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Test de compétition Oligopeptide pour la détermination du site de phosphorylation
Test de compétition Oligopeptide pour la détermination du site de phosphorylation
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JoVE Journal Biochemistry
Oligopeptide Competition Assay for Phosphorylation Site Determination

Test de compétition Oligopeptide pour la détermination du site de phosphorylation

Full Text
8,935 Views
09:16 min
May 18, 2017

DOI: 10.3791/55708-v

Min Sung Joo1, Ja Hyun Koo1, Sol-Bi Shin2, Hyungshin Yim2, Sang Geon Kim1

1College of Pharmacy and Research Institute of Pharmaceutical Sciences,Seoul National University, 2College of Pharmacy and Institute of Pharmaceutical Science and Technology,Hanyang University

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Les tests de compétition peptidique sont largement utilisés dans une variété d'expériences moléculaires et immunologiques. Cet article décrit une méthode détaillée pour un test de kinase concurrent par oligopeptide in vitro et les procédures de validation associées, qui peuvent être utiles pour trouver des sites de phosphorylation spécifiques.

L’objectif global de cette procédure est d’évaluer simultanément plusieurs sites de phosphorylation potentiels et d’identifier des sites pour une validation ultérieure par des mutants de sites de phosphorylation. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans les domaines de la biochimie et de la biologie cellulaire sur le rôle des modifications post-traductionnelles dans la signalisation cellulaire. Cette technique permet un criblage préliminaire facile et économique des sites de phosphorylation et de la protéine d’intérêt.

L’implication de cette technique s’est étendue au diagnostic et au traitement de maladies, y compris l’inflammation et le cancer, car la phosphorylation est un événement biochimique important dans les voies de signalisation des maladies humaines. L’aide à la démonstration serait assurée par Sol-Bi Shin, un étudiant diplômé de mon laboratoire, qui, tout en effectuant une mutagénèse dirigée. Combinez d’abord 50 nanogrammes de plasma pGEX JST NRF2, 125 nanogrammes d’amorce directe, 125 nanogrammes d’amorce inverse, un microlitre de DNTP mélangez 2,5 unités d’ADN polymérase PFU et 10x tampon de réaction sur glace.

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Biochimie Numéro 123 In vitro Test kinase inhibiteur peptidique phosphorylation AMPK Nrf2 motif consensus mutagenèse dirigée

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