendant jusqu&#39;à un mois. En cas de gel, laisser la solution mère à équilibrer à la température ambiante pendant au moins 1 heure à l&#39;abri de la lumière. Diluer la solution stock Fura-2 heures dans 1 tampon de stockage de ml (étape 1.1) pour obtenir une concentration finale de 3,3 uM. </li><li> Préparer 1 ml d&#39;une histamine solution mère 100 mM dans de l&#39;eau distillée (pH 7,0). Diluer l&#39;histamine solution mère 100 mM dans 100 ml Ca 2+ contenant un tampon physiologique à une concentration finale de 100 uM d&#39; histamine. </li><li> Solubiliser Nω-nitro-L-arginine (L-NNA) dans 100 ml de tampon physiologique contenant du calcium pour obtenir une concentration finale de 300 uM. Stocker les solutions à 37 ° C bain d&#39;eau pendant au moins 1 heure jusqu&#39;à ce que la L-NNA est complètement dissous. </li><li> Solubiliser 10 mg CNP-7 wa distilléeter (pH 7,0) pour obtenir une solution mère à 10 mM. Aliquoter la solution mère dans de petites aliquotes dans des flacons hermétiquement fermés et stocker immédiatement à -70 ° C. Diluer la solution stock NOC-7 dans un tampon physiologique pour obtenir une concentration finale de 10 uM NOC-7. NOTE: NOC-7 est un petit composé chimique qui libère spontanément NO avec une demi-vie courte. Toujours préparer les tampons de travail qui consiste NOC-7 juste avant chaque expérience. </li><li> Préparer une solution de nitroprussiate de sodium 1 mM (SNP) dans un tampon physiologique de calcium et de préparer une dilution de 10 pm. NOTE: Toujours préparer de petites quantités (~ 10 ml) de solutions NO-donneurs en raison de la vitesse de dégradation rapide. </li><li> Préparer une solution tamponnée de phosphate (PBS) constitué de 137 mM de NaCl, 2,7 mM de KCl, 9,2 mM de Na 2 HPO 4 et 1,5 mM de KH 2 PO 4. Ajuster la valeur du pH à 7,44 avec du NaOH / HCl. </li></ol> 2. Préparation des cellules NOTE: En oRDONNANCE pour obtenir une uniformité des performances de la mesure de l&#39; oxyde nitrique (NO •) dans des cellules individuelles à l&#39; aide geNOps, les cellules doivent être pré-incubées avec un fer (II) / vitamine C , contenant un tampon avant les expériences d&#39;imagerie afin de rétablir Fe 2+ dans le NO • domaine liant le du NO • -probes. Dans le cas des cellules EA.hy926 et HEK293, incubation pendant 20 minutes avec le fer (II) solution de rappel conduit à l&#39;activation complète des NO • capteurs. <ol><li> Graine de 5,5 x 10 5 EA.hy926 ou cellules HEK293 pour le lendemain ou 3,5 x 10 5 cellules pour le jour après jour suivant, le 30 mm couverture de microscope verres dans un puits d&#39;une plaque à 6 puits. Incuber les cellules à 37 ° C dans un environnement humidifié à 5% de CO 2. NOTE: Des informations détaillées concernant une infection adénovirale de cellules de mammifères et la construction de virus a été décrit par Zhang et al. 25. Cette étape ne concerne pas les cellules HEK 293 exprimant de manière stable G-GENOP. </li><li> Prenez le sérum de veau foetal (FCS) et l&#39;aigle de milieu modifié de Dulbecco (DMEM) sans antibiotique et ajouter le type de virus adéno-associé 5 (AAV5) vecteur portant le gène codant pour G-GENOP (MOI: 500 pour les cellules EA.hy926 rendement presque 100 % de cellules positives; MOI: 1 est efficace pour les cellules HEK293). NOTE: L&#39;utilisation de vecteurs viraux adéno-associés est affecté au groupe de risque 2. niveau de biosécurité 2 de confinement est généralement requis pour le travail avec ce vecteur. Le cas échéant, l&#39;infection par le virus peut également être effectuée dans du FCS contenant du milieu. Alternativement, les cellules peuvent être transfectées de manière transitoire en utilisant des supports à base de lipides-1. </li><li> Retirez le milieu de culture et laver les cellules avec pré-chauffé (37 ° C) PBS. Ajouter 1 ml de milieu DMEM / VAA5 dans chaque puits pendant 1 h. Cette étape ne concerne pas les cellules HEK 293 exprimant de manière stable G-GENOP. </li><li> Ajouter 1 ml de 20% de FCS contenant du DMEM à chaque puits à une concentration finale de 10% de FCS. Ne pas retirer le support AAV5 contenant des cellules. gentlemanly SEESAW la plaque pour homogénéiser le milieu dans les puits. Incuber les cellules pendant 48 heures à 37 ° C dans un environnement humidifié à 5% de CO 2. Cette étape ne concerne pas les cellules HEK 293 exprimant de manière stable G-GENOP. </li><li> Après 48 h, laver les cellules avec pré-chauffé PBS. ajouter ensuite 2 ml préchauffé tampon de stockage (section 1.1) à chaque puits et incuber les cellules à la salle RT pendant au moins 1 heure à l&#39;abri de rayonnement lumineux. </li><li> Remplacer le tampon de stockage avec 1 ml / puits de (II) une solution d&#39;amplificateur de fer à la température ambiante (RT). Incuber les cellules pendant exactement 20 minutes dans l&#39;obscurité. NOTE: Ne pas dépasser ou de réduire le temps d&#39;incubation optimal, car cela pourrait affecter la réactivité des NO • sondes. </li><li> Laver les cellules une fois avec du tampon de stockage et incuber chaque puits avec 2 ml de tampon de stockage pendant au moins 2 heures à température ambiante afin de permettre aux cellules d&#39;atteindre l&#39;équilibre. </li><li> Remplacer le tampon de stockage avec 3,3 uM de Fura-2 heures dans un tampon de stockage de 1 ml pendant 45 minutes à la température ambiante, à l&#39;abride la lumière. </li><li> Laver les cellules deux fois avec du tampon de stockage et incuber encore une fois pendant au moins 30 minutes afin de permettre aux cellules d&#39;atteindre l&#39;équilibre. </li></ol> 3. Imagerie de cellules vivantes NO • et Ca 2+ signaux dans les cellules individuelles <ol><li> Fixer une lamelle de 30 mm revêtu de cellules EAhy.926 ou HEK293 (de l&#39;étape 2.1) dans une chambre de perfusion en métal et placez-le sur le microscope. Connecter le tube d&#39;arrivée aux réservoirs de tampon et l&#39;efflux à une pompe à vide. Assurer un flux régulier et éviter la vidange de la lamelle. </li><li> Démarrer la perfusion par gravité avec un tampon physiologique de calcium (étape 1.2), en utilisant un système de perfusion semi-automatique. REMARQUE: Un tel système est constitué de réservoirs de tampon, les tubes respectifs, les vannes magnétiques qui sont commandés électroniquement et une pompe à vide (voir figure 1B). Le débit peut varier de 1 à 3 ml / min, dépendant de la hauteur des réservoirs de perfusion. Pour appli cohérentes de drogue locauxcation, le taux de tous les réservoirs utilisés de débit doit être à peu près égale. Ceci doit être testé avant des expériences d&#39;imagerie. Considérez que les cellules endothéliales répondent à une augmentation de la contrainte de cisaillement qui peut être induite par une perfusion rigoureuse. </li><li> Mettre en marche le système d&#39;imagerie et de permettre d&#39;échauffement de tous les dispositifs pendant 30 min. </li><li> Définir les paramètres d&#39;imagerie utilisant des logiciels respectifs. Sélectionnez la longueur d&#39;onde d&#39;excitation de 340 nm et 380 nm pour fura-2 imagerie et 480 nm pour exciter G-GENOP. Pour minimiser la fluorescence blanchiment augmenter le binning de la caméra à 4 et à réduire l&#39;intensité d&#39;excitation et des temps d&#39;exposition. Voir aussi les étapes 3,6-3,8. REMARQUE: Les paramètres d&#39;imagerie et les paramètres dépendent des appareils utilisés, fura-2 efficacité de chargement et de niveaux d&#39;expression G-GENOP. </li><li> Sélectionnez la région d&#39;imagerie en déplaçant le xyz table du microscope jusqu&#39;à ce que plusieurs cellules fluorescentes sont dans le foyer. Ensuite, définir des régions d&#39;intérêt (ROI) par l&#39;intermédiaire de l&#39;outil logiciel respectif. Dessinez régions couvrant plusieurs ensemble single cellules fluorescentes par champ d&#39;imagerie manuellement. En outre, définir une région d&#39;arrière-plan de taille similaire. NOTE: Une fois que les images ont été acquises et stockées ROIs peut également être défini récemment après le processus d&#39;imagerie pour l&#39;analyse en outre l&#39;utilisation des logiciels d&#39;analyse d&#39;imagerie respectifs (voir la liste des matériaux). </li><li> Début de la collecte des données sur un microscope à fluorescence inversé et avancé avec un étage d&#39;échantillon motorisé, et une source de lumière monochromatique. exciter alternativement à 340 nm et 380 nm pour le Fura-2 heures et à 480 nm pour le G-GENOP, respectivement. Régler les temps d&#39;exposition respectifs de telle sorte que pour tous les canaux, un signal de fluorescence clair est détectable au fil du temps. Voir aussi l&#39;étape 3.4. NOTE: Cela dépend de l&#39;intensité de la lumière d&#39;excitation et le binning de la caméra. Par exemple, utiliser 15% d&#39;intensité de la lumière d&#39;excitation, un binning de caméra de 4 et 150 ms pour 340 nm, 50 ms pour 380 nm, et 300 ms pour 480 nm. Voir aussi l&#39;étape 3.4. </li><li> Recueillir la lumière émise à 510 nm pour fura-2 / h, 520 nm pour G-Genop en utilisant un dispositif (CCD) à couplage de charge avec l&#39;ensemble de filtre approprié constitué de l&#39;excitateur de 500 nm, un dichroïque 495 nm et un émetteur 510-520 nm. Enregistrez un total d&#39;images toutes les 3 s. </li><li> Enregistrer les premières minutes ( le cas échéant jusqu&#39;à 3 min) dans un tampon physiologique Ca2 + (1,2) afin d&#39; obtenir la ligne de base des signaux de fluorescence respectifs dans le temps. </li><li> Une fois par fluorescence de base stable est observée, passer à 100 histamine uM ou ATP (1 uM ou 100 uM) contenant physiologique Ca 2+ tampon pour stimuler les cellules pendant 3 min. NOTE: Les cellules EA.hy926 qui répondent aux agonistes montrent une forte augmentation du ratio fura-2 (fluorescence excitée à 340 nm divisée par la fluorescence excitée à 380 nm) et une nette diminution du signal de fluorescence G-GENOP. </li><li> Revenez à la mémoire tampon physiologique Ca 2+ sans histamine ou ATP et L-NNA pendant 5 min pour éliminer les composés à partir des cellules. Cette étape peut être prolongée jusqu&#39;à ce que les fluoreschangements cence sont récupérés complètement. </li><li> Administrer 10 uM NOC-7 dans un tampon physiologique Ca2 + pendant 2 minutes en utilisant le système de perfusion. Le donneur NO affecte fortement G-GENOP fluorescence qui diminue habituellement par&gt; 20% en réponse à 10 uM NOC-7. Dans les cellules EA.hy926 l&#39;effet NOC-7 est d&#39;environ 3 fois plus forte par rapport à l&#39;agoniste du G-GENOP fluorescence induite par trempe. </li><li> Laver le NO • composé -releasing pendant environ 10 min avec Ca 2+ physiologique tampon et arrêter l&#39; enregistrement une fois la fluorescence basale est récupéré. </li></ol> Analyse 4. Données <ol><li> Exporter l&#39;acquisition des données d&#39;intensité de fluorescence moyenne des cellules individuelles au fil du temps, le logiciel d&#39;analyse de données. </li><li> Soustraire des valeurs de référence respectives, et calculer le rapport de 340 nm à 380 nm par des Fura-2 signaux respectifs de chaque cellule unique dans le temps. </li><li> Soustraire les valeurs de fond du canal G-GENOP pour obtenir la fl réelleuorescence intensité de la NO sonde (F) au fil du temps en utilisant un logiciel de calcul. </li><li> Prendre des valeurs de fluorescence de base en F 0 (F 0 est la fluorescence de la sonde de NO au cours du temps sans stimulation). Voir aussi l&#39; étape 4.5 et la figure 1C. </li><li> Calculer une fonction au fil du temps pour que les effets de fluorescence de blanchiment à l&#39; aide de l&#39;équation suivante: F = 0 F inital • exp (-K • Time) + F plateau. F inital: signal de fluorescence maximale une fois l&#39; imagerie est commencé; K: constante de taux de fluorescence de blanchiment au fil du temps; F plateau: fluorescence minimale atteinte par la décoloration au fil du temps; Voir aussi les étapes 4.3- 4.4 et Figure 1C. NOTE: Pour l&#39;approximation, toutes les valeurs de fluorescence au cours du temps avant et après la stimulation des cellules peuvent être utilisés. De plus amples détails sont précisés par Bentley et al. 27. </li><li> Pour normaliser le signal G-GENOP au fil du temps, calculer 1-F / F0 (étapes 4,3-4,5). Voir la figure 1C et 1D. </li></ol>

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EE, MW, RM et WFG, les membres de l&#39;Université médicale de Graz du personnel, ont déposé une demande au Royaume-Uni en matière de brevets (numéro de demande de brevet WO2015EP74877 20151027, numéro de priorité GB20140019073 20141027) qui décrivent les parties de la recherche dans ce manuscrit. Licences relatives à ce brevet sont fournies pour la prochaine génération d&#39; imagerie par fluorescence (NGFI) GmbH ( <a href="http://www.ngfi.eu/" target="_blank">http://www.ngfi.eu/</a> ), une société spin-off de l&#39;Université médicale de Graz.

Depuis la découverte de NO • comme une molécule de signalisation importante dans la biologie 28, la mesure spécifique en temps réel du radical dans des cellules individuelles, des tissus et des animaux entiers avec une haute résolution d&#39;une manière réaliste et fiable a été aspiré. Nous rapportons ici l&#39;application de récemment mis au point génétiquement codés fluorescents NO • sondes (geNOps) qui permettent précisément l&#39; imagerie des cellules vivantes de NO • signaux utilisant grand champ de microscopie par fluorescence 1. Pour contourner les procédures de transfection élaborées et invasives clone de cellules HEK qui exprime de manière stable fluorescente verte G-GENOP a été utilisé pour quantifier une seule cellule générée de manière exogène NO • profils. Comme les cellules HEK normalement ne produisent pas de manière endogène • NO 29, ce type de cellule est apte à la génération d&#39;une lignée de cellules de détection à base GENOP, ce qui pourrait être utile pour de nombreuses autres applications dans des conditions de co-cultureavec NO • produire des cellules primaires ou même chez les animaux 30 vivant. Toutefois, dans cette étude, nous démontrons la capacité de divers composés NO • -liberating, de différentes concentrations et stabilités, pour évoquer intracellulaires NO • signaux en utilisant le modèle de cellules HEK G-GENOP exprimant. Nos données ont révélé que le NO • donneur de concentration, la qualité et la méthode d&#39;application éventuellement déterminer les motifs de NO intracellulaires • profils. Ces informations sont indispensables pour la pharmacocinétique in situ la caractérisation des différentes NO • donateurs, qui sont indicatifs de plusieurs maladies. Notamment, geNOps ont été montré pour répondre de manière stable à de multiples applications répétitives de NO • donneur de impulsions sur une très longue période 1. En conséquence, les expériences utilisant NO • -liberating composés présentés ici, permettent des conclusions semi-quantitatives sur les diverses amplitudes et la cinétique de NO cellulaire respective226; les signaux (figures 1 et 2). Bien que le HEK exprimant de manière stable le clone cellulaire provient probablement d&#39;une seule cellule, une grande hétérogénéité du G-geNOps les niveaux d&#39;expression a été observée (figure 1). Ceci est une caractéristique commune des clones cellulaires stables comme la transcription du (génome intégré) gène d&#39;intérêt est sous le contrôle de nombreux facteurs tels que divers stress environnementaux 31 qui influencent les taux de croissance des cellules 32 et l&#39;état du cycle cellulaire 33. Les geNOps simples à base de FP sont des sondes non-ratiométrique et, par conséquent, le NO • perte induite par des augmentations d&#39;intensité de fluorescence avec le niveau d&#39;expression GENOP 1. En conséquence, la normalisation des signaux de geNOps est essentiel pour la quantification cellulaires NO • signaux particulièrement dans le cas d&#39;une analyse comparative. Comme le montre notre étude récente, une stricte corrélation linéaire bntre l&#39;intensité de fluorescence basale de geNOps et la force de l&#39;extinction de la fluorescence induite par NO • sur une large gamme d&#39;intensités de fluorescence a été trouvée 1. Ceci est une caractéristique importante de geNOps pour la quantification absolue des cellulaires NO • signaux. Comme le montre la figure 1, la normalisation des signaux G-geNOps en réponse à NDP-7 et SNP a révélé homogènes NO • signaux dans différentes cellules HEK de la même plaque, ce qui indique que les cellules HEK ne sont pas diversifiés quant à leur capacité à prendre et dégrader le radical NO • qui provient du NO • donneur. En revanche, à l&#39;aide de geNOps dans les cellules HeLa ont démontré hétérogénéités claires de cellulaires NO • signaux entre différentes cellules en réponse à la CNP-7. Ces différences pointer spécifiques du type NO • métabolisme et décomposition des taux de cellules, ce qui pourrait avoir des implications multiples dans la physiologie cellulaire et la pathologie, et peut être découvert en utilisant la GENOPla technologie de l&#39;art. Néanmoins, deux caractéristiques importantes de geNOps doivent être soigneusement examiné pour l&#39;utilisation correcte des capteurs et des interprétations de données: i) geNOps nécessitent suffisamment de fer (II) pour répondre pleinement aux NO • 1 et ii) en fonction de la variante FP, geNOps peut être sensible au pH 1. Nous décrivons ici un protocole qui a été jugé approprié pour la supplémentation en fer non toxique (II) de geNOps, qui sont exprimés dans les deux HEK, des cellules HeLa ou EA.hy926 (voir Protocole 2.6). Bien qu&#39;il ait été démontré que le traitement des cellules avec du fer (II) / vitamine C n&#39;a pas affecté la morphologie cellulaire, la viabilité cellulaire et l&#39; activité métabolique des cellules 1, il peut être nécessaire d&#39;optimiser cette étape importante pour d&#39; autres types de cellules et tissus. Cependant, dans certaines conditions expérimentales, l&#39;exigence de fer (II), le chargement peut limiter l&#39;applicabilité de geNOps. Notamment, il a été démontré que l&#39;ascorbate peut réduire le NO • 35 et ascorbate de fer (II) complexes sont capables de piéger NO • 36, 37. En outre, l&#39; excès de fer (II) et l&#39; ascorbate peuvent induire des réponses inflammatoires 39 et eNOS découpler 41. Ces effets doivent être pris en considération lors de l&#39;utilisation de la technologie geNOps. Il a été démontré que , dans certaines conditions expérimentales, le pH intracellulaire est affecté de manière significative 34, qui a le potentiel d&#39;influencer la fluorescence geNOps 1. Notamment, les variantes de cyan et geNOps verts sont relativement sensibles au pH montrant une diminution de la fluorescence lors de l&#39; acidification 1. Par conséquent, des changements aigus de la (sous) pH cellulaire peuvent simuler de faux NO • signaux lorsque vous utilisez les geNOps sensibles au pH. Comme suggéré dans nos travaux précédents, l&#39;utilisation parallèle de NO • geNOps insensibles (geNOps mut) en tant contro négativels est recommandé de disséquer réelle cellulaire NO • signal du pH change 1. En plus des changements de pH cellulaire peuvent être inspectés en utilisant des sondes de pH tels que Sypher 34. En outre, nous avons visualisé enzymatique NO endogène • la formation en réponse à un agoniste physiologique Ca2 + dans la cellule mobilisant l&#39; endothelial porteuse EA.hy926. La lignée cellulaire EA.hy926 est un système modèle fréquemment utilisé exprimant constamment eNOS 38. Utilisation de geNOps transitoirement exprimés dans les cellules EA.hy926, a confirmé que IP 3 médiée les signaux de Ca évoquent profonde NO • formation dans ce type de cellule, qui a été presque complètement bloquée par L-NNA. Afin de corréler temporellement Ca 2+ avec NO • Les signaux, les cellules G-GENOP exprimant ont été chargées avec la excitables-UV chimique Ca 2+ -Indicateur fura-2 / h. La séparation spectrale du Ca 2+ lié et non lié fura-2 Fluo<html> rescence du signal G GENOP peut être facilement réalisé avec des jeux de filtres disponibles dans le commerce 40. Imagerie les deux sondes ont dévoilé que le Ca 2+ enzymatique -triggered NO • formation se produit beaucoup plus lent par rapport à la hausse du cytosolique Ca dans ce type de cellules endothéliales. Cinétiques similaires de unicellulaires NO • signaux dans les cellules endothéliales de l&#39; artère pulmonaire bovine sur le traitement des cellules avec l&#39;agoniste bradykinine IP 3, générant ainsi que les contraintes de cisaillement ont été rapportés en utilisant NOA-1, un capteur très NO • -sensible indirecte 12 . Par conséquent, ces données soulignent que le Ca2 + -evoked eNOS dérivé NON • la formation nécessite un certain temps de démarrage jusqu&#39;à ce que l&#39;activité enzymatique totale est atteinte. Bien que la cinétique cellulaire NON • la formation, la diffusion et la dégradation peuvent être extraites à partir d&#39; autres données, par exemple sur la base des mesures de tensions de NO • induite par la relaxation des vaisseauxss = &quot;xref&quot;&gt; 26, le grand avantage de NO fluorescentes • sondes est qu&#39;ils convertissent directement cellulaires NO • fluctuations en signaux visibles en temps réel. Par conséquent, l&#39;imagerie cellulaire NO • signaux avec geNOps fournit une résolution spatiale et temporelle, et offre des possibilités uniques en (re) enquêter sur le (sous) cellulaire NO • homéostasie. Par exemple, l&#39; imagerie eNOS la navette 42 en combinaison avec la technologie de geNOps dans les cellules endothéliales unique peut être adapté pour établir une corrélation entre la formation de NO • la localisation subcellulaire et la translocation de l&#39;enzyme NO • productrices ou d&#39; autres protéines appropriées telles que la calmoduline et 43 cavéoline. Nous décrivons ici l&#39;application possible du G-GENOP exprimant des cellules HEK et EA.hy926 de visualiser de manière exogène et endogène généré cellulaires NO • signaux sur le niveau d&#39;une seule cellule et en temps réel sur une large fluorescence de champ m classiqueicroscope. Nos données impliquent que geNOps sont appropriés pour suivre spécifiquement (sous-) cellulaires NO • Dynamique dans diverses conditions expérimentales en utilisant toutes sortes de types de cellules intéressantes.

Nous avons récemment développé une nouvelle classe de fluorescents NO • sondes codées génétiquement, appelé les geNOps 1. Ces capteurs sont constitués par un simple bâti, les bactéries dérivées, NO 2 • domaine de liaison, qui est conjugué à une protéine fluorescente distincte (FP) variante 3 (cyan, vert ou orange FP). NO • liaison au fer non hémique (II) Centre 4 dans les geNOps instantanément réduit l&#39;intensité de fluorescence 1. Fait important, la fluorescence de geNOps récupère rapidement et complètement lorsque intracellulaires NO • Les niveaux diminuent 1. Par conséquent, geNOps permettent l&#39;imagerie en temps réel de (sous-) cellulaires NO • fluctuations. Bien que NO • détection du mécanisme de geNOps restent peu claires à ce jour, ils se sont avérés être d&#39;excellents NO • journalistes, et ont donc le pouvoir d&#39;ouvrir une nouvelle ère de polychromie, quantitative NO • bioimaging avec de hautes résolutions spatiales et temporelles 1, 5. Autres disponibles fluorescents NO • sondes sont basées sur de petits composés chimiques, qui doivent être chargés dans les cellules, et sont modifiées de façon irréversible par NO • 6. Inconvénients supplémentaires de NO • petites fluorophores sensibles sont leur cytotoxicité potentiel et spécificité relativement faible ce qui rend difficile de les utiliser d&#39;une manière fiable, analytique et concluante 7, 8, 9. Bien que l&#39;utilisation efficace des sondes fluorescentes codées génétiquement nécessite des techniques de transfert de gènes efficaces, capteurs codés génétiquement à base de FP ont émergé comme des outils indispensables qui ont révolutionné notre compréhension du fonctionnement interne des cellules 10, 11. Avant le développement des geNOps simples à base de FP, un groupe Förster transfert d&#39;énergie par résonance (FRET) à base • capteur de NO, appelé NOA-1 12, a été construit. Sato et al. conçu cette sonde sophistiquée qui se compose de deux sous - unités du NO • -sensible guanylate cyclase soluble (CGT), les deux capteurs à base de FRET de conjugués de rapports guanosine monophosphate cyclique (GMPc) niveaux 12. Comme cette sonde répond aux cGMP, il détecte indirectement intracellulaires NO • fluctuations 12. Bien que NOA-1 répond à NO • élévations dans la gamme de nano-molaire, cet outil n&#39;a pas été utilisé fréquemment jusqu&#39;à présent, probablement en raison des limitations concernant la disponibilité et la praticabilité de ce capteur bipartites encombrant. Fonctions polyvalentes de NO •, ayant un impact fondamental des processus biologiques ont été bien caractérisés 13, 14. De nombreuses études ont montré que le NO • Concentration dans les cellules et sous - domaines qui détermine le destin des cellules dans la santé et les maladies 14, 15, 16. Dans les mammifères, NO • est principalement générée par voie enzymatique dans divers types de cellules par le bien caractérisé l&#39;oxyde nitrique synthase (NOS) famille 17. Jusqu&#39;à présent, trois isoformes de NOS ont été décrits 18, 19, 20; ce sont les Ca 2+ / calmoduline-dépendante NOS endothéliale (eNOS ou NOS-3) 18 et la NOS neuronale (nNOS ou NOS-1) 19 et le Ca 2+ / calmoduline-indépendante constitutivement active NOS inductible (iNOS ou nos- 2) 20. En outre, l&#39;existence de mitochondrial NSA (mtNOS) a également été suggéré 21. Cependant, mtNOS est considéré comme une variante d&#39;épissage de la nNOS, et est donc non classé séparément<html> comme une isoforme 21. Une autre isoforme, à l&#39; exception de ceux des cellules de mammifères, est le soi-disant NOS bactérienne (bNOS), trouve principalement dans les bactéries gram-positives 22. La production enzymatique de NO • est fortement contrôlée et dépend de la disponibilité de plusieurs cofacteurs tels que le nicotinamide adénine dinucléotide phosphate (NADPH), flavine adénine dinucléotide (FAD), la tétrahydrobioptérine (BH4), l&#39; oxygène moléculaire et de la L-arginine 17. L&#39;acide aminé L-arginine cationique est le substrat qui est converti en L-citrulline lors de la production NO • 17. En plus de la génération enzymatique hautement régulé de NO •, il a été postulé que le radical peut être réduit de façon non enzymatique à partir de pools de nitrite par les mitochondries dans des conditions hypoxiques 23. • Une fois que NO est produit à l&#39; intérieur d&#39; une cellule, il peut diffuser librement à travers les membranes biologiques 14,ref &quot;&gt; 15. Cependant, la demi-vie très courte de ce radical est principalement déterminée par les conditions environnementales et différentes voies et les réactions chimiques se dégradent efficacement NO • niveaux 24. Finalement, la formation, la diffusion et la dégradation de NO • dépend les paramètres environnementaux variés qui déterminent la concentration efficace de la molécule biologiquement active hautement 24. La technologie geNOps permet la détection directe de (sous) NO cellulaire • fluctuation 1 et est donc adapté à réexaminer, et récemment découvrir les mécanismes responsables de l&#39;accumulation et la décomposition des cellulaires NO • signaux. Ici, nous fournissons des protocoles simples et des résultats représentatifs pour l&#39;utilisation de geNOps pour visualiser de manière exogène évoquée et NO • profils générés de manière endogène, au niveau des cellules individuelles. En outre, la technologie de geNOps peut être adapté pour applicature dans d&#39;autres systèmes de modèles de cellules pour étudier les motifs complexes de NO • la formation, la diffusion et à la dégradation en réponse aux stimuli cellulaires et des contraintes diverses.

<table><tbody><tr><td>NaCl</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>3957.20</td><td>chlorure de sodium</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>6781.1</td><td>chlorure de potassium</td></tr><tr><td>CaCl2&#183 ; 2H2O</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>T885.1</td><td>chlorure de calcium dihydraté</td></tr><tr><td>MgCl2&#183 ; 6H2O</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>2189.2</td><td>chlorure de magnésium hexahydraté</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>9105.3</td><td>4-(2-hydroxyéthyl)-1-pipérazinééthanesulfonique</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>8551.1</td><td>hydrogénocarbonate de sodium</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Merck, Darmstadt, Allemagne</td><td>104873</td><td>dihydrogénophosphate de potassium</td></tr><tr><td>Na2HPO4&#183 ; 2H2O</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>4984.1</td><td>hydrogénophosphate de sodium dihydraté</td></tr><tr><td>D(+)-Glucose monohydraté</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>6780.1</td><td>>99.5 %; pour la culture cellulaire, sans endotoxines</td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>3054.2</td><td>éthylène glycol-bis(2-aminoéthyléther )-N&#8288 ;,&#8288 ; N&#8288 ;,&#8288 ; N&#8288 ; et prime ; &#8288 ;,&#8288 ; N&#8288 ; et prime ; &#8288 ; -acide tétraacétique ; agent chélateur de calcium</td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>6771.1</td><td>hydroxyde de sodium</td></tr><tr><td>HCl</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>4625.1</td><td>acide chlorhydrique, fumant, 37 % (~10 N)</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Carl Roth, Karlsruhe, Allemagne</td><td>4720.1</td><td>diméthylsulfoxyde ; &nbsp ; solvant organique hautement polaire et aprotique</td></tr><tr><td>chlorhydrate d’acide L-glutamique&nbsp ;</td><td>Sigma Aldrich, Vienne, Autriche</td><td>G2128</td><td>(S)-2-Acide aminoglutarique</td></tr><tr><td>DMEM, faible teneur en glucose</td><td>Sigma Aldrich, Vienne, Autriche</td><td>D5523</td><td>Dulbecco' s Aigle modifié' s Glycémie moyenne à faible ; avec 1 000 mg/L de glucose et de L-glutamine, sans bicarbonate de sodium, en poudre, adapté à la culture cellulaire.</td></tr><tr><td>Solution vitaminique MEM (100x)</td><td>Gibco/Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA</td><td>11120037</td><td>100 fois plus de vitamines que l’on trouve dans le milieu essentiel minimum standard (MEM)</td></tr><tr><td>Solution d’acides aminés MEM (50x)</td><td>Gibco/Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA</td><td>11130036</td><td>50 fois plus d’acides aminés essentiels (sauf la L-glutamine) que l’on trouve dans le milieu essentiel minimum standard (MEM)</td></tr><tr><td>Pénicilline-streptomycine (10 000 U/ml)</td><td>Gibco/Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA</td><td>15140122.00</td><td>antibiotiques pour prévenir la contamination bactérienne des cultures cellulaires</td></tr><tr><td>Amphotéricine B</td><td>Gibco/Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, États-Unis</td><td>15290026.00</td><td>Gibco Amphotéricine B contient 250 &micro ; g d’amphotéricine B (Fungizone) et 205 &micro ; g de désoxycholate de sodium ; empêche la contamination des cultures cellulaires par des levures et des champignons multicellulaires</td></tr><tr><td>FCS</td><td>Gibco/Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA</td><td>10270106</td><td>Sérum de veau fœtal, qualifié, approuvé par l’UE, origine Amérique du Sud</td></tr><tr><td>PBS, pH 7,4</td><td>Gibco/Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, États-Unis</td><td>10010031.00</td><td>solution saline tamponnée au phosphate</td></tr><tr><td>Fura-2 (AM)</td><td>Teflabs, Austin, TX, USA</td><td>102</td><td>dichlorure</td></tr><tr><td>d’hydrochlorure d’histamine</td><td>Sigma Aldrich, Vienne, Autriche</td><td>H7250</td><td>dichlorhydrate de 2-(4-imidazolyl)éthylamine ; agoniste générateur d’IP3&nbsp ;</td></tr><tr><td>N&omega ;-Nitro-L-arginine</td><td>Sigma Aldrich, Vienne, Autriche</td><td>N5501</td><td>Acide N5-(Nitroamidino)-L-2,5-diaminopentanoïque ; L-NNA ; &nbsp ; inhibiteur de l’oxyde nitrique synthase</td></tr><tr><td>NOC-7</td><td>Calbiochem/Merck, Darmstadt, Allemagne</td><td>487952</td><td>3-(2-Hydroxy-1-méthyl-2-nitrosohydrazino)-N-méthyl-1-propanamine ; donneur d’oxyde nitrique (NO) Courte demi-vie de libération de NO</td></tr><tr><td>Nitroprussiate de sodium dihydraté</td><td>Santa Cruz Biotechnology, Texas, États-Unis</td><td>sc-203395A</td><td>nitroferricyanure de sodium(III) dihydraté ; composé libérant de l’oxyde nitrique</td></tr><tr><td>30 mm Feuilles de</td> <td>recouvrementKarl Hecht, Sondheim v. d. Rh&ouml ; n, Allemagne</td><td>41001130</td><td>lamelles en verre, HECHT « Assistent », taille 1, rond, 30 mm, (VE : 100 pièces)&nbsp ;</td></tr><tr><td>Solution booster de fer(II)</td><td>Imagerie fluorescente de nouvelle génération (NGFI), Graz, Autriche</td><td>n.a.Tampon</td> <td>physiologique contenant du fer(II) pour le chargement non toxique du fer(II) des cellules ; &nbsp ; http://www.ngfi.eu/product/ironii-booster-solution/</td></tr> <tr><td>Plasmide G-geNOp</td><td>Imagerie fluorescente de nouvelle génération (NGFI), Graz, Autriche</td><td>n.a.ADN</td> <td>plasmidique codant pour une sonde sensible verte&nbsp ;NO (G-geNOp) ; &nbsp ; http://www.ngfi.eu/product/g-genop/</td></tr> <tr><td>G-geNOp AAV5</td><td>Imagerie fluorescente de nouvelle génération (NGFI), Graz, Autriche</td><td>n.a.adénovirus</td> <td>codant pour une sonde verte sensible au NO (G-geNOp) ; &nbsp ; http://www.ngfi.eu/product-category/genops/viral-genops-vectors/g-genop-aav5/</td></tr> <tr><td>Lignée cellulaire du capteur G-geNOp</td><td>Imagerie fluorescente de nouvelle génération (NGFI), Graz, Autriche</td><td>n.a.Lignée</td> cellulaire <td>de rein embryonnaire humain (HEK293) exprimant de manière stable une sonde verte sensible au NO (G-geNOp) ; &nbsp ; http://www.ngfi.eu/product-category/genops/g-genop-sensor-cell-line/</td></tr> <tr><td>HEK293A lignée cellulaire</td><td>Invitrogen/Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, États-Unis</td> Sous-clone <td>R70507</td><td>de la lignée cellulaire rénale embryonnaire humaine (HEK293)&nbsp ;</td></tr><tr><td>Lignée cellulaire EA.hy926</td><td>American Type Culture Collection (ATCC), Wesel, Allemagne</td><td>Clone hybride de cellules somatiques CRL-2922 d’une lignée cellulaire de veine ombilicale humaine avec un clone résistant à la thioguanine de A549</td><td></td></tr><tr><td>TILL iMIC</td><td>Till Photonics, Graefling, Allemagne</td><td>n.a.microscope</td> <td>numérique</td></tr><tr><td>Monochromateur en V polychrome</td><td>Till Photonics, Graefling, Allemagne</td><td>n.a.commutation</td> <td>ultra rapide</td></tr><tr><td>AVT Stingray F145B</td><td>Allied Vision Technologies, Stadtroda, Allemagne</td><td>n.a.Caméra</td> <td>CCD polyvalente avec capteur Sony ICX285 EXview HAD, IEEE 1394b</td></tr><tr><td>alpha Plan Fluar 40</td><td>Zeiss, G&ouml ; ttingen, Allemagne</td><td>n.a.40X</td><td></td></tr> <tr><td>filtres dichroïques</td> objectifs <td>Chroma Technology Corp, Rockingham, Vermont, États-Unis</td><td>n.a.Émetteur</td> <td>GFP 514/3 nm (515dcxr)</td></tr><tr><td>ValveBank8 Controller</td><td>AutoMate Scientific, Inc., Berkeley, Californie, USA</td><td>01-08</td><td>unité de contrôle du système de perfusion programmable</td></tr><tr><td>BVC control</td><td>Vacuubrand, Wertheim, Allemagne</td><td>727200</td><td>Pompe à membrane de chimie ME 1C ; pompe à vide pour système de perfusion</td></tr><tr><td>logiciel ImageJ</td><td>&nbsp ; Image du NIH&nbsp ;</td><td></td><td>Programme de traitement d’images Java inspiré de NIH Image. http://imagej.net/Welcome</td></tr></tbody></table>

application de codé génétiquement fluorescent oxyde nitrique (no •) sondes, les genops, pour l&#39;imagerie en temps réel de no • les signaux dans les cellules simples

Application of Genetically Encoded Fluorescent Nitric Oxide (NO&#8226;) Probes, the geNOps, for Real-time Imaging of NO&#8226; Signals in Single Cells

L&#39;oxyde nitrique (NO •) est un petit radical, qui médie plusieurs fonctions cellulaires importantes chez les mammifères, les bactéries et les plantes. Malgré l&#39;existence d&#39;un grand nombre de méthodes de détection de NO • in vivo et in vitro, la surveillance en temps réel de NO • au niveau d&#39;une seule cellule est très difficile. Les effets physiologiques ou pathologiques de NO • est déterminée par la concentration réelle et de temps de séjour de ce radical. Par conséquent, des procédés qui permettent la détection de cellules isolées de NO • est hautement souhaitable. Récemment, nous avons élargi la palette de NO • indicateurs en introduisant unique à base de protéine fluorescente génétiquement codée oxyde nitrique (NO) • sondes (de geNOps) qui répondent directement aux cellulaires NO • fluctuations et, par conséquent, répond à ce besoin. Ici, nous démontrons l&#39;utilisation de geNOps pour évaluer intracellulaires NO • signaux en réponse à deux chimique différente NO • molécules -liberating. Nos résultats also confirmer que fraîchement préparée de 3- (2-hydroxy-1-méthyl-2-nitrosohydrazino) -N-méthyl-1-propanamine (NOC-7) a un potentiel beaucoup plus élevé pour évoquer des changements dans les niveaux intracellulaires NO • par rapport à la inorganique NO • nitroprussiate donneur de sodium (SNP). En outre, deux couleurs imagerie des cellules vivantes en utilisant les geNOps verts (G-GENOP) et l&#39;indicateur chimique Ca 2+ Fura-2 a été réalisée pour visualiser la réglementation stricte de Ca 2+ dépendante NO • formation dans les cellules endothéliales simples. Ces expériences représentatives démontrent que geNOps sont des outils appropriés pour enquêter sur la génération en temps réel et la dégradation des unicellulaires NO • signaux dans divers montages expérimentaux.

Visualisation des cellules uniques NO • Profils en réponse à transitoirement appliquée NO donateurs Nous avons utilisé un clone de cellules HEK qui exprime de manière stable G-GENOP (figure 1A), afin de visualiser NO • signaux sur le niveau de la cellule unique en réponse à deux petits composés chimiques NO libérant différentes, CNP-7 et SNP. Les NO • donateurs ont été consécutivement appliqués et retirés à partir de cellules lors de l&#39; imagerie à l&#39; aide d&#39; un système de perfusion par gravité qui a assuré flux continu (figure 1B). Toutes les cellules exprimant G-GENOP avec des intensités différentes ont montré une nette diminution de la fluorescence en réponse à la CNP-7 et SNP (figure 1C), indiquant rapide NO • accumulation dans les cellules lors de l&#39;addition des NO • donateurs. Signaux de fluorescence normalisés (1-F / F 0) ont démontré que le NO • donateurs évoqués cellula homogèner NON • élévations qui a complètement récupéré après lavage des NO • composés -releasing (Figure 1D). Cependant, 10 uM de SNP induit seulement 50% du NO cellulaire • Signal (9,63 ± 1,05%, n = 3/38) qui a été atteint par 10 uM NOC-7 (18,10 ± 1,20%, n = 3/38, p &lt; 0,0001). Afin d&#39;atteindre l&#39; égalité intracellulaires NO • niveaux avec le NO • donateurs, une concentration de 1 mM de SNP était nécessaire (Figures 1C, 1D). Ensuite, nous avons testé la capacité fraîchement préparé par rapport a expiré NOC-7 pour élever intracellulaires NO • niveaux dans les cellules HEK. A cet effet, nous avons préparé quatre tampons expérimentaux contenant 5 uM NOC-7. Le NO • donneur a été soit ajouté fraîchement juste avant la mesure, ou maintenue dans les réservoirs pendant 1 h, 2 h et 3 h à la température ambiante avant la mesure. Les différents tampons ont été successivement appliqués à f éliminésROM , les cellules exprimant le G-GENOP en utilisant un système de perfusion (figure 2B). Cette approche a dévoilé la stabilité des aqueuses NOC-7 solutions qui, comme prévu, ont montré une diminution des capacités au fil du temps pour élever intracellulaires NO • niveaux (Figures 2A, 2C). Fait intéressant, NO • Les signaux récupérés nettement plus rapide lors de l&#39;enlèvement des tampons expirés, par rapport à la intracellulaire NO • réponse qui a été évoquée par frais CNP-7 (figure 2C), l&#39; adhérence indiquant peut - être des molécules intactes NO • -liberating à composants cellulaires . Visualisation simultanée de Ca 2+ et NO • Les signaux dans les cellules endothéliales simples Afin d&#39;étudier Ca 2+ -triggered NO • formation dans les cellules endothéliales, l&#39;endothéliales immortalisées cellules de remplacement couramment utilisé, la lignée cellulaire EA.hy926, était transiently transfectées avec G-GENOP et chargé avec Fura-2 / h (voir le protocole 2.8). La transfection a abouti à environ 10% des cellules endotheliales positives G GENOP (n = 6, la figure 3A), ce qui est suffisant pour enregistrer Ca2 + -evoked NON • la production au niveau des cellules endothéliales seules. Cependant, nous avons atteint près de 100% G-GENOP cellules EA.hy926 positives en utilisant un vecteur viral adéno-associé (n = 6; voir le protocole 2.2). Avant les mesures multi - canaux, les cellules ont été incubées pendant 20 min à température ambiante dans un tampon de stockage constitué par la L-NNA, un puissant inhibiteur irréversible NOS-26. Les cellules témoins ont été maintenus dans le même tampon de stockage sans L-NNA (voir Protocole 1.1) (figure 3B). Le traitement des cellules témoins avec l&#39; histamine, un inositol 1,4,5-triphosphate puissant (IP 3) générant un agoniste, cytosolique instantanément élevée Ca2 + niveaux suivie d&#39;une augmentation progressive du NO intracellulaire • jusqu&#39;à ce que l&#39;agoniste a été removed (figures 3C, 3D). Les cellules pré-traitées avec le NOS-inhibiteur montré cytosolique Ca 2+ signaux similaires, alors que le NO intracellulaire • niveau est resté à peu près inchangée en réponse à l&#39; histamine (Figure 3E). EA.hy926 cellules exprimant G-GENOP ont également été traitées avec 1 uM et 100 uM de l&#39;IP 3 générant agoniste ATP afin de tester si oui ou non geNOps conviennent de surveiller NO • signaux en réponse à la fois une faible physiologique et supra-physiologiques Les concentrations d&#39;un agoniste (figure 3F). Dans la lignée cellulaire endothéliale 1 pM ATP évoqué un cytosolique clair NO • signal, qui était d&#39; environ la moitié du signal obtenu par 100 pM ATP (Figure 3F). <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/55486/55486fig1.jpg" /> Figure 1: profils de NO intracellulaires en réponse à différentes NO-liberati<html> ng molécules. (A) images larges de cellules HEK de terrain exprimant de manière stable cytosolique G-GENOP. Barre d&#39;échelle = 20 pm. (B) Représentation schématique d&#39;un système de perfusion par gravité à base de semi-automatique pour l&#39;application commandée et le retrait de la NOC-7 et le SNP. (C) représentatif (sur 3 expériences indépendantes) non normalisée d&#39; intensité de fluorescence de cellules uniques traces en unités arbitraires en fonction du temps des cellules HEK exprimant de façon stable cytosolique G GENOP en réponse à 10 uM NOC-7, 10 uM de SNP, et 1 mM SNP. courbe gras noir représente la courbe moyenne de 26 traces unicellulaires (courbes gris clair). Courbe noire représente Parsemé F 0, qui a été utilisé pour la normalisation. (D) traces simples Normalisé et inversées (1-F / F 0, courbes gris clair), et courbe moyenne (courbe noire en gras) au fil du temps en réponse à 10 uM NOC-7, 10 uM SNP, et 1 mM SNP extrait de panneau C.es / ftp_upload / 55486 / 55486fig1large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure. <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/55486/55486fig2.jpg" /> Figure 2: Essai de stabilité de la NOC-7 en utilisant des cellules HEK stable G-GENOP exprimant. (A) représentant NO • courbe de réponse de concentration dans le temps de manière stable G-GeNOps exprimant des cellules HEK lors de l&#39; application de la NOC-7 solutions tampons fraîches et anciennes. Tous les tampons contenant de la CNP-7 ont été préparées d&#39;abord avec une concentration finale de 5 uM en utilisant la même solution de stock (50 mM). Le temps écoulé des solutions respectives après la préparation jusqu&#39;à ce que des quantités d&#39;imagerie à 1 h, 2 h et 3 h comme indiqué. (B) Représentation schématique d&#39;un système de perfusion de semi-automatique par gravité consécutivement ajouter et supprimer des solutions de la CNP-7 contenant lors de l&#39; imagerie. (C) corrélations temporelles decellulaire NO • signaux en réponse fraîchement préparés et vieux CNP-7 tampons. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55486/55486fig2large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="figure 3" src="/files/ftp_upload/55486/55486fig3.jpg" /> Figure 3: imagerie multicanal simultanée de NO • et Ca 2+ signaux dans les cellules EA.hy926 simples. (A) représentatifs grand champ images de fluorescence des cellules exprimant EAhy.926 G-GENOP (panneau de gauche) qui sont chargés avec fura-2 / h (moyenne et panneaux de droite). Barre d&#39;échelle = 20 pm. (B) Représentation schématique du traitement des cellules avec 500 uM EAhy.926 Nω-nitro-L-arginine (L-NNA) pendant 20 minutes dans une plaque à six puits avant la mesure. (C) au cours du temps représentatif d&#39;un enregistrement simultané de fura-2 (excitation: 340 nm / 380 nm emission: 510 nm) et des signaux G GENOP (excitation: 480 nm; émission: 520 nm) en réponse à 100 uM d&#39;histamine. Comme indiqué histamine a été éliminé au bout de 3 min à l&#39;aide d&#39;un système de perfusion. (D) Les courbes représentent des enregistrements simultanés de cytosolique Ca 2+ (-2 fura signaux de rapport, F 340 / F 380 est gris ligne pleine) et NO • (courbe normalisée et inversée, 1-F / F 0 est une ligne solide vert) signaux au fil du temps d&#39;une seule fura-2 / am chargé cellules endothéliales exprimant transitoirement G-GENOP. Les cellules ont été stimulées avec 100 uM d&#39; histamine pendant 3 min dans un Ca2 + (2 mM CaCl2) contenant un tampon (n = 03/08). (E) représentant enregistré simultanément Ca 2+ (ligne solide gris) et NO • Les signaux (ligne verte solide) au fil du temps d&#39;une cellule EA.hy926 qui a été prétraités avec 500 uM Nω-nitro-L-arginine (L-NNA) avant à la mesure (n = 03/12). Les cellules ont été traitées avec 100 uM d&#39;histamine en présence de 2 mMCa 2+. (F) représentant les courbes moyennes cytosoliques NO • Les signaux en réponse à 1 uM d&#39; ATP suivie d&#39;une seconde stimulation des cellules avec 100 pM d&#39; ATP. Les barres représentent les valeurs moyennes ± écart-type des signaux G GENOP maximaux en réponse à 1 uM d&#39;ATP (barre blanche) et 100 uM d&#39;ATP (barre verte) de 4 expériences indépendantes; p &lt;0,001 par rapport à 1 pM d&#39;ATP. P-valeur a été calculée en utilisant un test t non apparié. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55486/55486fig3large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a>

Ce manuscrit présente des protocoles pour l’application de nouvelles sondes d’oxyde nitrique (NO•) génétiquement codées (geNOps) pour surveiller les fluctuations de NO• d’une cellule unique en temps réel à l’aide de la microscopie à fluorescence. La formation de NO• déclenchée par le Ca2+ au niveau des cellules endothéliales individuelles a été visualisée en combinant les geNOps avec un capteur chimique Ca2+.

Application de Codé génétiquement fluorescent oxyde nitrique (NO •) Sondes, les geNOps, pour l&#39;imagerie en temps réel de NO • Les signaux dans les cellules simples

Nitric Oxide (NO&#8226;) is a small radical, which mediates multiple important cellular functions in mammals, bacteria and plants. Despite the existence ...

Le but général de cette approche d'imagerie est de surveiller en temps réel les signaux d'oxyde nitrique au niveau de cellules individuelles à l'aide d'une nouvelle classe de sondes fluorescentes codées génétiquement pour l'oxyde nitrique, les geNOps. Compte tenu de l'importance de l'oxyde nitrique en biologie et en physiologie, la visualisation de cette molécule au niveau cellulaire, voire subcellulaire, est souhaitée depuis sa découverte. Nous visualisons les signaux d'oxyde nitrique à l'aide de sondes nouvelles, relativement simples dans leur conception, basées sur des protéines fluorescentes, les geNOps.Les geNOps répondent directement et immédiatement à l'oxyde nitrique par extinction de fluorescence. Cela signifie que vous pouvez surveiller en temps réel la cinétique de production, de diffusion et de dégradation de l'oxyde nitrique dans des cellules uniques. L'avantage principal des geNOps est que vous pouvez effectivement observer les signaux d'oxyde nitrique avec une résolution spatiale et temporelle élevée à l'aide d'un microscope à fluorescence conventionnel.Commencez cette procédure en remplaçant le tampon de conservation de la lignée de cellules endothéliales ou des cellules HEK293 par un millilitre par puits de la solution de renforcement au fer(II) à température ambiante. Incubez les cellules exactement 20 minutes à l’abri de la lumière. La procédure de chargement en fer est essentielle pour obtenir une réponse complète des sondes et peut être adaptée à différents types cellulaires et applications.Ensuite, laver les cellules une fois avec le tampon de stockage, puis incuber chaque puits avec deux millilitres de tampon de stockage pendant au moins deux heures à température ambiante afin de permettre aux cellules de s'équilibrer. Remplacer ensuite le tampon de stockage par 3,3 µM de Fura-2AM dans un millilitre de tampon de stockage. Protéger les cellules de la lumière et les incuber pendant 45 minutes.Après 45 minutes, laver les cellules deux fois avec le tampon de stockage, puis les incuber à nouveau pendant au moins 30 minutes afin de permettre aux cellules de s'équilibrer. Pour commencer la procédure, fixer d'abord une lamelle de 30 millimètres recouverte de la lignée cellulaire endothéliale ou de cellules HEK293 dans une chambre de perfusion métallique. Allumer le système d'imagerie, puis placer la chambre de perfusion métallique sur le microscope.Reliez le tube d'entrée aux réservoirs de tampon, puis mettez en marche le système de perfusion. Reliez maintenant le tube de sortie à une pompe à vide, en veillant à maintenir un débit constant et à éviter la vidange de la lamelle. Démarrez la perfusion par gravité avec un tampon physiologique au calcium en utilisant un système de perfusion semi-automatique.Ensuite, définissez les paramètres d'acquisition à l'aide du logiciel approprié. Sélectionnez les longueurs d'onde d'excitation de 340 nanomètres et 380 nanomètres pour l'imagerie de la Fura-2 et de 480 nanomètres pour exciter G-geNOp. Puis, sélectionnez la région d'acquisition en déplaçant la table xyz du microscope jusqu'à ce que plusieurs cellules fluorescentes soient en netteté.Ensuite, définissez les régions d'intérêt. Dessinez les régions couvrant plusieurs cellules fluorescentes individuelles entières pour chaque champ d'imagerie. Puis, définissez une région de fond de taille similaire.Commencer à collecter les données sur un microscope fluorescent inversé et avancé équipé d'une platine d'échantillonnage motorisée et d'une source de lumière monochromatique. En alternative, exciter les cellules à 340 nanomètres et 380 nanomètres pour Fura-2AM, et à 480 nanomètres pour G-geNOp, respectivement. Régler les temps d'exposition respectifs de manière à ce qu'un signal de fluorescence net soit détectable dans le temps pour tous les canaux.Recueillir la lumière émise à 510 nanomètres pour le Fura-2AM et à 520 nanomètres pour le G-geNOp à l’aide d’une caméra CCD équipée d’un jeu de filtres approprié comprenant un excitateur à 500 nanomètres, un miroir dichroïque à 495 nanomètres et un émetteur à 510-520 nanomètres. Ensuite, enregistrer une image complète toutes les trois secondes. Enregistrer les trois premières minutes dans un tampon physiologique au calcium afin d’obtenir la ligne de base des signaux de fluorescence respectifs.Une fois qu'une fluorescence de base stable est observée, passez au tampon physiologique au calcium contenant de l'histamine ou de l'ATP à 100 micromolaire pour stimuler les cellules pendant trois minutes. Ensuite, revenez au tampon physiologique au calcium sans histamine ni ATP et sans L-NNA pendant cinq minutes afin d'éliminer les composés des cellules. Par la suite, administrez du NOC-7 à 10 micromolaire dans le tampon physiologique au calcium pendant deux minutes à l'aide du système de perfusion.Le donneur d'oxyde nitrique affecte fortement la fluorescence de G-geNOp et diminue généralement celle-ci de plus de 20 % en réponse à 10 micromolaires de NOC-7. Dans les cellules EA.hy926, l'effet du NOC-7 est plus marqué par rapport à la diminution de fluorescence de G-geNOp induite par les agonistes. Ensuite, éliminer le composé libérant l'oxyde nitrique pendant environ 10 minutes à l'aide du tampon physiologique au calcium, puis arrêter l'enregistrement une fois que la fluorescence de base est rétablie.On voit ici des images représentatives en fluorescence grand champ de cellules EA.hy926 exprimant G-geNOp et chargées avec Fura-2AM. Voici également le tracé représentatif du suivi temporel des enregistrements simultanés des signaux Fura-2 et G-geNOp en réponse à l'histamine à 100 micromolaire. Comme indiqué, l'histamine a été éliminée après trois minutes à l'aide d'un système de perfusion.Ces courbes représentent les enregistrements simultanés des signaux calciques cytosoliques et d'oxyde nitrique d'une cellule endothéliale unique chargée avec Fura-2AM et exprimant de façon transitoire G-geNOp. Les cellules ont été stimulées par de l'histamine à 100 micromolaire pendant trois minutes dans un tampon contenant du calcium. Ce qui est montré ici correspond aux signaux représentatifs de calcium et d'oxyde nitrique enregistrés simultanément au cours du temps dans une cellule EA.hy926 prétraitée par du L-NNA à 500 micromolaire avant la mesure.Les cellules ont été traitées avec de l'histamine à 100-micromolaire en présence de calcium à deux-millimolaire. Cette figure montre les courbes moyennes représentant les signaux d'oxyde nitrique cytosolique en réponse à de l'ATP à un-micromolaire, suivie d'une seconde stimulation cellulaire avec de l'ATP à 100-micromolaire. Une fois maîtrisée, cette technique permet de visualiser les signaux d'oxyde nitrique en temps réel avec un effort minimal.Je pense que cette technique ouvrira la voie aux chercheurs pour explorer et réexaminer les signaux d'oxyde nitrique dans divers modèles cellulaires. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment utiliser la technologie geNOps pour l'imagerie en temps réel de l'oxyde nitrique dans votre système modèle.

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Source : Lacin, E., et al. Construction de neurotransmetteurs fluorescents à base de cellules (CNiFERs) pour la détection optique de neurotransmetteurs in vivo. J. Vis. Exp. (2016)Cette vidéo présente une technique d’imagerie de la libération de neurotransmetteurs in vivo à l’aide de neurotransmetteurs à base de cellules CNiFERs, des cellules rapporteures spécialisées pré-injectées dans le cortex de la souris. Positionnée sous un microscope à deux photons, la souris permet de visualiser la...

Imagerie de la libération de neurotransmetteurs à l’aide de rapporteurs fluorescents de neurotransmetteurs à base de cellules

Balises bimoléculaires Ratiométrique (de RBMBs) peuvent être utilisés pour une seule image transcrits d'ARN modifiées dans les cellules vivantes. Ici, nous décrivons la préparation et la purification de RBMBs, livraison de RBMBs dans les cellules par microporation et l'imagerie de fluorescence de transcrits d'ARN simples en temps réel.

Imagerie en temps réel de l&#39;unité d&#39;ingénierie des ARN transcrits dans des cellules vivantes utilisant Ratiométrique bimoléculaires Beacons

Cet article va vous montrer comment contrôler la dynamique de la glutamine dans les cellules vivantes en utilisant FRET. Capteurs codés génétiquement permettent un suivi en temps réel de molécules biologiques à une résolution subcellulaire. Conception expérimentale, les détails techniques des paramètres expérimentaux, et des considérations pour les analyses post-expérimentaux seront discutées pour les capteurs de glutamine codés génétiquement.

Glutamine Flux Imaging Utilisation de capteurs génétiquement codés

Ce manuscrit décrit une nouvelle technique qui permet la détection de l’expression génique intracellulaire après endocytose de nanoparticules marquées par fluorescence directement dans des cellules vivantes. La méthode ne nécessite pas de manipulation des cellules et n’est pas limitée par rapport au gène ou à l’espèce cible.

Détection de intracellulaire Gene Expression dans des cellules vivantes de murin, humain et porcin Origine utilisant des nanoparticules marquées par fluorescence

Nous présentons un protocole pour créer journalistes neurotransmetteur fluorescents à base de cellules modifiées (CNiFERs) pour la détection optique de la libération de neurotransmetteurs volumétrique.

La construction de base de cellules fluorescentes neurotransmetteur Engineered Reporters (CNiFERs) pour la détection optique des neurotransmetteurs<em&gt; In Vivo</em

Les changements morphologiques se produisent dans les cellules de fibroblaste sensibles au système immunitaire après l'activation et favorisent des changements dans le recrutement cellulaire. Utilisation de l'imagerie à 2 photons en conjonction avec une protéine génétiquement modifiée spécifique au fibroblaste 1 (FSP1)-cre; tdTomato floxed-stop-floxed (TB/TB) ligne de souris et vert fluorescent marqué lipopolysaccharide-FITC, nous pouvons illustrer l'apport très spécifique de lipopolysaccharide...

In Vivo Deux-Couleur 2-Photon Imagerie des cellules de reporter génétiquement marqués dans la peau

Les cellules neurales de tige/progéniteur montrent la dynamique diverse d'expression des composants de signalisation de notch qui mènent aux résultats différents des événements cellulaires. Une telle expression dynamique peut être révélée par une surveillance en temps réel, et non par une analyse statique, à l'aide d'un système d'imagerie de bioluminescence très sensible qui permet de visualiser des changements rapides dans les expressions génétiques.

Imagerie en temps réel de bioluminescence de la dynamique de signalisation d'encoche pendant la neurogenèse de Murine

L’hybridation multiplex in situ (ISH) a été utilisée pour visualiser simultanément les transcriptions de deux récepteurs couplés à la protéine G et d’un facteur de transcription dans l’ensemble du complexe ganglionnaire vagal de la souris adulte. Ce protocole pourrait être utilisé pour générer des cartes précises des profils transcriptionnels des neurones afférents vagaux.

Détection de l’expression des récepteurs couplés aux protéines G dans les neurones afférents vagals de souris à l’aide de l’hybridation in situ multiplex

Ce protocole décrit comment mettre en place et effectuer efficacement des analyses automatisées de données d’imagerie de cellules vivantes obtenues à partir du suivi du transport nucléocytoplasmique via des outils optogénétiques.

Utilisation des outils d’optogénétique LEXY et LINuS et de l’analyse automatisée d’images pour quantifier la dynamique du transport nucléocytoplasmique dans les cellules vivantes

L’objectif de ce protocole est de permettre la mesure quantitative de la durée de vie de fluorescence des sondes de Riboglow pour les flux d’imagerie reproductible à ARN in vitro, dans des cellules de mammifères vivants et dans des modèles cellulaires tridimensionnels. Nous décrivons les flux de travail de préparation des échantillons, de livraison de sondes, d’acquisition de données et d’analyse quantitative pour l’extraction de mesures de durée de vie de fluorescence non biaisées.

Caractérisation des sondes de Riboglow in vitro comme base de l’imagerie à vie par fluorescence dans les cellules vivantes de mammifères et les modèles cellulaires tridimensionnels

Découvrez l'imagerie en temps réel du monoxyde d'azote dans les cellules individuelles à l'aide des sondes génotiquement encodées geNOps. Cette méthode permet de visualiser les signaux NO• avec une haute résolution spatiale et temporelle.

Application de Codé génétiquement fluorescent oxyde nitrique (NO •) Sondes, les geNOps, pour limagerie en temps réel de NO • Les signaux dans les cellules simples (Vidéo) | JoVE Journal

Application de Codé génétiquement fluorescent oxyde nitrique (NO •) Sondes, les geNOps, pour l'imagerie en temps réel de NO • Les signaux dans les cellules simples

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